ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Физиология вегетативной регуляции функций почек и мочевого пузыря. Клиническая значимость

В.Б. Бердичевский, Б.А. Бердичевский, Е.В. Сапоженкова, В.А. Шидин, А.Р. Гоняев, И.В. Павлова, А.Л. Болдырев

1) Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Тюменский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Тюмень, Россия; 2) ГБУЗ ТО «Областная клиническая больница № 2», Тюмень, Россия; 3) ООО МСЧ «Нефтяник», Тюмень, Россия
В представленном литературном обзоре отражены результаты поиска научных исследований в базах данных PubMed, Elibraru.ru с использованием ключевых слов «вегетативная регуляция», «функция почек», «функция мочевого пузыря», «мониторирование ЭКГ», «ПЭТ/КТ головного мозга». Анализировались публикации по вегетативному регулированию функций мочевого пузыря, контролю за артериальным давлением, частоте сердечных сокращений и специализированным функцям нефрона, находящегося в тесной взаимосвязи со стволовыми и корковыми центрами головного мозга. Результаты литературного анализа позволяют по-новому взглянуть на их причинно-следственное взаимоотношение и место каждой системы в формировании общего вегетативного тонуса. Предложенный интегративный подход к изучению настоящей проблемы раскрывает ранее неизвестные автономные вегетативные свойства органов, формирующих эту физиологическую ось, что принципиально важно для понимания механизмов формирования и рецидивирования многих урологических заболеваний.

Ключевые слова

почка
мочевой пузырь
мониторирование ЭКГ
ПЭТ/КТ головного мозга

В 2019 г. на страницах авторитетного американского научного журнала «Ядерная медицина и технологии» в статье «Характеристика и снижение радиоактивности мочевого пузыря при позитронно-эмиссионной томографии/компьютерной томографии (ПЭТ/КТ) с 18 F-флуцикловином» Petra Lovrec et al. описали интересное наблюдение, согласно которому воздержание от мочеиспускания перед инъекцией радиофармпепаратата 18 F-флуцикловина для ПЭТ/ КТ-исследования всего тела человека приводит к значительно более низкой радиоактивности мочевого пузыря, чем целенаправленное мочеиспускание перед инъекцией. Иными словами, вегетативное обеспечение фазы наполнения и опорожнения мочевого пузыря каким-то образом влияет на изменение активности молекулярно-клеточного метаболизма в почках, обеспечивающего процессы клубочковой фильтрации, канальцевой реабсорбции и секреции. Авторы считают, что механизмы, лежащие в основе этого явления, имеют чрезвычайно важную клиническую значимость и нуждаются в научном объяснении [1].

Имея собственный опыт проведения трансплантации почки и наблюдая за автономным поведением денервированного органа, трудно поверить, что вегетативная нервная система (ВНС) напрямую влияет на выполнение ими клубочковой фильтрации, канальцевой реабсорбции и секреции в теле нового хозяина. Трансплантат самостоятельно выбирает оптимальный режим для поддержания прежде всего своей жизнедеятельности и часто проявляет исчерпывающие автономные свойства защиты себя от агрессивного гуморального влияния метаболитов своего нового хозяина. Мы были свидетелями клинического наблюдения, когда через 3 года после трансплантации почки на фоне ее стабильного функционирования произошел тотальный панкреонекроз и гибель пациентки 45 лет от полиорганной недостаточности вследствие разлитого гнойного перитонита. Тяжелая аутоинтоксикация и жировая дистрофия всех органов и систем реципиента не коснулись трансплантата, который весь период фатального течения хирургической болезни эффективно защищал себя от губительного биохимического окружения [2]. Не значит ли это, что здоровая почка, являясь самодостаточной единицей тела человека, при определенных условиях через взаимодействие со структурными элементами вегетативной нервной системы способна инициировать физиологические эффекты, носящие адаптивное или даже оздоравливающее влияние и на себя, на остальные органы?

