ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Источники проникновения бактерий в почку (обзор литературы. Часть II)

М.И. Коган, Ю.Л. Набока

1) Кафедра урологии и репродуктивного здоровья человека (с курсом детской урологии-андрологии) ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ, Ростов-на-Дону, Россия; 2) Кафедра микробиологии и вирусологии № 1 ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ, Ростов-на-Дону, Россия
Инфекции почек и верхних мочевыводящих путей считаются серьезной медицинской проблемой, по которой на постоянной основе ведутся экспериментальные и клинические исследования. Тем не менее этиологические факторы и патофизиологические механизмы развития острого инфекционного почечного воспаления недостаточно понятны. Это касается и вопроса об источниках проникновения бактерий в почку. Существующие на этот счет гипотезы имеют белые пятна. В настоящем обзоре всесторонне рассмотрены пути инвазии микроорганизмов в почку с развитием в ней острого воспаления. Представлены доказательства существующих воззрений, и проведен их критический анализ.

Ключевые слова

пути инвазии уропатогенов в почку
восходящий путь инфицирования
бактериемия
гематогенный путь инфицирования
транслокация бактерий из кишечника

Несмотря на многочисленные исследования, патофизиология острой почечной инфекции остается плохо понимаемой и как следствие – практически не расшифрованной.

E. coli – наиболее часто выявляемый в моче микроорганизм, приводящий к развитию острого почечного воспаления [1–4]. Принято считать, что именно фекальная микробиота хозяина, а у женщин и вагинальная, служит основным «поставщиком» E. coli в органы мочевой системы [5–9].

Еще в 1962 г. M. Turck и R. G. Petersdorf [10] предложили гипотезу распространения кишечной микробиоты в нижние мочевыводящие пути (НМП) человека, в 1997 г. S. Yamamoto et al. [11] предоставили якобы генетические доказательства фекально-перинельно-уретральной гипотезы развития острой инфекции НМП, обусловленной E. coli [11], показав генетическое подобие штаммов из кишечника и мочевых путей.

В общих чертах гипотеза выглядит следующим образом [7, 12–14]. В силу особенностей анатомии предполагается, что кожа промежности заселена различными таксонами микроорганизмов, имеющих кишечное происхождение, преимущественно E. coli. Естественным путем бактерии колонизируют слизистую преддверия влагалища, само влагалище и периуретральную область. Обладая жгутиками и вероятной способностью к передвижению, микроорганизмы заселяют уретру и продвигаются в мочевой пузырь. Периодический ток мочи по уретре, гидростатическое давление в мочевом пузыре служат фактором, препятствующим инфицированию НМП. Однако в ряде случаев вышеперечисленные факторы могут снижать степень колонизации мочи и обрывать ее, а иногда не могут этому воспрепятствовать. В итоге формируется бактериурия, чему способствуют механизмы адгезии микроорганизмов, опосредованная жгутиками подвижность, а также устойчивость ко многим и сложным антибактериальным факторам, которые защищают мочевыводящие пути от бактериальной агрессии. Бактерии способны прикрепляться к уротелию мочевого пузыря, а вызывая его повреждение, проникать в подэпителиальные ткани, формировать внутриклеточные биофильмы, что в конечном итоге приводит к развитию острого цистита [15]. Вопреки току мочи бактерии достигают лоханки, чашечек, сосочков, собирательных трубочек и почечных канальцев, что происходит вследствие пузырно-мочеточникового рефлюкса или внутрилюминальной подвижности [16]. Острое воспаление возникает в слизистой лоханки, сосочков и в почечных канальцах [8]. В связи с этим закономерно возникает вопрос: так почему же не у всех нас возникает инфекция мочевыводящих путей, если допустить их инфицированность? Дело в том, что уропатогенные бактерии, обладающие вирулентностью и способностью вызывать острый пиелонефрит (ОП), не постоянно присутствуют в фекально-промежностной флоре [7], а макроорганизм имеет мощный арсенал различных факторов врожденного иммунитета [17]. Итак, вирулентный потенциал бактерий все-таки преодолевает защитные механизмы хозяина и вызывает острое воспаление [7].

