ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Фенотипирование ангиотензинпревращающего фермента предстательной железы при раке простаты и доброкачественной гиперплазии

В.Н. Мамедов, С.М. Данилов, Л.М. Самоходская, Д.А. Охоботов, Д.М. Камалов, Н.А. Мельников, В.К. Карпов, А.В. Кадрев, А.А. Камалов

1 Факультет фундаментальной медицины МГУ им. М. В. Ломоносова, кафедра урологии и андрологии (зав. каф. – акад. РАН, проф., д.м.н. А. А. Камалов), Москва, Россия; 2 МНОЦ МГУ им. М. В. Ломоносова (дир. – акад. РАН, проф., д.м.н. А. А. Камалов), Москва, Россия; 3 ГБУЗ «ГКБ № 31» ДЗМ (глав. врач – к.м.н. Н. М. Ефремова), Москва, Россия
Введение. Ангиотензин-превращающий фермент (АПФ) экспрессируется всеми эпителиальными клетками человеческого организма. Несмотра на то что основная доля АПФ синтезируется легкими, в организме мужчины АПФ выделяется яичками (тестикулярная форма АПФ), в семенных пузырьках и предстательной железе. В семенной жидкости уровень АПФ до 50 раз выше, чем в плазме крови. Замещение высокоспецифичных эпителиальных клеток простаты опухолевыми вызывает резкое снижение продукции фермента клетками предстательной железы.
Цель: оценить возможность использования АПФ простаты в качестве нового маркера рака предстательной железы.
Материалы и методы. Фенотипирование АПФ, выработанного клетками простаты, оценивалось пациентами с РПЖ, ДГПЖ и здоровыми молодыми мужчинами, погибшими от несчастного случая (группа сравнения). Фенотипирование АПФ включает оценку активности АПФ с двумя субстратами (HHL и ZPHL), соотношение скоростей гидролиза этих субстратов (отношение ZPHL/HHL), количественную оценку иммунореактивного белка АПФ, отношение иммунореактивного белка к активности АПФ, а также конформацию АПФ с помощью панели моноклональных антител (мАТ) к различным эпитопам АПФ.
Результаты. Активность АПФ в образцах ткани РПЖ выраженно снижалась, и возрастало отношение иммунореактивного АПФ к его активности. Отношение скоростей гидролиза двух субстратов (соотношение ZPHL/HHL) возрастало по отношению к группе сравнения в случаях РПЖ; такого не наблюдалось в подавляющем большинстве случаев ДГПЖ. Было выявлено несколько образцов ткани с гистологическим диагнозом ДГПЖ, но c изменениями фенотипа АПФ, характерными для РПЖ.
Обсуждение. Так как снижение активности АПФ обнаружено у всех пациентов с РПЖ, предполагаем, что это может служить надежным и ранним маркером злокачественных изменений в простате. Изменения фенотипа АПФ, характерные для РПЖ, но обнаруженные у пациентов с ДГПЖ, могут свидетельствовать о более ранних злокачественных изменениях в клетках простаты, невидимых при рутинной биопсии предстательной железы.
Заключение. Определение активности АПФ и его конформации в биоптатах простаты имеет потенциал раннего диагностического маркера РПЖ или дифференциально-диагностического критерия РПЖ. При РПЖ активность АПФ предстательной железы достоверно снижается, а отношение ZPHL/HHL выраженно повышается по отношению к группе сравнения. Таких изменений не наблюдалось в группе ДГПЖ. При гиперпластических заболеваниях простаты (ДГПЖ, РПЖ) происходит изменение сиалирования АПФ, что отражается в увеличении связывания АПФ с мАТ 3F10 по отношению к группе сравнения. Пациенты со свойствами АПФ простаты, характерными для РПЖ, и отрицательным результатом биопсии требуют пристального наблюдения, так как могут в дальнейшем иметь повышенный риск развития РПЖ. Однако ввиду малой выборки пациентов диагностический потенциал параметров АПФ простаты в отношении РПЖ и ДГПЖ требует подтверждения на большем числе пациентов в рамках дальнейших исследований для определения истинной предсказательной силы методик.

