ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Нарушение микробиоты кишечника и ее коррекция у пациентов с хроническим простатитом

Стуров Н.В., Попов С.В., Михайлов А.А., Жуков В.А.

Кафедра общей врачебной практики Медицинского института, Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы, Москва, Россия
Обзорная статья посвящена изучению взаимосвязи между хроническим простатитом и состоянием кишечной микробиоты (КМ). Хронический простатит является распространенным заболеванием, приводящим к заметным нарушениям качества жизни. Этиология и патофизиологические механизмы развития данного заболевания на сегодняшний день остаются не полностью раскрытыми. Некоторые случаи хронического простатита вызваны бактериальной инфекцией, источником возбудителей которой может являться измененная КМ. Большинство случаев этого заболевания ассоциированы с хронической воспалительной реакцией, точные механизмы и происхождение которой до сих пор остаются неясными. Вместе с тем роль КМ и кишечного дисбиоза в патогенезе данного заболевания представляется малоизученной областью. В данной статье исследуется предполагаемая двунаправленная связь между изменениями состава КМ и развитием хронического простатита. В последние десятилетия научные исследования все более активно обращают внимание на роль КМ в поддержании иммунологического баланса и регуляции воспалительных процессов, что также может играть ключевую роль в развитии и хронизации простатита. Одновременно терапевтические подходы, учитывающие необходимость коррекции КМ при хроническом простатите, также представляются актуальной областью исследований. Использование пробиотиков или пыльцы рапса может способствовать коррекции состояния КМ и снижению активности воспалительного процесса в предстательной железе, а также уменьшению частоты рецидивов хронического простатита. Новые исследования также указывают на потенциальные возможности прогнозирования развития хронического простатита на основе состояния КМ. Выявление определенных бактериальных видов или метаболитов, которые могут быть ассоциированы с предрасположенностью к хроническому простатиту, открывает перспективы для разработки новых методов диагностики и прогностических подходов. Это может предоставить основу персонализированных стратегий профилактики заболевания, учитывающих индивидуальные особенности КМ и иммунологического статуса пациентов. В статье проанализированы данные о роли КМ в патогенезе хронического простатита и обозначены возможные направления будущих исследований. Представленный обзор предлагает новый взгляд на эту проблему и обосновывает важность дальнейших исследований в данной области для разработки эффективных методов профилактики и лечения хронического простатита.

Ключевые слова

кишечная микробиота
хронический простатит
пробиотики
дисбиоз
ось кишечник–простата

Введение

Простатит – распространенное заболевание предстательной железы (ПЖ) с гетерогенной этиологией и клиническими проявлениями, включающими тазовую боль, расстройства мочеиспускания и эякуляции [1–4].

В настоящее время используется классификация простатита, предложенная Национальным институтом здоровья США (NIH) в 1995 г., которая выделяет четыре категории заболевания в зависимости от наличия или отсутствия бактериального агента, лейкоцитов в секрете ПЖ, клинических проявлений. Согласно этой классификации, выделяют следующие категории простатита: острый бактериальный простатит (категория I), хронический бактериальный простатит (ХБП) (категория II), хронический простатит/синдром хронической тазовой боли (ХП/СХТБ; категория III), бессимптомный простатит (категория IV). ХП/СХТБ (простатит категории III) дополнительно подразделяется на воспалительный (IIIA) и невоспалительный (IIIB) подтипы, которые различаются в зависимости от наличия или отсутствия повышенного количества лейкоцитов в секрете ПЖ, образце мочи после массажа простаты. Каждая из этих категорий имеет свои клинические особенности [5].

Необходимо отметить, что патоген при ХБП обнаруживается классическим бактериологическим методом лишь в 5–10% случаев. Основными возбудителями ХБП являются различные бактерии порядка Enterobacterales, а также фекальные энтерококки.