В процессе поиска ответа на этот вопрос, мы обратились к литературным базам данных Scopus, Web of Science, PubMed/MedLine, The Cochrane Library, eLIBRARY и другим доступным нам источникам. В результате поиска были найдены экспериментальные и клинические данные о том, что денервация собственных почек человека при злокачественной гипертонии достоверно разрывает симпатическую составляющую патогенеза этого вида нефрогенной гипертонии, а снижение интенсивности гемофильтрации в нефронах, оказавшихся под исключительно парасимпатическим влиянием, сопровождается оздоравливающим эффектом на течение нефропатии. Таким образом, прямого влияния вегетативной нервной системы на процессы мочеобразования не выявлено, однако сама почка способна вносить корректирующее влияние на активность центров вегетативного обеспечения организма человека в рамках дистанционного регулятора. И это научное направление может оказаться весьма перспективным в поиске ответов на многие вопросы [3–6].

Уже через 30 мин после пуска кровотока в пересаженной почке и наполнения ее сосудов артериальной кровью, насыщенной кислородом и биологически активными веществами, из мочеточника появляются первые капли окрашенной кровью мочи. Этот удивительный факт указывает на то, что перезагрузка почечной автономной системы начинается с восстановления клубочковой фильтрации воды в условиях нестабильности цитомембран нефрона [7–9].

В первые несколько суток после операции продолжается полиурия с умеренным повышением уровня креатинина как следствие сохраняющейся недостаточности клубочковой фильтрации. Адекватное наполнение кровью почки и достаточный тонус ее сосудов инициируют повышение активности фильтрационных способностей нефрона, при этом ренин-ангиотензин-альдостероновая система становится основным регулятором скорости клубочковой фильтрации (СКФ) за счет координации сопротивления афферентных и эфферентных артериол [10–12].

Таким образом показано, что симпатический отдел вегетативной нервной системы играет одну из первостепенных ролей в регуляции функций почек, а реиннервация трансплантата, возникающая через 12 мес. после операции, может приводить к рецидиву основной болезни реципиента, ставшей причиной потери функции собственных почек [13–18].

Другой важной причиной потери почечного аллотрансплантата является рецидивирующее заболевание клубочков, известное как хроническая нефропатия аллотрансплантата [19–22]. Практически все заболевания, поражающие нативную почку, рецидивируют при трансплантации почки. У большинства пациентов рецидив исходного заболевания имеет минимальное клиническое значение, и только около 5% всех потерь трансплантата происходят в результате рецидива заболевания. Спектр повторных нефропатий довольно широк и варьируется от полного рецидива заболевания с различными рисками потери трансплантата до рецидива специфических признаков заболевания [23–25].

Клиническая картина рецидива включает раннюю массивную протеинурию, часто проявляющуюся уже в первой порции мочи из трансплантата. Активное лечение явного рецидива плазмаферезом высокоэффективно, и вероятность успеха выше, когда плазмаферез начинается в течение первых 3–4 дней после трансплантации. Спасительное назначение ингибиторов ангиотензинпревращающего фермента, блокаторов рецепторов ангиотензина-2, а также нестероидных противовоспалительных препаратов может частично снижать протеинурию, однако без существенного влияния на выживаемость трансплантата. У взрослых риск посттрансплантационного рецидива нефропатий составляет приблизительно 3% в течение 3 лет. Однако в остальных случаях трансплантат эффективно защищается от гуморальной агрессии нового хозяина [26–29].

Еще одна причина, способствующая возвратной нефропатии, – это рецидив гипертензии, которая может быть связана с факторами, присутствующими до трансплантации почки, с самой процедурой трансплантации и развивающимися после трансплантации. Проявления артериальной гипертензии коррелируют с неблагоприятными почечными и сердечно-сосудистыми исходами и снижением выживаемости реципиентов почечного трансплантата [30–32].

Общепринято считать, что за иннервацию почек отвечают как симпатический, так и парасимпатический отделы вегетативной нервной системы. Грудно-поясничный симпатический отдел (T10-L1) обеспечивает вазомоторное влияние через грудопоясничный нерв посредством синапсов в почечных и чревных ганглиях. Парасимпатические волокна блуждающего нерва, волокна межбрыжеечного сплетения (S2–S4) через афферентные волокна, воспринимающие боль и инициирующие проявления тошноты и рвоты, убедительно указывают на прохождение афферентных импульсов по вагусному пути. Однако до сих пор мало информации о том, как высшие мозговые центры регулируют сложный процесс не только мочеиспускания, но и мочеобразования [30–32].