Ключевые слова

рак предстательной железы
ДГПЖ
диагностика
АПФ
фенотипирование АПФ
коэффициент ZPHL/HHL

Введение. Рак предстательной железы (РПЖ) занимает второе место по встречаемости среди онкологических заболеваний у мужчин. По данным на 2018 г., по всему миру зарегистрировано около 1,276 млн новых случаев заболевания, что составляет 7,1% от всех впервые диагностированных злокачественных эпителиальных образований в странах Запада [1]. В России РПЖ занимает второе место в структуре причин смертности от злокачественных новообразований [2].

Вследствие того, что используемый во всем мире анализ крови на ПСА в большей степени специфичен для определения самого факта наличия заболевания в простате, а не конкретно РПЖ, поиск новых маркеров РПЖ остается одним из приоритетных направлений развития урологии. Повышение уровня ПСА обнаруживается при доброкачественной гиперплазии предстательной железы (ДГПЖ), остром простатите [3] и даже при стандартном урологическом обследовании пациентов, включающем пальцевое ректальное исследование и трансректальное УЗИ [4]. Определение альтернативных маркеров, таких как proPSA или PCA3, основано на других принципах идентификации и имеет большую диагностическую точность, но из-за высокой стоимости и низкой доступности выполняется лишь небольшим количеством лабораторий [5]. Скрининг и ранняя диагностика РПЖ, контроль прогрессирования опухоли и ее рецидива нуждаются в более точных, чем ПСА, онкомаркерах.

Одним из белков, экспрессируемых клетками предстательной железы, который может быть использован в диагностике РПЖ, является ангиотензинпревращающий фермент (АПФ).

Ангиотензинпревращающий фермент (пептидил-дипептидаза А, КФ 3. 4. 15. 1) – гликопротеин, расположенный на мембране клеток, выявляемый во многих тканях и жидкостях человеческого организма. К основным функциям АПФ относится контроль артериального давления, почечной гемодинамики и водно-электролитного гомеостаза. Соматическая (сАПФ) и тестикулярная (тАПФ) изоформы АПФ кодируются одним и тем же геном. Высокие уровни экспрессии сАПФ были обнаружены в эндотелии сосудов легких, а также эпителии кишечника, почек, придатков яичка, простаты и уретры [6]. Использование ингибиторов АПФ коррелировало с лучшими результатами лечения пациентов с различными опухолями, включая РПЖ [7].

Железистые эпителиальные клетки предстательной железы экспрессируют значительное количество АПФ. В семенной жидкости концентрация АПФ в 50 раз выше, чем в плазме [8]. Установлено, что при появлении в предстательной железе опухолевых клеток в ткани простаты снижается активность АПФ [9], поэтому фенотипирование АПФ в биоптате простаты может иметь клиническое (или диагностическое) значение.

Ранее проведенные исследования с моноклональными антителами (мАТ) к многочисленным конформационным эпитопам на поверхности человеческого АПФ показали, что паттерн связывания мАТ с АПФ – «конформационный отпечаток АПФ» – специфичен для каждой ткани [10, 11]. Более того, конформационный отпечаток АПФ простаты довольно сильно отличается от такового для АПФ легкого [10], что предполагает теоретическую возможность использования простатспецифического АПФ в качестве дополнительного раннего маркера РПЖ. Разница в концентрациях АПФ в семенной жидкости и плазме составляет всего 50 раз [8, 12], в отличие от ПСА, концентрация которого в крови и семенной жидкости может различаться до 1 млн раз [13], следовательно, можно ожидать, что частота ложноположительных результатов при определении АПФ простаты в крови пациентов с РПЖ будет значительно ниже, чем при количественном определении ПСА в крови.

Цель исследования: оценка возможности использования АПФ простаты в качестве нового маркера рака предстательной железы.

Материалы и методы. Пилотное исследование проведено на базах кафедры урологии и андрологии ФФМ МГУ им. М. В. Ломоносова, в урологической клинике и отделе лабораторной диагностики Медицинского центра МГУ им. М. В. Ломоносова, а также в ГБУЗ ГКБ № 31 и НИИ урологии и интервенционной радиологии им. Лопаткина. Исследование было одобрено локальными этическими комитетами. Все пациенты подписывали добровольное информированное согласие на участие в исследовании.