В качестве источника и резервуара уропатогенных бактерий все чаще рассматривается кишечная микробиота (КМ). Ряд микроорганизмов, способствующих развитию воспалительных процессов в ПЖ, труднокультивируемы (например, анаэробы), что ограничивает возможности стандартных диагностических тестов. Известно, что при применении современных лабораторных методов инфекционная природа простатита, связанная с такими возбудителями, установлена в ряде случаев, а антимикробная терапия нередко оказывается эффективной для устранения воспалительного процесса при ХП/СХТБ категории IIIA [6–11].

ХП/СХТБ является наиболее распространенной формой (около 90% случаев ХП) и отличается трудностями в диагностике и лечении в связи с многофакторным и до конца не изученным патогенезом [12–14].

На сегодняшний день активно обсуждается роль состояния КМ при различных заболеваниях [15]. Новые подходы к идентификации бактерий с использованием не зависимых от культуры методов позволяют выявлять изменения в КМ. Изучение корреляций изменения КМ с наличием тех или иных патологических состояний представляет особый интерес. В ряде исследований предложена концепция «осей» кишечника и органов, предполагающая наличие межорганной связи и взаимного влияния [16]. В 2005 г. впервые была предложена концепция «ось простата–кишечник», указывающая на тесную связь между ПЖ и кишечником [17]. Известно, что КМ может оказывать влияние на состояние мочеполовой системы [18–22]. К сожалению, до настоящего времени патофизиологические взаимосвязи между состоянием КМ и развитием ХП остаются малоизученными, а в исследованиях, посвященных вопросам влияния микробиома на ПЖ, недостаточно внимания уделено роли кишечника [23].

Особенности кишечной микробиоты у пациентов с хроническим простатитом

D. A. Shoskes et al. провели комплексную оценку изменений в КМ у мужчин с ХП/СХТБ, сопоставив результаты с клиническими проявлениями заболевания. Тяжесть симптомов оценивали с помощью индекса симптомов хронического простатита (NIH-CPSI), а клинический фенотип с помощью системы UPOINT. Исследование КМ проводили при помощи секвенирования 16S рРНК. Всего в исследовании приняли участие 25 пациентов, а 25 мужчин составили контрольную группу. У пациентов с ХП/СХТБ различались результаты кластерного анализа относительно контрольной группы, также было выявлено более низкое среднее альфа-разнообразие КМ со значительными различиями в таксонах между группами. Наиболее значимым отличием являлась недостаточная представленность у пациентов с ХП/СХТБ бактерий рода Prevotella, которые, как известно, колонизируют желудочно-кишечный тракт и играют определенную роль в подавлении избыточной воспалительной реакции. При этом не было установлено значимых корреляций с показателями NIH-CPSI/UPOINT. Исследователи предположили, что различия в количестве Prevotella в КМ могут стать основой для новой диагностической модели ХП/СХТБ [24].

B. Holland et al. исследовали образцы фекалий 30 мужчин с симптомами нижних мочевыводящих путей, оцененными по Международной шкале оценки простатических симптомов (IPSS). Установлено, что 48 фекальных OTU (операционные таксономические единицы) продемонстрировали значительную корреляцию с одним или несколькими показателями шкалы IPSS. Наиболее существенная отрицательная корреляция обнаружена между Lachnospiraceae Blautia, которая увеличивает доступность короткоцепочечных жирных кислот (КЦЖК) в кишечнике и выраженностью беспокойства по поводу заболевания (r=0,702; p=0,001) [25].

При исследовании крыс с абактериальным хроническим воспалением ПЖ было определено значительное увеличение в КМ следующих представителей: Rikenellaceae, Odoribacter, Clostridiaceae, Allobaculum и Peptococcaceae по сравнению со здоровыми крысами. И наоборот, уровни Bacteroides Uniformis, Lactobacillus и Lachnospiraceae, а также концентрация КЦЖК были снижены у крыс с ХП [26].