Известно, что почки играют центральную роль в регуляции гомеостаза сердечно-сосудистой системы, обеспечивая баланс между потребляемой и выводимой из организма жидкостью во время его повседневной деятельности. Это формирует стабильность объема внеклеточной жидкости и поддержание нормального уровня артериального давления. Сохранение баланса жидкостей обеспечивается нервным и гуморальным регулированием, причем первое определяет быструю динамическую реакцию на изменение потребления натрия, тогда как второе создает более медленную долгосрочную модуляцию натрия и воды. Физиологический уровень активности почечных симпатических нервов регулируется путем интеграции данных от сердечно-сосудистых барорецепторов высокого и низкого давления, соматосенсорной и висцеральной систем, а также поступающей информацией от высших вегетативных корковых центров гипоталамической и медуллярной областей мозга на уровне, соответствующем выполняемой деятельности. При патофизиологических состояниях, таких как артериальная гипертензия, сердечная недостаточность, хроническая нефропатия, может наблюдаться неадекватное симпатовозбуждение, усугубляющее тяжесть течения основной болезни. Функциональные исследования на животных подтвердили четкую связь между стимуляцией симпатического нерва и интенсивностью процессов клубочковой фильтрации, а также реабсорбции жидкости в проксимальных канальцах [33–35].

Основные функции почек заключаются в фильтрации крови, регулировании водно-электролитного баланса и выделении метаболических отходов с мочой. И действительно клинические и экспериментальные исследования показывают, что почечные симпатические (эфферентные) нервы играют важную роль в регуляции почечной функции, включая клубочковую фильтрацию, реабсорбцию натрия и высвобождение ренина. Почки также имеют чувствительную афферентную иннервацию, которая передает информацию в мозг для поддержания симпатической активности. Артериальная гипертензия и другие кардиометаболические заболевания, а возможно и нефропатии, связаны с гиперактивностью почечных симпатических и чувствительных нервов, но механистическое понимание этих взаимосвязей весьма ограниченно. Клиническое применение эндоваскулярной абляции почечных нервов для лечения гипертонии дали многообещающие результаты, следовательно, необходимо более глубокое изучение того, как корковые центры ВНС через почечные нервы контролируют почку в физиологических и патофизиологических условиях и как они могут быть связаны с функциональным состоянием нижних мочевыводящих путей [36, 37].

Симпатическая и парасимпатическая системы интегрированы друг с другом в центральной нервной системе и обеспечивают сбалансированную регуляцию иннервируемых органов. Определенные корковые структуры и гипоталамус вносят свой вклад в регуляцию вегетативных контуров в стволе головного и спинного мозга. Функция нижних мочевыводящих путей контролируется нервными цепями в головном и спинном мозге, которые координируют активность висцеральной гладкой мускулатуры в мочевом пузыре и уретре с активностью поперечнополосатой мускулатуры во внешнем сфинктере уретры. Восходящие пути соединяются со структурами в стволе головного мозга для выполнения рефлекторных функций, а также с высшими центрами мозга (поясной и лобной извилинами), опосредующими хранение и сознательное восприятие ощущений, возникающих в результате наполнения мочевого пузыря [38].

Спектральный анализ вариабельности сердечного ритма и артериального давления является мощным неинвазивным инструментом, который все чаще используется для определения изменений вегетативной регуляции сердечно-сосудистой системы при различных физиологических и патофизиологических состояниях, таких как артериальная гипертония, хроническая болезнь почек, дисфункция нижних мочевыводящих путей [39]. Оценку сегментарных механизмов вегетативной регуляции проводят по показателям HF (High Frequency) высокочастотного компонента, отражающего парасимпатическое влияние на органы-мишени, LF (Low Frequency), низкочастотного компонента отражающего преимущественно симпатическое влияние и надсегментарного, очень низкочастотного компонента VLF (Ultra Low Frequency), отражающего степень активности церебральных эрготропных систем. При этом доминирование низкочастотного компонента (LF), характеризующего преимущественно симпатическое влияние, зафиксировано в процессе накопления мочи и занимает 98% жизненного пространства человека, а высокочастотного компонента (HF), отражающего парасимпатическое влияние, проявляется в процессе принятия решения и реализации акта мочеиспускания [40].