Ткань простаты для исследования получали от неродственных мужчин в ходе трансректальной биопсии простаты, а также из макропрепаратов после аденомэктомии при ДГПЖ и простатэктомии в случаях ранее верифицированного РПЖ. В первой из пяти изученных групп пациентов (описаны далее) были использованы образцы ткани ДГПЖ, полученные в ходе трансуретральной резекции (ТУР) простаты. Однако от этого способа получения ткани в ходе данного исследования было решено отказаться, так как АПФ в этих образцах денатурировал из-за тепловой коагуляции. Для сравнения использовали аутопсированную ткань предстательной железы от неродственных мужчин не старше 40 лет без ранее установленного урологического заболевания, погибших в результате несчастного случая (не позднее 12 ч после гибели).

В полученных образцах ткани простаты измеряли активность АПФ и проводили иммунохимическое фенотипирование. Трансректальная биопсия выполнялась пациентам по показаниям в соответствии с рекомендациями Европейского общества урологов [14].

У части пациентов (в клинике МНОЦ МГУ им. М. В. Ломоносова) трансректальную биопсию проводили с использованием сдвиговой эластографии (SWE) для выявления наиболее подозрительных участков, у другой части (в ГКБ № 31 ДЗМ) – под контролем гистосканирования [15]. Из наиболее подозрительных участков простаты осуществляли пункцию дополнительных 2–3 столбиков ткани. Эти образцы использовали для последующих измерений ферментативной активности и иммунохимической характеристики АПФ в этой области ткани предстательной железы.

У пациентов с ранее подтвержденным диагнозом РПЖ или ДГПЖ ткань простаты получали интраоперационно.

В случаях РПЖ образцы получали после извлечения макропрепарата. Также ткань ДГПЖ была получена от нескольких пациентов в ходе чреспузырной аденомэктомии после извлечения макропрепарата, данная ткань не подвергалась коагуляции в ходе операции. В дальнейшем проводили сравнение результатов патоморфологического исследования с иммуногистохимическим окрашиванием и данных фенотипирования АПФ в ткани простаты.

В целом в ходе исследования проведено фенотипирование АПФ в ткани простаты от 29 пациентов с патоморфологически верифицированной ДГПЖ, 17 пациентов с РПЖ, а также в 17 образцах аутопсированной ткани простаты молодых мужчин, погибших в результате несчастного случая, у которых ранее урологический анамнез не был отягощен. Из-за особенностей методики фенотипирования АПФ исследуемые пациенты группировались в соответствии с серией экспериментов, в которых использовался их биологический материал. В каждую серию экспериментов входили образцы от пациентов с РПЖ, ДГПЖ и здоровых мужчин, погибших от несчастного случая. Было сформировано 5 групп, причем в 4-й и 5-й группах анализ характеристик АПФ проводился до гистологического заключения по материалам биоптата для выдвижения гипотезы о предиктивной силе методик, основанных на АПФ, в отношении РПЖ и ДГПЖ. Поэтому в 4-й и 5-й группах количество пациентов с РПЖ и ДГПЖ не было уравнено.

В 1-й группе было изучено 4 образца от пациентов с РПЖ, 6 – с ДГПЖ, 2 – от здоровых мужчин, погибших в результате ДТП; во 2-й – 7, 7 и 4, в 3-й – 2, 7 и 2, в 4-й – 1, 5 и 6, в 5-й – 3, 6 и 3 образца соответственно.

Анализ активности АПФ. Активность АПФ в гомогенатах ткани простаты измеряли с помощью флуориметрического анализа с двумя субстратами АПФ: 2 мМ Z-Phe-His-Leu и 5 мМ Hip-His-Leu при рН 8,3 [16]. Аликвоты 20–40 мкл образцов добавляли к 200 мкл субстрата и инкубировали при 37ºC. Количественное определение продукта His-Leu проводили на основе его комплексообразования с о-фтальдиальдегидом.

Иммунологическая характеристика АПФ (иммуноферментная преципитация). 96-луночные планшеты покрывали различными антителами против АПФ, предварительно использовав внесенный козий IgG против мышиного IgG в качестве мостика, а затем инкубировали гомогенизированную ткань простаты. Активность оАПФ, преципитированного разными антителами, измеряли с помощью субстрата Z-Phe-His-Leu непосредственно в тех же лунках [17]. Локальные изменения структуры АПФ определяли как отношение активности АПФ, осажденного шестью различными мАТ к эпитопам N- и C-доменов, к активности АПФ, осажденного наиболее эффективным мАТ, – 9B9.