В другой работе с использованием крыс также был установлен измененный профиль КМ при ХП/СХТБ. При сравнении относительной численности представителей КМ обнаружено уменьшение количества Muribaculum и увеличение некультивируемых бактерий Desulfovibrionaceae у крыс с ХП/СХТБ. В этом исследовании также было обнаружено, что относительная численность Lactobacillus снизилась с 4,0 до 3,2% у крыс с ХП/СХТБ. При сравнении относительного содержания мРНК обнаружено, что экспрессия 185 генов эпителия кишечника значительно изменилась в группе ХП/СХТБ. Среди этих генов 107 были подавлены, а активность 78 генов была повышена [16]. Известно, что КМ может воздействовать на экспрессию генов в эпителиальных клетках толстой кишки, контролируя гомеостаз и воспалительные процессы [27].

С помощью классификации KEGG было установлено, что эти гены участвуют в ряде клеточных процессов, в пищеварении (переваривании и всасывании белков, всасывании минералов, а также в метаболизме фруктозы и маннозы), в работе иммунной системы (сигнальные пути PPAR, p53, ИЛ-17). Полученные результаты могут свидетельствовать о возможной взаимосвязи ХП/СХТБ с функцией кишечника [16]. Рассматривая возможное значение бактерий семейства Desulfovibrionaceae, следует отметить, что увеличение их численности в кишечнике ассоциировано с употреблением продуктов с высоким содержанием жиров, а также длительностью полиаутоиммунитета [28, 29].

B. White et al. исследовали фекалии пациентов с ХП/СХТБ с помощью секвенирования 16S рРНК. Определено, что в КМ пациентов наблюдается повышенное количество бактерий типа Firmicutes по сравнению с микробиотой контрольных пациентов. Также отмечается, что в КМ в когорте ХП/СХТБ наблюдалось общее увеличение биоразнообразия, что отличается от данных других исследователей, в которых дисбиоз был связан преимущественно со снижением биоразно-образия КМ у больных. Исследователи считают, что такой результат мог быть получен из-за различий в когортах исследования, размере выборки, возрасте и диете [30].

В работе S. Wang et al., включившей 41 пациента с ХП/СХТБ и 43 участников контрольной группы, были установлены значимые различия в структуре КМ. У пациентов с ХП/СХТБ отмечено увеличение количества Bacteroides, Romboutsia, Escherichia-Shigella, Ruminococcus, Enterobacter, Pseudomonas, Clostridium, Lachnoclostridium. И наоборот, имело место снижение количества таких представителей КМ, как Blautia, Faecalibacterium, Bifidobacterium, Prevotella, Alistipes, Dialister [31].

Иммунологические аспекты оси «кишечник–простата»

На сегодняшний день определена важная роль иммунологического дисбаланса в патогенезе ХП/СХТБ. Установлено, что воспаление и аутоиммунитет вносят определенный вклад в развитие ХП/СХТБ. При данном заболевании в крови и сперме пациентов повышаются концентрации ряда провоспалительных факторов (ФНО-α, ИЛ-6, ЦОГ-2 и других) [32–36]. R.D. Motrich et al. определили, что иммунный ответ Th17-клеток связан с ХП, который может индуцировать и усугублять признаки тазовой боли. Кроме того, воспалительный процесс может обусловливать снижение качества спермы (снижение концентрации, подвижности и жизнеспособности сперматозоидов) [37]. Th17-клетки представляют собой одну из подгрупп CD4+ Т-клеток, обусловливающих высвобождение цитокина ИЛ-17. Определено, что Th17-клетки принимают участие в патогенезе аутоиммунных заболеваний [38].

КМ оказывает несколько иммуномодулирующих функций и играет важную роль в модуляции иммунных/воспалительных реакций человека (см. рисунок) [37, 39, 40]. Исследователи связывают дисбиоз кишечника с развитием ряда аутоиммунных заболеваний, таких как системная красная волчанка и аутоиммунный тиреоидит [41, 42]. Установлено, что системные функции КМ, в т.ч. иммуномодуляция, в значительной степени связаны с микробным метаболомом, в особенности с КЦЖК. КЦЖК бактериального происхождения могут попадать в кровоток и принимать участие в регулировании иммунной системы, включая соотношение клеток Th17 и Treg во внекишечных органах, а также способствовать проникновению иммунных клеток кишечника в кровоток [43, 44].