Литературные данные по поводу значения корковых центров в контроле за мочеиспусканием весьма противоречивы. Одни считают, что передняя поясная извилина головного мозга, связанная с обеспечением сердечного ритма, может регулировать висцеральную активность через бетаи альфа-адренорецепторы функцию не только мочевого пузыря, но и почек. Проведение функциональной магнитно-резонансной томографии (МРТ) с одновременной электрокардиографией (ЭКГ) для изучения региональной активности мозга, показателей вариабельности сердечного ритма, а также мощности высоких и низких частот сердечного ритма выявило повышенную активность в передней части поясной извилины, связанную с симпатической модуляцией частоты сердечных сокращений, которая увеличивается во время наполнения мочевого пузыря [41, 42]. Другие авторы указывают на то, что раздражение передней области поясной извилины, находящейся под регулирующим влиянием гипоталамуса, через свои проекции с ядром блуждающего нерва сопровождается комплексом реакций, характерных для парасимпатического влияния ВНС, обеспечивающего процессы отдыха, восстановления и накопления энергетических ресурсов (урежение ритма сердца, снижение артериального давления, увеличение перистальтики кишечника и повышение тонуса детрузора). При этом раздражение задних отделов поясной извилины активирует комплекс реакций, характерных для симпатического влияния ВНС (тахикардия, повышение артериального давления и температуры тела, торможение перистальтики кишечника и снижение тонуса мочевого пузыря). По результатам специальных исследований установлено, что парагиппокамп, лобная доля, червь и передняя поясная кора активировались по мере наполнения мочевого пузыря, а таламус и задняя поясная извилина – во время или сразу после произвольного контроля мочеиспускания [43–45]. Центр мочеиспускания расположен в медиальной части ствола головного мозга и при стимуляции оказывает двойное действие, вызывая сокращение мышц детрузора и расслабление сфинктера уретры с последующим мочеиспусканием. При ПЭТ/КТсканировании головного мозга в момент мочеиспускания наблюдается гиперметаболизм в медиальной зоне ствола (ядра Баррингтона), а после мочеиспускания – в области латерального или сторожевого центра мочеиспускания. Импульсы от мочевого пузыря через стволовые центры контроля за мочеиспусканием поступают в корковые центры, позволяющие вызывать или подавлять рефлекс мочеиспускания. Иными словами, стволовые центры определяют протокол мочеиспускания (накапливать или опорожнять), а кора обеспечивает соблюдение этикета мочеиспускания (можно или нельзя) [46–48].

Таким образом, по результатам проведенного анализа доступной нам научной литературы можно высказать следующее предположение: снижение активности метаболизма меченой биомолекулы 18 F-флуцикловина в паренхиме почек и его поступления в мочевой пузырь в период целенаправленного воздержания от мочеиспускания, могло быть связано с активацией парасимпатического влияния на сосудистый тонус почечных артерий, сопровождающийся снижением интенсивности клубочной фильтрации, что нуждается в дополнительных исследованиях и уточнении [49 ].

Вегетативное обеспечение процессов наполнения и опорожнения мочевого пузыря, контроля за артериальным давлением, частотой сердечных сокращений и специализированными функциями нефрона находится в тесной взаимосвязи со стволовыми и корковыми центрами головного мозга. Эта функциональная ось позволяет по-новому взглянуть на их причинно-следственное взаимоотношение и выявить вклад каждой системы в формирование совместного жизненного пространства в организме конкретного человека. Интегративный подход к изучению настоящей проблемы позволит раскрыть новые ранее неизвестные автономные вегетативные свойства органов, формирующих физиологическую ось почка–ВНС–мочевой пузырь, их роль в нарушении кортикальных функций с развитием урологических заболеваний.

Список литературы

1. Lovrec P., Schuster D.M., Wagner R.H., Gabriel M., Savir-Baruch B. Characterizing and Mitigating Bladder Radioactivity on 18F-Fluciclovine PET/CT. J Nucl Med Technol. 2020;48(1):24–29. Doi: 10.2967/ jnmt.119.230581. Epub 2019 Oct 11. PMID: 31604898.