Статистическая обработка данных. Статистический анализ выполнялся в программах Statistica Biostat v. 6.3. Все данные представлены в виде среднего±стандартного отклонения. Значимость различий рассчитывалась с помощью критерия Манна–Уитни в STATISTICA.6 (StatSoft, Inc.). Статистически значимыми считались различия при вероятности ошибки выдвигаемой гипотезы менее 5% (p<0,05).

Результаты и обсуждение. Активность АПФ в ткани простаты при ДГПЖ и РПЖ. Данное исследование проводили в два этапа. Сначала свойства АПФ в ткани простаты оценивали в образцах от пациентов с ранее верифицированным диагнозом РПЖ или ДГПЖ.

Активность АПФ в гомогенатах из ткани РПЖ (в субстратах ZPHL и HHL) была существенно ниже, чем в нормальной такни простаты (рис. 1), что соответствует ранее опубликованным исследованиям [9, 18]. Однако активность АПФ в гомогенатах от пациентов с ДГПЖ не возрастала в отличие от данных, опубликованных другими авторами. Было выдвинуто предположение, будто при выполнении ТУР-простаты электрокоагуляция приводила к частичной денатурации АПФ и занижала реальную активность АПФ у пациентов с ДГПЖ. Так как активность АПФ оценивали с использованием двух субстратов (ZPHL и HHL), мы имели возможность подсчитать отношение скоростей гидролиза в каждом из них, т.е. отношение ZPHL/HHL. Молекула АПФ состоит из N- и С-доменов с разными активными центрами и различной эффективностью гидролиза натуральных и синтетических субстратов [19, 20]. Использованные субстраты ZPHL и HHL гидролизуются в этих активных центрах с разной скоростью: HHL быстрее гидролизуется С-доменом (в 9 раз), а ZPHL – с одинаковой скоростью обоими доменами [16]. Отношение скоростей гидролиза двух субстратов (ZPHL/HHL) служит характеристикой двух различных форм АПФ. Для соматического двухдоменного АПФ ZPHL/HHL составляет 1–1,5, для N-домена – 5–7, для С-домена – 0,6–0,8 [21]. Ранее отношение ZPHL/HHL использовалось для определения наличия ингибиторов АПФ в крови пациентов [21]. Однако этот параметр также может помочь обнаружить и инактивацию отдельного домена: увеличение ZPHL/HHL может указывать на инактивацию С-домена, уменьшение – на инактивацию N-домена, что непосредственно служит характеристикой фенотипа АПФ исследуемой ткани [21].

22-1.jpg (79 KB)

Соотношение ZPHL/HHL – достаточно однородный параметр для нативного АПФ в плазме крови или гомогенатах ткани и характеризуется очень низкой индивидуальной вариабельностью. Активность АПФ, определяемая одним субстратом в нормальной популяции, изменяется в 3–4 раза со стандартным отклонением около 30% [17, 22]. Однако стандартное отклонение для соотношения ZPHL/HHL составляет всего 3–5% [23].

В 1-й группе во всех образцах ткани РПЖ обнаружено достоверное (p=0,04) увеличение ZPHL/HHL, у большинства пациентов с ДГПЖ такие изменения фенотипа АПФ в образцах ткани не наблюдались (рис. 1). Однако было выявлено два образца от пациентов с ДГПЖ, которые характеризовались достоверным повышением соотношения ZPHL/HHL и снижением активности АПФ (в красной рамке на рис. 1).

Можно предположить, что снижение активности АПФ и увеличение ZPHL/HHL в 1-й группе служат ранним показателем генетической «поломки» клеток простаты при их малигнизации, предшествовавшей патоморфологически выявляемым изменениям. Такие специфические характеристики простатического АПФ могут быть использованы в качестве раннего маркера РПЖ. К сожалению, в дальнейшем пациенты 1-й группы с характеристиками АПФ, схожими с таковыми при РПЖ, отказались от дальнейшего участия по не зависимым от нас причинам.