210-1.jpg (47 KB)

С помощью экспериментальной модели аутоиммунного простатита проанализировано процентное содержание клеток Th17 и Treg в селезенке мышей с ХП и без такового. В результате доля Th17 в группе ХП оказалась значительно выше, чем в контрольной группе, тогда как содержание Treg было значительно ниже, что указывает на выраженный дисбаланс Th17/Treg в селезенке мышей с ХП. По сравнению с контрольной группой концентрации сывороточных противовоспалительных цитокинов TGF-β и ИЛ-10 были значительно снижены, в то время как уровни сывороточных провоспалительных цитокинов ИЛ-17, GM-CSF и IFNγ повышены [45]. Отмечено также значительное снижение альфа-разнообразия КМ у мышей с ХП. На уровне типа мыши с ХП имели меньшую относительную численность Firmicutes, Nitrospirae, Gemmatimonadetes и Fusobacteria. При этом обнаружено увеличение количества Bacteroidetes, Cyanobacteria и Patescibacteria. Установлено, что на уровне рода у мышей с ХП было заметно увеличено количество Lactobacillus [45]. В ходе исследования определено снижение концентрации пропионовой кислоты в фекалиях мышей с ХП относительно контрольной группы. Добавление пропионовой кислоты в воду значительно уменьшило признаки воспалительного процесса в ПЖ у мышей, а также снизило количество Th17-клеток в селезенке мышей, при этом способствуя дифференцировке Treg-клеток. Кроме того, пероральный прием пропионовой кислоты снижал выработку ИЛ-17 и GM-CSF, одновременно увеличивая секрецию TGF-β и ИЛ-10. Аналогичные результаты по уровням ИЛ-17, TGF-β и ИЛ-10 наблюдались в тканях ПЖ. Сообщается, что трансплантация фекальной микробиоты (ТФМ) от доноров с ХП здоровым реципиентам вызывала у них снижение дифференцировки Treg-клеток [45].

Коррекция кишечной микробиоты у пациентов с хроническим простатитом

Пациенты с ХП часто получают длительные курсы пероральных антимикробных препаратов, которые относят к одним из ведущих факторов нарушения состояния КМ [46, 47]. С учетом также высокой распространенности антибиотикорезистентности следует разрабатывать терапевтические подходы, позволяющие снижать повреждающее действие антимикробных препаратов на КМ или восстанавливать ее структуру и функции. На сегодняшний день изучению данной проблемы посвящены единичные исследования.

Одним из таких подходов может оказаться терапия с использованием пыльцы рапса, признанной одним из средств лечения ХП, способной также модулировать КМ. Определено, что такая терапия приводила к снижению массы простаты и отношения массы ПЖ к общей массе тела примерно на 32 и 36% соответственно, практически достигая показателей контрольной группы. Данное лечение также значительно уменьшило экспрессию провоспалительных цитокинов (ИЛ-6, -8, -1β и ФНО-α), подавляя патогенные бактерии и усиливая действие пробиотиков, особенно в соотношении Firmicutes-Bacteroidetes (F/B) и численности Prevotella [48].

В другом исследовании установлено, что полисахариды Poria cocos у крыс с ХП способствуют снижению массы ПЖ и ее отношения к общей массе тела, а также уровня С-реактивного белка и провоспалительных цитокинов (ФНО-α и ИЛ-1β) [49]. Poria cocos – широко известный древесный гриб, традиционно используемый в Китае в качестве пищевой и лекарственной добавки с антиоксидантной и противовоспалительной активностью. Одним из главных его компонентов являются полисахариды, ферментируемые в кишечнике человека микроорганизмами. В экспериментальной модели показано, что после ферментации Poria cocos фекальной микробиотой, полученной от здорового человека, значительный рост наблюдается у Parabacteroides, Fusicatenibacter и Parasutterella. Галоперидол-глюкуро-нид и 7-кетодеоксихолевая кислота, вырабатываемые этими бактериями, могут быть ответственными за повышенную экспрессию в эпителии толстой кишки генов Alox15 и Pla2g2f, ответственных за метаболизм арахидоновой кислоты, и сниженную экспрессию Cyp1a1 и Hsd17b7, регулирующих синтез стероидных гормонов. Вследствие такой регуляции происходит увеличение соотношения дигидротестостерона и эстрадиола в сыворотке, а активность ХП снижается. Кроме того, сообщается о росте количества Ruminococcus, ассоциированных с продукцией КЦЖК [50].