Таково предполагаемое развитие событий так называемого восходящего пути развития ОП. Гипотеза до сих пор не стала теорией, так как не было получено неоспоримых доказательств продвижения фекальных бактерий из промежности и периуретральной области в мочевыводящие пути (нижние и верхние). Хотя «восходящий» путь развития ОП был описан в эксперименте при трансуретральной инокуляции E. coli [16, 18, 19] и P. mirabilis [20]. Исходя из этой гипотезы, были смоделированы и многочисленные экспериментальные исследования на животных, в которых взвеси определенных бактерий вводили в мочевой пузырь, создавали временную обструкцию уретры и тем самым провоцировали развитие ОП [21]. Последующие биохимические, иммунологические, гистологические, генетические исследования позволили детально определить механизмы патогенеза пиелонефрита на клеточном и молекулярном уровнях [7, 12, 13, 22, 23].

Однако естествен и другой вопрос: а может ли острый пиелонефрит развиваться «нисходящим», т.е. гематогенным, путем без предшествующей мочепузырной инфекции? Да, может, но редко [15, 24], свидетельствуют данные литературы. Так, внутривенное введение мышам грамотрицательных бактерий (E. coli, P. aeruginosa, P. mirabilis) редко приводит к пиелонефриту [25]. В то же время необходимо отметить, что исследования «нисходящего» пути развития пиелонефрита у человека крайне немногочисленны [26]. Напротив, эксперименты последних двух десятилетий показали, что окклюзия одного из мочеточников и введение в лоханку бактериальных взвесей различных микроорганизмов (E. coli, S. haemolyticus, P. niger, Eubacterium spp., Propionibactewrium spp., Bacteroides spp.), а также их комбинаций (E. coli+P. niger) во всех случаях воспроизводят ОП, скорость развития, тяжесть повреждения и морфологические особенности воспалительной реакции хозяина которого напрямую связаны с родом и/или видом микроорганизма [27–29]. То есть не было найдено полного подобия с ОП, вызываемым E.coli. Очень мало исследований по изучению механизмов гематогенного развития ОП представителями грамположительной флоры [26]. Хотя давно известно, что стафилококки, в частности S. aureus, распространяясь гематогенным путем, приводят к развитию ОП [24, 30, 31]. Микроскопические грибы также описаны в качестве инфекционного агента при гематогенной диссеминации [24]. Стрептококки группы В как одна из частых причин бактериемии у взрослых способны вызывать гематогенным путем острый неосложненный пиелонефрит [32]. Причем сравнение в эксперименте на мышах «нисходящего» и «восходящего» путей инфицирования в попытке вызвать ОП показало, что гематогенное инфицирование почек стрептококками группы В приводит к развитию типичного воспалительного ответа в почке, а при «восходящем» пути пиелонефрит не развивался [26]. Таким образом, бактериемия, обусловленная стрептококками группы В, служит источником развития гематогенного ОП [26]. В недавних клинических исследованиях показано, что такие таксоны грамположительных микроорганизмов, как Staphylococcus saprophyticus [33] и Listeria monocytogenes [34], способны инициировать бактериемию и как следствие – неосложненный гематогенный ОП. Подобные случаи бактериемии и ОП описаны в связи с Actinobaculum schaalii [35], Corynebacterium spp. и Lactobacillus spp. [36, 37]. Конечно, каждый из родов и/или видов микроорганизмов может иметь общие с другими бактериями или особенные очаги первичного инфицирования для дальнейшего развития бактериемии. По этой причине в клинической практике не всегда удается определить первоисточник бактериемии. В частности, для стрептококков группы В это могут быть инфекции кожи или мягких тканей, инфекции репродуктивного тракта или легких. Однако ввиду того, что подавляющее большинство инфекций мочевой системы вызывается все же грамотрицательными бактериями, среди которых доминируют представители семейства Enterobacteriaceae, чрезвычайно важно понять: каковы первоисточники бактериемии для этих бактерий? Итак, могут ли представители фекальной флоры попасть в мочевыводящие пути исключительно «восходящим» путем или возможен и «нисходящий» гематогенный трансфер? То есть является ли желудочно-кишечный тракт (ЖКТ), в частности один из его представителей – E. coli, источником развития бактериального сепсиса?

На текущий момент в качестве важнейшего механизма проникновения E. coli в кровоток рассматривается процесс ее транслокации через кишечный барьер [38–43].