Также в ходе исследования было высказано предположение, будто снижение активности АПФ в двух образцах ДГПЖ, полученных в ходе ТУР-простаты, могло быть обусловлено частичной денатурацией белка при термическом воздействии. В связи с этим в дальнейшем АПФ исследовался в образцах ткани простаты, полученных в ходе тонкоигольной биопсии или оперативно без применения коагуляции.

Во 2-й группе было исследовано по 7 образцов от пациентов с ДГПЖ и РПЖ. Были получены схожие результаты. Активность АПФ достоверно снижалась только в гомогенате ткани простаты с РПЖ (p=0,04). Соотношение ZPHL/HHL также достоверно увеличивалось только в образцах с РПЖ (p=0,031). Активность АПФ в тканях предстательной железы больных ДГПЖ была выше, чем в группе сравнения, соответствуя ранее полученным данным [9, 24]. Это могло подтверждать ранее выдвинутое предположение, будто при коагуляции во время ТУР-простаты происходила денатурация АПФ.

23-1.jpg (72 KB)

В серии экспериментов с образцами ткани пациентов 3-й группы получены сходные результаты: значительное снижение активности АПФ и значительное увеличение соотношения ZPHL/HHL для АПФ в ткани РПЖ. В этой группе был выявлен пациент (№ 3–8; рис. 2), чей фенотип АПФ соответствовал РПЖ, однако патоморфологически рак верифицирован не был. Мы продолжили за ним наблюдение после исследования, о чем будет сказано ниже.

24-1.jpg (28 KB)Проверка методики определения РПЖ на основании активности АПФ. Для подтверждения диагностической ценности исследования активности АПФ в дифференциальной диагностике РПЖ и ДГПЖ проведено фенотипирование АПФ на биоптатах еще двух групп пациентов. После обобщения всех ранее полученных данных активности АПФ простаты принято пороговое значение критерия ZPHL/HHL для постановки диагноза РПЖ >1,6 (рис. 3). Патоморфологическое исследование проводили одновременно с фенотипированием АПФ, таким образом, первоначальное количество образцов с РПЖ и ДГПЖ во время проведения экспериментов известно не было. Предварительный диагноз ставили на основании исследования АПФ, затем сравнивали с результатами патоморфологического исследования с иммуногистохимическим окрашиванием.

В ходе этой серии экспериментов снова было показано, что в случае РПЖ активность АПФ значительно снижается, в то время как соотношение ZPHL/HHL значительно увеличивается (рис. 4).

В образцах одного пациента 4-й группы (№ 4–4) и одного – 5-й (№ 5–1) была гистологически установлена ДГПЖ, однако отношение ZPHL/HHL было увеличено (как у пациентов с РПЖ). За этими пациентами велось тщательное наблюдение для выявления причин несоответствия биохимического и гистологического диагнозов. Данные этих пациентов будут представлены ниже.

24-2.jpg (82 KB)

Конформационный фингерпринтинг АПФ в ткани простаты. Ранее показано, что характер осаждения АПФ с моноклональными антителами – высокочувствительный инструмент для выявления локальных изменений на поверхности молекулы АПФ, связанных с денатурацией, ингибированием, мутацией или тканевой принадлежностью [25]. Чтобы оценить изменение структуры АПФ при патологических изменениях в простате, проведен конформационный фингерпринтинг АПФ с помощью панели мАт против различных участков на N- и С-доменах АПФ [25].

Доля АПФ, связанного антителами 3A5, i2H5, 5F1, 4E3, достоверно не отличалась от таковой группы сравнения. Однако доля АПФ, связанного мАТ 3F10, достоверно повышалась в образцах с РПЖ, особенно – ДГПЖ (рис. 5). Повышение соотношения 3F10/9B9 сохранялось в 4-й и 5-й группах.

25-1.jpg (77 KB)

В 3–5-й группах соотношение 4E3/9B9 не отличалось от группы сравнения для АПФ из тканей ДГПЖ и РПЖ, однако соотношение 3F10/9B9 достоверно возрастало относительно группы сравнения в большинстве образцов ДГПЖ и РПЖ (169%, p=0,0084 и 144%, p=0,0034 соответственно). Это может свидетельствовать о возможности использования соотношения 3F10/9B9 в качестве нового маркера развития тканевой гиперплазии независимо от ее характера. Эпитоп для мАТ 3F10 включает потенциальный участок сиалирования Asn 731 на С-домене [10, 26], изменения в котором могут объяснить увеличение отношения 3F10/9B9. Повышенное сиалирование при опухолевой трансформации, препятствующее апоптозу опухолевых клеток, связывают с повышенной экспрессией сиалотрансфераз [27, 28]. Клеточная и тканевая специфичность этих ферментов предполагает наличие уникального «сиалома» (вероятно, и у злокачественных клеток), который можно использовать при идентификации клеток [29].