Особый интерес представляют результаты исследования эффективности различных пробиотиков в терапии ХП. Определено, что применение Lactobacillus paracasei CNCM I-1572 (по 2 капсулы в день в течение 3 месяцев) способствует статистически значимому снижению частоты обострений ХП и применения антимикробных препаратов. Установлено, что данный пробиотик модулирует КМ у лиц, страдающих воспалительными заболеваниями кишечника, а также влияет на иммунный ответ [51]. Сообщается о снижении концентрации провоспалительных цитокинов ИЛ-1α, -6, -8 и-15 и увеличении уровня КЦЖК и ИЛ-10 при приеме Lactobacillus paracasei CNCM I-1572 [52].

Заключение

Результаты современных исследований демонстрируют, что нарушения в составе и функционировании кишечной микробиоты могут быть связаны с хроническим простатитом. Дисбаланс между комменсальными и патогенными микроорганизмами в кишечной микробиоте может способствовать развитию воспалительного процесса в предстательной железе. Кишечная микробиота также может оказывать влияние на иммунную систему организма. Таким образом, определение взаимосвязи между состоянием кишечной микробиоты и развитием хронического простатита является актуальным направлением исследований. Наблюдаемые изменения кишечной микробиоты могут оказаться перспективными неинвазивными маркерами для диагностики хронического простатита, а также представлять собой потенциальные терапевтические цели.

Изучение роли кишечной микробиоты при хроническом простатите поможет расширить диагностические возможности в дополнение к используемым на сегодняшний день клиническим и лабораторным методам, способствовать повышению эффективности терапии данной категории пациентов.

Дополнительная информация

Публикация статьи осуществляется в рамках диссертационной работы: «Нарушение микробиоты кишечника и ее коррекция у пациентов с хроническим простатитом»

Список литературы

1. Кадыров З.А., Степанов В.С., Рамишвили Ш.В., Машанеишвили Ш.Г. Диагностика хронического абактериального простатита. Андрология и генитальная хирургия 2019;20(3):00–00.

2. Rees J., Abrahams M., Doble A., Cooper A. Diagnosis and treatment of chronic bacterial prostatitis and chronic prostatitis/chronic pelvic pain syndrome: a consensus guideline. BJU Int. 2015;116(4):509–25. Doi: 10.1111/bju.13101.

3. He H., Luo H., Xu H., et al. Preclinical models and evaluation criteria of prostatitis. Front Immunol. 2023;14:1183895. Doi: 10.3389/fimmu.2023.1183895.

4. Khattak A.S., Raison N., Hawazie A., et al. Contemporary Management of Chronic Prostatitis. Cureus. 13(12):e20243. Doi: 10.7759/cureus.20243.

5. Krieger J.N., Nyberg L., Nickel J.C. NIH consensus definition and classification of prostatitis. JAMA. 1999;282(3):236–37. Doi: 10.1001/jama.282.3.236.

6. Cai T., Bjerklund Johansen T.E. Prostatitis and Its Management. Springer International Publishing; 2016. Doi: 10.1007/978-3-319-25175-2.

7. Xiong S., Liu X., Deng W., et al. Pharmacological Interventions for Bacterial Prostatitis. Frontiers in Pharmacology. 2020;11. Doi: 10.3389/fphar.2020.00504.

8. Kim D.S., Lee J.W. Urinary Tract Infection and Microbiome. Diagnostics (Basel). 2023;13(11):1921. Doi: 10.3390/diagnostics13111921.

9. Mestrovic T., Matijasic M., Peric M., et al. The Role of Gut, Vaginal, and Urinary Microbiome in Urinary Tract Infections: From Bench to Bedside. Diagnostics (Basel). 2020;11(1):7. Doi: 10.3390/diagnostics11010007.