2. Berdichevskiy V.B., Berdichevskiy B.A, Sultanbaev R.A. Kidneu transplant urodinamics: Neuro physiologic consideration. Journal of Transplantology and Artificial Organs. 2014;16(1):85. //doi.org/10.15825/1995-1191-2014-1-85-88

3. Carrara M., Ferrario M., Bollen Pinto B. et al. The autonomic nervous system in septic shock and its role as a future therapeutic target: a narrative review. Ann. Intensive Care. 2021;11:80. https://doi.org/10.1186/s13613- 021-00869-7

4. Liang B., Liang Y., Li R. et al. Effect of renal denervation on long-term outcomes in patients with resistant hypertension. Cardiovasc Diabetol. 2021;20:117 . https://doi.org/10.1186/s12933-021-01309-3

5. Li L., Xiong Y.L., Hu Z., Yao Y. Effect of Renal Denervation for the Management of Heart Rate in Patients With Hypertension: A Systematic Review and Meta-Analysis. Front. Cardiovasc. Med. 2022;8:810321. Doi: 10.3389/fcvm.2021.810321.

6. Ansari Usman S., Leecorresponding Benjamin J. Renal Denervation in Hypertension Methodist Debakey Cardiovasc J. 2021;17(1):73–74. Doi: 10.14797/TPCC5120.

7. Butani L., Berg G., Makker S.P. Microhematuria after renal transplantation in children. Pediatric Nephrology. 2002;17(12):1038–1041. https://doi. org/10.1007/s00467-002-1000-5

8. Shane A. Bobart, Mariam P. Alexander, Khaled Shawwa. The association of microhematuria with mesangial hypercellularity, endocapillary hypercellularity, crescent score and renal outcomes in immunoglobulin A nephropathy Nephrol Dial Transplant. 2021;36(5):840–847. Doi: 10.1093/ ndt/gfz267.

9. Peng He, Xiaoyong Y., Yang Zha. Microhematuria Enhances the Risks of Relapse and Renal Progression in Primary Membranous Nephropathy Front. Med., 09 December 2021 https://doi.org/10.3389/fmed.2021.704830

10. Ardalana M., Argania Н., Mortazavia M. More urine is better after renal transplantation Transplantation Proceedings. 2003;35(7):2612–2613 https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2003.09.060Joel

11. Ranaweera Ruwan Arudchelvam Joel. Polyuria after Renal Transplantation: A Case Report and Review of Literature. June 2021Surgical Case Reports. Doi: 10.31487/j.SCR.2021.06.01.

12. Neranga Samarasinghe, Joel Arudchelvam, Ruwan Ranaweera, Mariathas Priatharshan. Polyuria after Renal Transplantation: A Case Report and Review of Literature. Surgical Case Reports. Doi: 10.31487/j. SCR.2021.06.01.

13. Buendia-Fuentes F. et al. Sympathetic reinnervation 1 year after heart transplantation, assessed using iodine-123 metaiodobenzylguanidine imaging. Transplant Proc. 2011;43:2247–2248. Doi: 10.1016/j. transproceed.2011.05.020.

14. Imamura T et al. Parasympathetic reinnervation accompaniedby improved post-exercise heart rate recovery and quality oflife in heart transplant recipients. Int Heart J. 2015;56:180–185. Doi: 10.1536/ihj.14-292.

15. Nicholas J. Montarello Tania Salehi Alex P. Bate Multimodality Tachycardia-Induced Stress Testing Predicts a Low-Risk Group for Early Cardiovascular Mortality After Renal Transplantation Open Access Published: October 22, 2020. Doi: https://doi.org/10.1016/j.ekir.2020.10.006.

16. Torres S. Hayden, Huesing Clara. Sympathetic innervation of the mouse kidney and liver arising from prevertebral ganglia. Burk, 25 AUG 2021. https://doi.org/10.1152/ajpregu.00079.2021

17. Christensen Anders., Nygaard Sissel, Rolid Katrine. Strong evidence for parasympathetic sinoatrial reinnervation after heart transplantation The Journal of Heart and Lung Transplantation Available online 15 November 2021 https://doi.org/10.1016/j.healun.2021.11.005.