Механизм транслокации можно представить следующим образом. В нормальных условиях слизистая оболочка кишечника функционирует как барьер, препятствующий выходу бактерий из просвета кишки. Различные критические факторы могут нарушать барьерную функцию слизистой кишечника. К этим факторам следует отнести прежде всего нарушения мезентериального кровотока вследствие дилатации желудка, кишечного рефлюкса, портальной гипертензии, кишечной непроходимости. Создавшиеся условия способствуют ослаблению перфузии тканей, критическому снижению оксигенации и клеточному ацидозу слизистой оболочки. Ацидоз приводит к увеличению проницаемости слизистой с образованием активных форм кислорода, что вызывает отслоение энтероцитов от базальной мембраны и апоптоз. Ишемия обусловливает расщепление муцина, в связи с чем панкреатические ферменты повышают проницаемость слизистой, вызывая гибель энтероцитов и активацию лейкоцитов. Транслокация бактерий и токсинов возможна через эпителиальный слой бляшки Пейера в брыжеечные лимфоузлы, воротную вену и далее в печень либо через лимфатические сосуды, грудной проток в системное кровообращение [44–47]. В экспериментальных исследованиях на мышах установлено, что не все бактерии в равной степени способны преодолевать кишечный барьер [48, 49]. В частности, грамотрицательные кишечные бактерии легко перемещаются в брыжеечные лимфоузлы, а грамположительные таксоны микроорганизмов проявляют в этом меньшую способность. Вопрос о транслокации анаэробных бактерий на сегодняшний день практически не изучен [50]. Эндотоксины также проникают в кровеносную и лимфатическую системы, вызывая многочисленные эффекты в виде активации продукции цитокинов, тромбоцитарных факторов, системы комплемента, что в целом усиливает септическое состояние [39]. Установлено, что транслокационные свойства бактерий имеют большее, чем повреждение слизистой, значение в развитии сепсиса [39].

Еще в 1999 г. J. MacFie et al. [40] доказали, что колонизация проксимальных отделов кишечника связана с повышенной бактериальной транслокацией и септической морбидностью. Как только эпителиальный барьер оказывается поврежденным, бактерии и эндотоксины, попадая в сосудистое русло, вызывают ответную реакцию иммунной системы, а воспаление в ответ на продукцию эндогенных цитокинов является по сути синдромом системной воспалительной реакции (SIRS), что обусловливает неблагоприятные исходы.

Начало XXI в. ознаменовалось исследованиями взаимосвязи микробиоты кишечника, крови, почки и мочи при ОП, основой для которых послужили крупномасштабные работы по транслокации кишечной микробиоты в системный кровоток. Прежде всего было показано, что некоторые штаммы E. coli, относящиеся к нормальной микрофлоре человека [51–55] и животных [56, 57], обладают лучшей способностью к транслокации, чем другие представители симбионтной микрофлоры. В настоящее время определено, к каким именно филогенетическим группам относится уропатогенная кишечная палочка (УПКП): чаще всего это группа В2, реже – группа Д (всего описано 4 филогруппы, еще А и В1). Некоторые клональные группы E. coli в ЖКТ показали практически одинаковую способность к адгезии и колонизации как к эпителиальным клеткам кишечника, так и мочевого тракта [58–60]. Еще в 1991 г. A. Brauner et al. [61] констатировали идентичность штаммов E. coli в крови, моче и фекалиях пациентов с бактериемией, что, на их взгляд, подтверждало распространение бактерий из ЖКТ через кровь в мочу. Однако недавнее исследование A. McNally et al. [62], основанное на геномном секвенировании, не выявило идентичности штаммов E. coli в крови и моче пациентов с уросепсисом. Однако в указанных работах речь ведется о штаммах E. coli именно при уросепсисе, а не при ОП, осложненном сепсисом или являющемся одним из локусов его поражения. Изучение взаимодействия уросептической E. coli с почечными и интестинальными клеточными мишенями показало, что штаммы E. coli, верифицированные в крови пациентов с уросепсисом, в равной мере способны адгезироваться и транслоцироваться сквозь обе эти линии клеток [63]. Это означает, что E. coli, обнаруженные в моче пациентов с ИМП, могут транслоцироваться как из ЖКТ, так и из мочевыводящих путей, т.е. у этих пациентов не только мочевой тракт может быть источником септицемии. Лабораторная модель транслокации дает возможность понять, что ЖКТ в дополнение к почке служит источником, т.е. потенциальным сайтом для транслокации [63]. Наличие Р-фимбрий у уросептических штаммов также может свидетельствовать об их кишечном происхождении. Вместе с тем не было обнаружено полной идентичности генов вирулентности у штаммов E. coli, выделенных из крови и кишечника, что дает повод думать, что штаммы E. coli могут быть новым патотипом [42, 53]. Установлено, что штаммы E.coli, вызывающие уросепсис у госпитальных больных и больных из коммюнити, имеют различную экспрессию факторов вирулентности [38, 64, 65]. Предполагается, что штаммы E. coli у госпитальных больных могут попадать в кровь либо из верхних мочевыводящих путей, либо напрямую транслоцироваться из кишечника [38], так как в кишечнике пациентов с уросепсисом и в мочевыдящих путях были найдены идентичные штаммы E. coli в большом количестве [66].