10. Magruder M., Sholi A.N., Gong C., et al. Gut uropathogen abundance is a risk factor for development of bacteriuria and urinary tract infection. Nat Commun. 2019;10:5521. Doi: 10.1038/s41467-019-13467-w.

11. Sturov N.V., Popov S.V., Zhukov V.A., et al. Intestinal Microbiota Correction in the Treatment and Prevention of Urinary Tract Infection. Turk J Urol. 2022;48(6):406–14. Doi: 10.5152/tud.2022.22119.

12. Тюзиков И.А., Греков Е.А. Хронический простатит/синдром хронической тазовой боли: современные тренды и перспективы лечения с позиций доказательной медицины. Экспериментальная и клиническая урология 2022;15(1):90–100.

13. Pena V.N., Engel N., Gabrielson A.T., et al. Diagnostic and Management Strategies for Patients with Chronic Prostatitis and Chronic Pelvic Pain Syndrome. Drugs Aging. 2021;38(10):845–86. Doi: 10.1007/s40266-021-00890-2.

14. Magistro G., Wagenlehner F.M.E., Pilatz A. Chronic prostatitis/chronic pelvic pain syndrome. Urologie. 2023;62(6):590–96. Doi: 10.1007/s00120-023-02089-2.

15. Schluter J., Peled J.U., Taylor B.P., et al. The gut microbiota is associated with immune cell dynamics in humans. Nature. 2020;588(7837):303-307. Doi: 10.1038/s41586-020-2971-8.

16. Liu J., Wang Y., Zhang G., et al. Multi-Omics Analysis Reveals Changes in the Intestinal Microbiome, Transcriptome, and Methylome in a Rat Model of Chronic Non-bacterial Prostatitis: Indications for the Existence of the Gut-Prostate Axis. Frontiers in Physiology. 2022;12. Doi: 10.3389/fphys.2021.753034.

17. Yarnell E., Abascal K. Natural approaches to treating chronic prostatitis and chronic pelvic pain syndromes. Alter Complement Ther. 2005;11:246–51. Doi: 10.1089/act.2005.11.246.

18. Al Bander Z., Nitert M.D., Mousa A., Naderpoor N. The Gut Microbiota and Inflammation: An Overview. Int J Environ Res Public Health. 2020;17(20):7618. Doi: 10.3390/ijerph17207618.

19. Afzaal M., Saeed F., Shah Y.A., et al. Human gut microbiota in health and disease: Unveiling the relationship. Frontiers in Microbiology. 2022;13. Doi: 10.3389/fmicb.2022.999001.

20. Hou K., Wu Z.X., Chen X.Y., et al. Microbiota in health and diseases. Sig Transduct Target Ther. 2022;7(1):1–28. Doi: 10.1038/s41392-022-00974-4.

21. Стуров Н.В., Попов С.В., Жуков В.А. Патогенетическая роль и возможности коррекции нарушения кишечной микробиоты при инфекции мочевых путей. Антибиотики и Химиотерапия. 2021;66(7–8):100–108.

22. Стуров Н.В., Попов С.В., Жуков В.А., и др. Особенности кишечной микрофлоры при возрастных заболеваниях мужчин. Трудный пациент. 2021;17(8):37–41.

23. Miyake M., Tatsumi Y., Ohnishi K., et al. Prostate diseases and microbiome in the prostate, gut, and urine. Prostate International. 2022;10(2):96–107. Doi: 10.1016/j.prnil.2022.03.004.

24. Shoskes D.A., Wang H., Polackwich A.S., et al. Analysis of Gut Microbiome Reveals Significant Differences between Men with Chronic Prostatitis/Chronic Pelvic Pain Syndrome and Controls. J Urol. 2016;196(2):435–41. Doi: 10.1016/j.juro.2016.02.2959.