Выдвинутое предположение, будто наблюдаемые изменения в связывании мАТ 3F10 с АПФ в ткани простаты при ДГПЖ и РПЖ (рис. 5) вызваны гиперсиалированием АПФ, может подтверждаться лучшим связыванием этого мАТ с более сиалированным АПФ плазмы крови [11].

Наблюдение за пациентами. В ходе исследования выявлены 5 пациентов с гистологическим диагнозом ДГПЖ и характеристиками АПФ, соответствовавшими РПЖ. По независимым причинам двое пациентов отказались от дальнейшего наблюдения. За оставшимися тремя пациентами с повышенным показателем ZPHL/HHL было продолжено наблюдение. У двух из них (№ 3–8 и № 5–1) присутствовали выраженные симптомы нижних мочевых путей и обструктивный тип мочеиспускания. В связи с этим пациентам было выполнено оперативное лечение: ТУР-простаты – для пациента 3–8 и чреспузырная аденомэктомия ввиду большого объема железы и высокого анестезиологического риска – для пациента 5–1. При гистологическом исследовании операционного материала этих пациентов РПЖ выявлен не был. За третьим пациентом (№ 4–4), у которого отсутствовали выраженные симптомы со стороны нижних мочевыводящих путей и которому не требовалось проведения операции, было продолжено наблюдение. Через год после первичной трансректальной биопсии предстательной железы в связи с повышением уровня общего ПСА и высокой вероятностью РПЖ по характеристикам АПФ простаты пациенту № 4–4 выполнена сатурационная биопсия предстательной железы, выявившая РПЖ pT1cN0M0, сумма баллов по Глисону – 3+3=6. Пациенту была выполнена робот-ассистированная простатэктомия. При изучении удаленного макропрепарата патоморфологический диагноз был подтвержден. Таким образом, благодаря результатам исследования АПФ у пациента № 4–4 был своевременно выявлен РПЖ на ранней стадии. Прогноз продолжительности жизни данного пациента наиболее благоприятный.

С учетом вышеизложенных особенностей пациентов с выявленными несовпадениями патоморфологического диагноза и фенотипа АПФ становится понятной необходимость их дальнейшего наблюдения. Так как исследование фенотипа простатического АПФ в имеющейся выборке соответствовало диагнозу РПЖ, а пациенты со спорными показателями, а именно несовпадением показателей АПФ и результатов биопсии, требуют к себе повышенного внимания ввиду возможного наличия изменений, предшествовавших малигнизации клеток простаты. Клинический случай пациента 4–4 подтверждает целесообразность пристального наблюдения за урологическими пациентами в случае несовпадения результатов оценки АПФ и патоморфологического исследования. Такие пациенты заслуживают пристального внимания и дальнейшего более подробного обследования урологом, что может обеспечить максимально раннее выявление РПЖ.

Заключение. Определение активности АПФ и его конформации в биоптатах простаты имеет потенциал раннего диагностического маркера РПЖ или дифференциально-диагностического критерия РПЖ. При РПЖ активность АПФ предстательной железы достоверно снижается. При этом выраженно повышается уровень отношения ZPHL/HHL, который при ДГПЖ и в группе сравнения не менялся. При возникновении гиперпластических заболеваний в предстательной железе (ДГПЖ, РПЖ) происходит изменение сиалирования АПФ, что отражается в связывании с мАТ 3F10. Данные изменения не наблюдаются в ткани простаты без ДГПЖ или РПЖ. При выявлении у пациента свойств АПФ простаты, характерных для РПЖ, при отрицательном результате патоморфологического исследования требуется более пристальное и подробное наблюдение за ним. Таким образом, пациенты, у которых при первичной биопсии простаты не был выявлен РПЖ, однако исследование фенотипа АПФ в простате говорит об обратном, могут быть отнесены к группе повышенного риска развития онкологического заболевания в предстательной железе. Однако ввиду малой выборки пациентов диагностический потенциал параметров АПФ простаты в отношении РПЖ и ДГПЖ требует подтверждения на большем числе пациентов в рамках дальнейших исследований для определения истинной предсказательной силы методик.