Однако до настоящего времени как лабораторные, так и клинические исследования не разрешили всех сомнений относительно путей проникновения УПКП в кровь: либо из кишечника, либо из верхних мочевыводящих путей, либо из обоих биотопов. Считается, что непременным условием для транслокации УПКП из кишечника является их мощное размножение в нем и ослабленная иммунная система хозяина. Истинное понимание путей развития острой почечной инфекции и бактериального сепсиса, возможно, сможет быть в будущем достоверно объяснено проникновением этих бактерий из кишечника.

Таким образом, две гипотезы путей развития острого почечного воспаления сосуществуют и нуждаются в расширении доказательной базы. Только экспериментальными исследованиями проблему вряд ли удастся решить. Необходимы и весомые аргументы, которые следует получить в клинической работе.

Список литературы

1. Jameson J.L., Loscalzo J. Harrison’s Nephrology and Acid-Base Disorders (Harrison’s Medical Guides). 1st Edition. McGraw-Hill Professional; 2010.

2. Grossman S., Porth C.M., Conelius J., Gerard S.O., Moriber N., O’Shea E.R., Wheeler K., Bautista C. Porth’s Pathophysiology: Concepts of Altered Health States-9th edition. Nursing and Health Studies Faculty Book Gallery; 2014.

3. Lange D., Scotland K.B. (Eds.). The Role of Bacteria in Urology. Springer Nature Switzerland AG; 2019.

4. Belyayeva M., Jeong J.M. Acute Pyelonephritis.

5. Sintsova A., Frick-Cheng A.E., Smith S., Pirani A., Subashchandrabose S., Snitkin E.S., Mobley H. Genetically diverse uropathogenic Escherichia coli adopt a common transcriptional program in patients with UTIs. Elife. 2019;8:e49748. Doi: 10.7554/eLife.49748.

6. Ejrnæs K. Bacterial characteristics of importance for recurrent urinary tract infections caused by Escherichia coli. Dan Med Bull. 2011;58(4):B4187. PMID: 21466767.

7. Ragnarsdóttir B., Svanborg C. Susceptibility to acute pyelonephritis or asymptomatic bacteriuria: host-pathogen interaction in urinary tract infections. Pediatr Nephrol. 2012;27(11):2017–2029. Doi: 10.1007/s00467-011-2089-1.

8. Choong F.X., Antypas H., Richter-Dahlfors A. Integrated Pathophysiology of Pyelonephritis. Microbiol Spectr. 2015;3(5). Doi: 10.1128/microbiolspec.UTI-0014-2012.

9. Ejrnæs K., Stegger M., Reisner A., Ferry S., Monsen T., Holm S.E., Lundgren B., Frimodt-Møller N. Characteristics of Escherichia coli causing persistence or relapse of urinary tract infections: phylogenetic groups, virulence factors and biofilm formation. Virulence. 2011;2(6):528–537. Doi: 10.4161/viru.2.6.18189.

10. Turck M., Petersdorf R.G. The epidemiology of nonenteric Escherichia coli infections: prevalence of serological groups. J Clin Invest. 1962;41(9):1760–1765. Doi: 10.1172/JCI104635.

11. Yamamoto S., Tsukamoto T., Terai A., Kurazono H., Takeda Y., Yoshida O. Genetic evidence supporting the fecal-perineal-urethral hypothesis in cystitis caused by Escherichia coli. J Urol. 1997;157(3):1127–1129. PMID: 9072556.