18. Korsgren O., Jansson L., Andersson A., Sundler F. Reinnervation of transplanted pancreatic islets. A comparison among islets implanted into the kidney, spleen, and liver. Transplantation, 01 Jul 1993, 56(1):138–143. PMID: 7687393.

19. Hariharan S., Ajay K., Danovitch G. Long-Term Survival after Kidney Transplantation. N Engl J Med. 2021; 385:729–743 Doi: 10.1056/ NEJMra2014530/

20. Gillian Divard and Valentin Goutaudier Global Perspective on Kidney Transplantation: France. October 2021;2 (10):1637–1640; Doi: https://doi. org/10.34067/KID.0002402021

21. Raynaud M., Aubert O., Divard G. Dynamic prediction of renal survival among deeply phenotyped kidney transplant recipients using artificial intelligence: an observational, international, multicohort study. Open Access Published: October 27, 2021 DOI::https://doi.org/10.1016/S2589- 7500(21)00209-0

22. Sarier M., Yayar O., Yavuz A. Update on the Management of Urological Problems Following Kidney Transplantation. Urol Int. 2021;105:541–547. https://doi.org/10.1159/000512885

23. Li S.S. et al. A meta-analysis of renal outcomes in living kidney donors. Medicine (Baltimore). 2016;95:e3847.https://pubmed.ncbi.nlm.nih/ gov/27310964.

24. Matas A.J. et al. Causes and timing of end-stage renal disease after living kidney donation. Am. J Transplant. 2018;18:1140.https://pubmed.ncbi. nlm.nih.gov/29369517

25. Locke J.E. et al. Obesity increases the risk of end-stage renal disease among living kidney donors. Kidney Int. 2017;91:699. https://pubmed.ncbi.nlm. nih.gov/28041626

26. Allen P.J., Chadban S.J., Craig J.C., Lim WH., Allen R.D.M., Clayton P.A., et al. Recurrent glomerulonephritis after kidney transplantation: risk factors and allograft outcomes. Kidney Int. 2017;92(2):461–469. Doi: 10.1016/j. kint.2017.03.015.

27. Recurrent Crescentic Immunoglobulin A Nephropathy in the Graft Kidney Indian J Nephrol 2017; 27(5):335–336. Doi: 10.4103/0971-4065.175982.

28. Tang Z., Ji S.M., Chen D.R., Wen J.Q., Chen J.S., Liu Z.H., et al. Recurrent or de novo IgA nephropathy with crescent formation after renal transplantation. Ren Fail.2008;30:611–616. Doi: 10.1080/08860220802134516.

29. Deng R., Dai Y., Zhang H., Liu L., Li J., Xiong Y., et al. Higher Incidence of Renal Allograft Glomerulonephritis in Living Related Donor Kidney Transplantation. Transplant Proc. 2018;50(8):2421–2425. Doi:10. 1016/j. transproceed.2018.03.050.

30. Halimi, Jean-Michela,; Ortiz, Albertoc; Sarafidis Hypertension in kidney transplantation: a consensus statement of the ‘hypertension and the kidney’ working group of the European Society of Hypertension. Journal of Hypertension: 2021;39(8):1513–1521. Doi: 10.1097/ HJH.0000000000002879.

31. Lo[utradis C., Sarafidis P., Marinaki S. et al. Role of hypertension in kidney transplant recipients. J Hum Hypertens 35, 958–969 (2021). https://doi. org/10.1038/s41371-021-00540-5

32. Schwotzer Nora, Wuerzner Gregoire Hypertension after kidney transplantation September 2021. Revue Médicale Suisse. 2021;17(750):1571–1574.

33. Hansen J., Netter F. Netter's Atlas of Human Anatomy, 6th Edition, Philadelphia, Penn.: Sanders Elsevier. 2014;308-12, 316–318.

34. Johnl E.? Norvell James Е.? Anderson М. Assessment of possible parasympathetic innervation of the kidney Journal of the Autonomic Nervous System. 1983;8(3):291–294.