Список литературы

1. Torre L.A., Bray F., Siegel R.L., Ferlay J., Lortet-Tieulent J., Jemal A. Global cancer statistics, 2012. CA Cancer J Clin. 2015;65(2):87–108.

2. Malignant neoplasms in Russia in 2019 (morbidity and mortality) / ed. A.D. Kaprin, V.V. Starinsky A.O. Shakhzadova. M.: Herzen Moscow state research Institute, 2020. 239 p. Russian (Злокачественные новообразования в россии в 2019 году (заболеваемость и смертность) / под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, А.О. Шахзадовой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена, 2020. 239 с.).

3. Ahmed H.U. Prostate cancer: Melbourne consensus-noble but misguided. Nat Rev Urol. 2014;11(5):250–251.

4. Park S.C., Shin Y.S., Zhang L.T., Kim D.S., Kim S.Z., Park N.C., Ahn T.Y., Kim J.J., Lee S.W., So I., Park J.K. Prospective investigation of change in the prostate-specific antigens after various urologic procedures. Clin Interv Aging. 2015;10:1213–1218.

5. Filella X., Foj L. Emerging biomarkers in the detection and prognosis of prostate cancer. Clin Chem Lab Med. 2015;53(7):963–973.

6. Akin O., Sala E., Moskowitz C. S., Kuroiwa K., Ishill N. M., Pucar D., Scardino P.T., Hricak H. Transition zone prostate cancers: features, detection, localization, and staging at endorectal MR imaging. Radiology. 2006;239(3):784–792.

7. Pinter M., Jain R.K. Targeting the renin-angiotensin system to improve cancer treatment: Implications for immunotherapy. Sci Transl Med. 2017;9:410.

8. Krassnigg F., Niederhauser H., Fink E., Frick J., Schill W. B. Angiotensin converting enzyme in human seminal plasma is synthesized by the testis, epididymis and prostate. Int J Androl. 1989;12(1):22–28.

9. van Sande M., Inokuchi J., Nagamatsu A., Scharpe S., Neels H., Van Camp K.Tripeptidyl carboxypeptidase activity of angiotensin-converting enzyme in human tissues of the urogenital tract. Urol Int. 1985;40(2):100–102.

10. Kryukova O.V., Tikhomirova V.E., Golukhova E.Z., Evdokimov V.V., Kalantarov G.F., Trakht I.N., Schwartz D.E., Dull R.O., Gusakov A.V., Uporov I.V., Kost O.A., Danilov S.M. Tissue Specificity of Human Angiotensin I-Converting Enzyme. PLoS One. 2015;10(11):e0143455.

11. Danilov S.M., Tikhomirova V.E., Kryukova O.V., Balatsky A.V., Bulaeva N.I.,Golukhova E.Z., Bokeria L.A., Samokhodskaya L.M., Kost O.A. Conformational fingerprint of blood and tissue ACEs: Personalized approach. PLoS One. 2018;13(12):e0209861.

12. Nikolaeva M.A., Balyasnikova I.V., Alexinskaya M.A., Metzger R., Franke F.E.,Albrecht R.F., 2nd, Kulakov V.I., Sukhikh G.T., Danilov S.M. Testicular isoform of angiotensin I-converting enzyme (ACE, CD143) on the surface of human spermatozoa: revelation and quantification using monoclonal antibodies. Am J Reprod Immunol. 2006;55(1):54–68.

13. Lovgren J., Valtonen-Andre C., Marsal K., Lilja H., Lundwall A. Measurement of prostate-specific antigen and human glandular kallikrein 2 in different body fluids. J Androl. 1999;20(3):348–355.