12. Vysakh A., Raji N.R., Suma D., Jayesh K., Jyothis M., Latha M.S. Role of antioxidant defence, renal toxicity markers and inflammatory cascade in disease progression of acute pyelonephritis in experimental rat model. Microb Pathog. 2017;109:189–194. Doi: 10.1016/j.micpath.2017.05.047.

13. Li K., Wu K.Y., Wu W., Wang N., Zhang T., Choudhry N., Song Y., Farrar C.A., Ma L., Wei L.L., Duan Z.Y., Dong X., Liu E.Q., Li Z.F., Sacks S.H., Zhou W. C5aR1 promotes acute pyelonephritis induced by uropathogenic E.coli. JCI Insight. 2017;2(24):e97626. Doi: 10.1172/jci.insight.97626.

14. McLellan L.K., Hunstad D.A. Urinary Tract Infection: Pathogenesis and Outlook. Trends Mol Med. 2016;22(11):946–957. Doi: 10.1016/j.molmed.2016.09.003.

15. Shields J., Maxwell A.P. Acute pyelonephritis can have serious complications. Practitioner. 2010;254(1728):19, 21, 23–24, 2. PMID: 20486480.

16. Lane M.C., Alteri C.J., Smith S.N., Mobley H.L. Expression of flagella is coincident with uropathogenic Escherichia coli ascension to the upper urinary tract. Proc Natl Acad Sci USA. 2007;104(42):16669–16674. Doi: 10.1073/pnas.0607898104.

17. Ragnarsdóttir B., Fischer H., Godaly G., Grönberg-Hernandez J., Gustafsson M., Karpman D., Lundstedt A.C., Lutay N., Rämisch S., Svensson M.L., Wullt B., Yadav M., Svanborg C. TLR- and CXCR1-dependent innate immunity: insights into the genetics of urinary tract infections. Eur J Clin Invest. 2008;38(2):12–20. Doi: 10.1111/j.1365-2362.2008.02004.x.

18. Hvidberg H., Struve C., Krogfelt K.A., Christensen N., Rasmussen S.N., Frimodt-Møller N. Development of a long-term ascending urinary tract infection mouse model for antibiotic treatment studies. Antimicrob Agents Chemother. 2000;44(1):156–163. Doi: 10.1128/aac.44.1.156-163.2000.

19. Hagberg L., Engberg I., Freter R., Lam J., Olling S., Svanborg Edén C. Ascending, unobstructed urinary tract infection in mice caused by pyelonephritogenic Escherichia coli of human origin. Infect Immun. 1983;40(1):273–283. PMID: 6339403; PMCID: PMC264845.

20. Johnson D.E., Russell R.G., Lockatell C.V., Zulty J.C., Warren J.W., Mobley H.L. Contribution of Proteus mirabilis urease to persistence, urolithiasis, and acute pyelonephritis in a mouse model of ascending urinary tract infection. Infect Immun. 1993;61(7):2748–2754. PMID: 8514376; PMCID: PMC280917.

21. Carey A.J., Tan C.K., Ipe D.S., Sullivan M.J., Cripps A.W., Schembri M.A., Ulett G.C. Urinary tract infection of mice to model human disease: Practicalities, implications and limitations. Crit Rev Microbiol. 2016;42(5):780–799. Doi: 10.3109/1040841X.2015.1028885.

22. Li B., Haridas B., Jackson A.R., Cortado H., Mayne N., Kohnken R., Bolon B., McHugh K.M., Schwaderer A.L., Spencer J.D., Ching C.B., Hains D.S., Justice S.S., Partida-Sanchez S., Becknell B. Inflammation drives renal scarring in experimental pyelonephritis. Am J Physiol Renal Physiol. 2017;312(1):F43–F53. Doi: 10.1152/ajprenal.00471.2016.

23. Kudinha T., Kong F., Johnson J.R., Andrew S.D., Anderson P., Gilbert G.L. Multiplex PCR-based reverse line blot assay for simultaneous detection of 22 virulence genes in uropathogenic Escherichia coli. Appl Environ Microbiol. 2012;78(4):1198–1202. Doi: 10.1128/AEM.06921-11.

24. Measley Jr R.E., Levison M.E. Host defense mechanisms in the pathogenesis of urinary tract infection. Med Clin North Am. 1991;75(2):275–286. Doi: 10.1016/s0025-7125(16)30453-9.