35. Zhang H., Reitz A., Kollias S., Summers P., Curt A, Schurch B. An fMRI study of the role of suprapontine brain structures in the voluntary voiding control induced by pelvic floor contraction. Neuroimage. 2005;24:174– 180. Doi: 10.1016/j.neuroimage.2004.08.027.

36. Edward J. Johns. Autonomic regulation of kidney function. Handb Clin Neurol. 2013;117:203–214. Doi: 10.1016/B978-0-444-53491-0.00017-1.

37. John W. Osborn, Roman Tyshynsky, Lucy Vulchanova. Function of Renal Nerves in Kidney Physiology and Pathophysiology Annu Rev Physiol. 2021;83:429–450. Doi: 10.1146/annurev-physiol-031620-091656.

38. Alexander М., Biering-Sorensen F., Wyndaele J-JInternational standards to document remaining autonomic function after spinal cord injury Spinal Cord. 2009;47:36–43. https://doi.org/10.1038/sc.2008.121

39. Tricia Adjei, Wilhelm von Rosenberg, Takashi Nakamura. The ClassA framework: HRV based assessment of SNS and PNS dynamics without LF-HF controversies. Frontiers in Physiology 10. Doi: 10.3389/ fphys.2019.00505.

40. Khan A.A., Lip G.Y.H., Shantsila A. Heart rate variability in atrial fibrillation: The balance between sympathetic and parasympathetic nervous system. Eur J Clin Invest. 2019;49(11):e13174. Doi: 10.1111/eci.13174.

41. Bhaskar A., Oommen V. A simple model for demonstrating the factors affecting glomerular filtration rate. Adv Physiol Educ. 2018;42(2):380–382. Doi: 10.1152/advan.00195.2017.

42. Komlosi P., Bell P.D., Zhang Z.R. Tubuloglomerular feedback mechanisms in nephron segments beyond the macula densa. Curr Opin Nephrol Hypertens. 2009;18(1):57–62. Doi: 10.1097/MNH.0b013e32831daf54

43. Critchley Н., Christopher J. Mathias, Oliver Josephs. Human cingulate cortex and autonomic control: converging neuroimaging and clinical evidence. Brain. 2003;126(10):2139–2152. https://doi.org/10.1093/ brain/awg216

44. Wu W., Su Y., Huang H., Chen M., Fan F., Zhu D., Li K., Guo Z., Liang Z. and Huang H. Neuroimaging Study Investigating the Supraspinal Control of Lower Urinary Tract Function in Man With Orthotopic Ileal Neobladder. Front. Surg. 2021;8:751236. Doi: 10.3389/fsurg.2021.751236.

45. Griffiths D. Functional imaging of structures involved in neural control of the lower urinary tract. Handb Clin Neurol. 2015;130:121–133. Doi: 10.1016/B978-0-444-63247-0.00007-9

46. Fowler C.J., Griffiths D.J. A decade of functional brain imaging applied to bladder control. Neurourol Urodyn. 2010;29:49–55. Doi: 10.1002/ nau.20740.

47. Nofzinger Е., Buysse Daniel J., Miewald Jean M. Human regional cerebral glucose metabolism during non-rapid eye movement sleep in relation to waking Brain. 2002;125(Pt 5):1105–1115. Doi: 10.1093/brain/awf103.

48. Berdichevsky V.B., Berdichevsky B.A. Complementari study of brain mеttabolism by combined posinron emission and computer tomography. International Journal of Radiology and Radiation Therapy. 2018;5(1):30.

49. David M. Schuster, Cristina Nanni, Stefano Fanti. Anti-1-Amino-3-18F- Fluorocyclobutane-1-Carboxylic Acid: Physiologic Uptake Patterns, Incidental Findings, and Variants That May Simulate Disease J Nucl Med. 2014;55(12):1986–1992. Doi: 10.2967/jnumed.114.143628.

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: Б. А. Бердичевский – д.м.н., профессор, профессор кафедры онкологии с курсом урологии ВГБОУ ВО «ТюмГМУ» Минзрава РФ, Тюмень, Россия; e-mail:doctor_bba@mail.ru

Также по теме