14. Mottet N., Bellmunt J., Bolla M., Briers E., Cumberbatch M. G., De Santis M.,Fossati N., Gross T., Henry A. M., Joniau S., Lam T. B., Mason M. D., Matveev V. B., Moldovan P. C., van den Bergh R. C. N., Van den Broeck T., van der Poel H. G., van der Kwast T. H., Rouviere O., Schoots I. G., Wiegel T.,Cornford P. EAU-ESTRO-SIOG Guidelines on Prostate Cancer. Part 1: Screening, Diagnosis, and Local Treatment with Curative Intent. Eur Urol. 2017;71(4):618–629.

15. Javed S., Chadwick E., Edwards A. A., Beveridge S., Laing R., Bott S., Eden C.,Langley S. Does prostate HistoScanning play a role in detecting prostate cancer in routine clinical practice? Results from three independent studies. BJU Int. 2014;114(4):541–548.

16. Danilov S., Jaspard E., Churakova T., Towbin H., Savoie F., Wei L., Alhenc-Gelas F. Structure-function analysis of angiotensin I-converting enzyme using monoclonal antibodies. Selective inhibition of the amino-terminal active site. J Biol Chem. 1994;269(43):26806–26814.

17. Danilov S., Savoie F., Lenoir B., Jeunemaitre X., Azizi M., Tarnow L., Alhenc-Gelas F. Development of enzyme-linked immunoassays for human angiotensin I converting enzyme suitable for large-scale studies. J Hypertens. 1996;14(6):719–727.

18. Yokoyama M., Hiwada K., Kokubu T., Takaha M., Takeuchi M. Angiotensin-converting enzyme in human prostate. Clin Chim Acta. 1980;100(3):253–258.

19. Georgiadis D., Beau F., Czarny B., Cotton J., Yiotakis A., Dive V. Roles of the two active sites of somatic angiotensin-converting enzyme in the cleavage of angiotensin I and bradykinin: insights from selective inhibitors. Circ Res. 2003;93(2):148–154.

20. Skirgello O.E., Binevski P.V., Pozdnev V.F., Kost O.A. Kinetic probes for inter-domain co-operation in human somatic angiotensin-converting enzyme. Biochem J. 2005;391(3):641–647.

21. Danilov S.M., Balyasnikova I.V., Albrecht R.F., 2nd, Kost O.A. Simultaneous determination of ACE activity with 2 substrates provides information on the status of somatic ACE and allows detection of inhibitors in human blood. J Cardiovasc Pharmacol. 2008;52(1):90–103.

22. Wei L., Alhenc-Gelas F., Corvol P., Clauser E. The two homologous domains of human angiotensin I-converting enzyme are both catalytically active. J Biol Chem. 1991;266(14):9002–9008.

23. Petrov M.N., Shilo V.Y., Tarasov A.V., Schwartz D.E., Garcia J.G., Kost O.A.,Danilov S.M. Conformational changes of blood ACE in chronic uremia. PLoS One. 2012;7(11):e49290.

24. Nassis L., Frauman A.G., Ohishi M., Zhuo J., Casley D.J., Johnston C.I., Fabiani M.E. Localization of angiotensin-converting enzyme in the human prostate: pathological expression in benign prostatic hyperplasia. J Pathol. 2001;195(5):571–579.

25. Dhir R., Vietmeier B., Arlotti J., Acquafondata M., Landsittel D., Masterson R.,etzenberg R.H. Early identification of individuals with prostate cancer in negative biopsies. J Urol. 2004;171(4):1419–1423.

26. Naperova I.A., Balyasnikova I.V., Schwartz D.E., Watermeyer J., Sturrock E.D.,Kost O.A., Danilov S.M. Mapping of conformational mAb epitopes to the C domain of human angiotensin I-converting enzyme. J Proteome Res. 2008;7(8):3396–3411.

27. Bull C., Stoel M.A., den Brok M.H., Adema G.J. Sialic acids sweeten a tumor’s life. Cancer Res. 2014;74(12):3199–3204.

28. Schauer R., Kamerling J. P. Exploration of the Sialic Acid World. Adv Carbohydr Chem Biochem. 2018;75:1–213.

29. Cohen M., Varki A. The sialome far more than the sum of its parts. OMICS. 2010;14(4):455–464.

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: В. Н. Мамедов – врач-уролог, аспирант, кафедра урологии и андрологии факультета фундаментальной медицины МГУ им. М. В. Ломоносова, Москва, Россия; e-mail: mvadim_91@yahoo.com