25. Gorrill R.H., Denavasquez S.J. Experimental pyelonephritis in the mouse produced by Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa and Proteus mirabilis. J Pathol Bacteriol. 1964;87:79–87. Doi: 10.1002/path.1700870112.

26. Sullivan M.J., Ulett G.C. Evaluation of hematogenous spread and ascending infection in the pathogenesis of acute pyelonephritis due to group B streptococcus in mice. Microb Pathog. 2020;138:103796. Doi: 10.1016/j.micpath.2019.103796.

27. Kogan M.I., Pasechnik D.G., Naboka Yu.L., Ibishev Kh.S., Gazaev Z.I., Gudima I.A. Non-clostridial anaerobic bacteria can cause acute pyelonephritis? (an experimental trial). Urologiia. 2012;(2):8-13. Russian (Коган М.И., Пасечник Д.Г., Набока Ю.Л., Ибишев Х.С., Газаев З.И., Гудима И.А. Могут ли неклостридиально-анаэробные бактерии вызывать острый пиелонефрит? (экспериментальная модель). Урология. 2012;(2):8–13.

28. Pasechik D.G., Naboka Y.L., Mitusova E.V., Ibishev H.S., Gazaev Z.I. A Comparative analysis of development of the experimental acute pyelonephritis caused by different nonclostridial anaerobes. Urology Herald. 2013;(1):8–20. Doi: 10.21886/2308-6424-2013-0-1-8-20. Russian (Пасечник Д.Г., Набока Ю.Л., Митусова Е.В., Ибишев Х.С., Газаев З.И. Сравнительный анализ течения экспериментального острого обструктивного пиелонефрита, вызванного различными неклостридиально-анаэробными бактериями. Вестник урологии. 2013;(1):8–20).

29. Pasechnik D.G., Gudima I.A., Kogan M.I., Mitusova E.V., Ibishev K.S., Bejanyan S.K., Gazayev Z.I., Naboka Y.L. Do non-clostridial anaerobic bacteria cause of acute pyelonephritis in ureter obstruction? Medical news of North Caucasus. 2016;11(2):207–210. Doi: 10.14300/mnnc.2016.11038.

30. Smith W., Hale J.H., Smith M.M. The role of coagulase in staphylococcal infections. Br J Exp Pathol. 1947;28(1):57–67. PMID: 20290308; PMCID: PMC2073007.

31. Pytel A., Ryabinsky V., Rodoman V. On morphological peculiarities of the urinary leucocytes in inflammatory diseases of kidneys and urinary tract. Urol Int. 1968;23(5):377–387. Doi: 10.1159/000279574. PMID: 5703943.

32. Blanco J.D., Gibbs R.S., Castaneda Y.S. Bacteremia in obstetrics: clinical course. Obstet Gynecol. 1981;58(5):621–625. PMID: 7301239.

33. Chen C.H. Staphylococcus saprophyticus bacteremia with pyelonephritis cured by gentamicin. J Formos Med Assoc. 2014;113(7):483–484. Doi: 10.1016/j.jfma.2012.11.003.

34. Uno S., Hase R., Toguchi A., Otsuka Y., Hosokawa N. Pyelonephritis with bacteremia caused by Listeria monocytogenes: A case report. J Infect Chemother. 2017;23(2):111–113. Doi: 10.1016/j.jiac.2016.08.006.

35. Non L.R., Nazinitsky A., Gonzalez M.D., Burnham C.A., Patel R. Actinobaculum schaalii bacteremia: A report of two cases. Anaerobe. 2015;34:84–85. Doi: 10.1016/j.anaerobe.2015.04.006.

36. Ahmad N.M., Ahmad K.M. Corynebacterium minutissimum pyelonephritis with associated bacteraemia: a case report and review of literature. J Infect. 2005;51(5):e299–303. Doi: 10.1016/j.jinf.2005.02.026.

37. Chazan B., Raz R., Shental Y., Sprecher H., Colodner R. Bacteremia and pyelonephritis caused by Lactobacillus jensenii in a patient with urolithiasis. Isr Med Assoc J. 2008;10(2):164–165. PMID: 18432039.

38. Owrangi B., Masters N., Kuballa A., O’Dea C., Vollmerhausen T.L., Katouli M. Invasion and translocation of uropathogenic Escherichia coli isolated from urosepsis and patients with community-acquired urinary tract infection. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2018;37(5):833–839. Doi: 10.1007/s10096-017-3176-4.

39. Ljungdahl M., Lundholm M., Katouli M., Rasmussen I., Engstrand L., Haglund U. Bacterial translocation in experimental shock is dependent on the strains in the intestinal flora. Scand J Gastroenterol. 2000;35(4):389–397. Doi: 10.1080/003655200750023958.

40. MacFie J., O’Boyle C., Mitchell C.J., Buckley P.M., Johnstone D., Sudworth P. Gut origin of sepsis: a prospective study investigating associations between bacterial translocation, gastric microflora, and septic morbidity. Gut. 1999;45(2):223–228. Doi: 10.1136/gut.45.2.223.

41. Reddy B.S., MacFie J., Gatt M., Macfarlane-Smith L., Bitzopoulou K., Snelling A.M. Commensal bacteria do translocate across the intestinal barrier in surgical patients. Clin Nutr. 2007;26(2):208–215. Doi: 10.1016/j.clnu.2006.10.006.

42. Ramos N.L., Saayman M.L., Chapman T.A., Tucker J.R., Smith H.V., Faoagali J., Chin J.C., Brauner A., Katouli M. Genetic relatedness and virulence gene profiles of Escherichia coli strains isolated from septicaemic and uroseptic patients. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2010;29(1):15–23. Doi: 10.1007/s10096-009-0809-2.

43. McNally A., Alhashash F., Collins M., Alqasim A., Paszckiewicz K., Weston V., Diggle M. Genomic analysis of extra-intestinal pathogenic Escherichia coli urosepsis. Clin Microbiol Infect. 2013;19(8):E328–334. Doi: 10.1111/1469-0691.12202.

44. Berg R.D., Garlington A.W. Translocation of certain indigenous bacteria from the gastrointestinal tract to the mesenteric lymph nodes and other organs in a gnotobiotic mouse model. Infect Immun. 1979;23(2):403–411. PMID: 154474; PMCID: PMC414179.

45. Deitch E.A., Berg R. Bacterial translocation from the gut: a mechanism of infection. J Burn Care Rehabil. 1987;8(6):475–482. PMID: 3125184.

46. Olofsson P., Nylander G., Olsson P. Endotoxin: routes of transport in experimental peritonitis. Am J Surg. 1986;151(4):443-446. Doi: 10.1016/0002-9610(86)90098-x.

47. Wells C.L., Maddaus M.A., Erlandsen S.L., Simmons R.L. Evidence for the phagocytic transport of intestinal particles in dogs and rats. Infect Immun. 1988;56(1):278–282. PMID: 3335406; PMCID: PMC259271.

48. Steffen E.K., Berg R.D., Deitch E.A. Comparison of translocation rates of various indigenous bacteria from the gastrointestinal tract to the mesenteric lymph node. J Infect Dis. 1988;157(5):1032–1038. Doi: 10.1093/infdis/157.5.1032.

49. Cruz N., Lu Q., Alvarez X., Deitch E.A. Bacterial translocation is bacterial species dependent: results using the human Caco-2 intestinal cell line. J Trauma. 1994;36(5):612–616. PMID: 8189459.

50. Deitch E.A. Role of bacterial translocation in necrotizing enterocolitis. Acta Paediatr Suppl. 1994;396:33–36. Doi: 10.1111/j.1651-2227.1994.tb13239.x.

51. Hilali F., Ruimy R., Saulnier P., Barnabé C., Lebouguénec C., Tibayrenc M., Andremont A. Prevalence of virulence genes and clonality in Escherichia coli strains that cause bacteremia in cancer patients. Infect Immun. 2000;68(7):3983–3989. Doi: 10.1128/iai.68.7.3983-3989.2000.

52. Katouli M., Brauner A., Haghighi L.K., Kaijser B., Muratov V., Möllby R. Virulence characteristics of Escherichia coli strains causing acute cystitis in young adults in Iran. J Infect. 2005;50(4):312–321. Doi: 10.1016/j.jinf.2004.05.021.

53. Macutkiewicz C., Carlson G., Clark E., Dobrindt U., Roberts I., Warhurst G. Characterisation of Escherichia coli strains involved in transcytosis across gut epithelial cells exposed to metabolic and inflammatory stress. Microbes Infect. 2008;10(4):424–431. Doi: 10.1016/j.micinf.2008.01.001.

54. Ljungdahl M., Lundholm M., Katouli M., Rasmussen I., Engstrand L., Haglund U. Bacterial translocation in experimental shock is dependent on the strains in the intestinal flora. Scand J Gastroenterol. 2000;35(4):389–397. Doi: 10.1080/003655200750023958.

55. Nettelbladt C.G., Katouli M., Bark T., Svenberg T., Möllby R., Ljungqvist O. Evidence of bacterial translocation in fatal hemorrhagic pancreatitis. J Trauma. 2000;48(2):314–315. Doi: 10.1097/00005373-200002000-00021.

56. Katouli M., Nettebladt C.G., Muratov V., Ljungqvist O., Bark T., Svenberg T., Möllby R. Selective translocation of coliform bacteria adhering to caecal epithelium of rats during catabolic stress. J Med Microbiol. 1997;46(7):571–578. Doi: 10.1099/00222615-46-7-571.

57. Nettelbladt C.G., Katouli M., Bark T., Svenberg T., Möllby R., Ljungqvist O. Orally inoculated Escherichia coli strains colonize the gut and increase bacterial translocation after stress in rats. Shock. 2003;20(3):251–256. Doi: 10.1097/01.shk.0000068324.41183.c2.

58. Katouli M., Nettebladt C.G., Muratov V., Ljungqvist O., Bark T., Svenberg T., Möllby R. Selective translocation of coliform bacteria adhering to caecal epithelium of rats during catabolic stress. J Med Microbiol. 1997;46(7):571–578. Doi: 10.1099/00222615-46-7-571.

59. Ramos N.L., Saayman M.L., Chapman T.A., Tucker J.R., Smith H.V., Faoagali J., Chin J.C., Brauner A., Katouli M. Genetic relatedness and virulence gene profiles of Escherichia coli strains isolated from septicaemic and uroseptic patients. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2010;29(1):15–23. Doi: 10.1007/s10096-009-0809-2.

60. Tullus K., Kühn I., Orskov I., Orskov F., Möllby R. The importance of P and type 1 fimbriae for the persistence of Escherichia coli in the human gut. Epidemiol Infect. 1992;108(3):415–421. Doi: 10.1017/s095026880004992x.

61. Brauner A., Kaijser B., Wretlind B., Kühn I. Characterization of Escherichia coli isolated in blood, urine and faeces from bacteraemic patients and possible spread of infection. APMIS. 1991;99(4):381–386. PMID: 2036220.

62. McNally A., Alhashash F., Collins M., Alqasim A., Paszckiewicz K., Weston V., Diggle M. Genomic analysis of extra-intestinal pathogenic Escherichia coli urosepsis. Clin Microbiol Infect. 2013;19(8):E328–334. Doi: 10.1111/1469-0691.12202.

63. Vollmerhausen T.L., Woods J.L., Faoagali J., Katouli M. Interactions of uroseptic Escherichia coli with renal (A-498) and gastrointestinal (HT-29) cell lines. J Med Microbiol. 2014;63(12):1575–1583. Doi: 10.1099/jmm.0.076562-0.

64. Aguilar-Duran S., Horcajada J.P., Sorlí L., Montero M., Salvadó M., Grau S., Gómez J., Knobel H. Community-onset healthcare-related urinary tract infections: comparison with community and hospital-acquired urinary tract infections. J Infect. 2012;64(5):478–483. Doi: 10.1016/j.jinf.2012.01.010.

65. Marschall J., Fraser V.J., Doherty J., Warren D.K. Between community and hospital: healthcare-associated gram-negative bacteremia among hospitalized patients. Infect Control Hosp Epidemiol. 2009;30(11):1050–1056. Doi: 10.1086/606165.

66. Moreno E., Andreu A., Pigrau C., Kuskowski M.A., Johnson J.R., Prats G. Relationship between Escherichia coli strains causing acute cystitis in women and the fecal E.coli population of the host. J Clin Microbiol. 2008;46(8):2529–2534. Doi: 10.1128/JCM.00813-08.

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: М. И. Коган – заслуженный деятель науки РФ, д.м.н., профессор; заведующий кафедрой урологии и репродуктивного здоровья человека (с курсом детской урологии-андрологии) ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России, Ростов-на-Дону, Россия; e-mail: kogan_dept@mail.ru