25. Holland B., Karr M., Delfino K., et al. The effect of the urinary and faecal microbiota on lower urinary tract symptoms measured by the international prostate symptom score: Analysis utilising next-generation sequencing. BJU Int. 2020;125:905–10. Doi: 10.1111/bju.14972.

26. Konkol Y., Keskitalo A., Vuorikoski H., et al. Chronic nonbacterial prostate inflammation in a rat model is associated with changes of gut microbiota that can be modified with a galactoglucomannan-rich hemicellulose extract in the diet. BJU Int. 2019;123(5):899–908. Doi: 10.1111/bju.14553.

27. Ansari I., Raddatz G., Gutekunst J., et al. The microbiota programs DNA methylation to control intestinal homeostasis and inflammation. Nat Microbiol. 2020;5(4):610–19. Doi: 10.1038/s41564-019-0659-3.

28. Wang B., Kong Q., Li X., et al. A High-Fat Diet Increases Gut Microbiota Biodiversity and Energy Expenditure Due to Nutrient Difference. Nutrients. 2020;12(10):3197. Doi: 10.3390/nu12103197.

29. Bibbo S., Abbondio M., Sau R., et al. Fecal Microbiota Signatures in Celiac Disease Patients With Poly-Autoimmunity. Front Cell Infect Microbiol. 2020;10:349. Doi: 10.3389/fcimb.2020.00349

30. White B., Welge M., Auvil L., et al. Microbiota of Chronic Prostatitis/Chronic Pelvic Pain Syndrome are Distinct from Interstitial Cystitis/Bladder Pain Syndrome. Published online March 8, 2021:2021.03.04.21252926. Doi: 10.1101/2021.03.04.21252926..

31. Wang S., Zang M., Yang X., et al. Gut microbiome in men with chronic prostatitis/chronic pelvic pain syndrome: profiling and its predictive significance. World J Urol. 2023;41(11):3019–26. Doi: 10.1007/s00345-023-04587-6.

32. Li J.S., Su S.L., Xu Z., et al. Potential roles of gut microbiota and microbial metabolites in chronic inflammatory pain and the mechanisms of therapy drugs. Ther Adv Chronic Dis. 2022;13:20406223221091177. Doi: 10.1177/20406223221091177.

33. Chen Y., Li J., Hu Y., et al. Multi-factors including Inflammatory/Immune, Hormones, Tumor-related Proteins and Nutrition associated with Chronic Prostatitis NIH IIIa+b and IV based on FAMHES project. Sci Rep. 2017;7(1):9143. Doi:10.1038/s41598-017-09751-8 .

34. Chen L., Zhang M., Liang C. Chronic Prostatitis and Pelvic Pain Syndrome: Another Autoimmune Disease? Arch Immunol Ther Exp. 2021;69(1):24. Doi:10.1007/s00005-021-00628-3.

35. Vickman R.E., Aaron-Brooks L., Zhang R., et al. TNF is a potential therapeutic target to suppress prostatic inflammation and hyperplasia in autoimmune disease. Nat Commun. 2022;13(1):2133. Doi: 10.1038/s41467-022-29719-1.

36. Jeon S.H., Zhu G.Q., Kwon E.B., et al. Extracorporeal shock wave therapy decreases COX-2 by inhibiting TLR4-NFκB pathway in a prostatitis rat model. Prostate. 2019;79(13):1498–504. Doi: 10.1002/pros.23880.

37. Zheng D., Liwinski T., Elinav E. Interaction between microbiota and immunity in health and disease. Cell Res. 2020;30(6):492–506. Doi: 10.1038/s41422-020-0332-7.

38. Capone A., Volpe E. Transcriptional Regulators of T Helper 17 Cell Differentiation in Health and Autoimmune Diseases. Front Immunol. 2020;11:348. Doi: 10.3389/fimmu.2020.00348.

39. Kartjito M.S., Yosia M., Wasito E., et al. Defining the Relationship of Gut Microbiota, Immunity, and Cognition in Early Life–A Narrative Review. Nutrients. 2023;15(12):2642. Doi: 10.3390/nu15122642

40. Maciel-Fiuza M.F., Muller G.C., Campos D.M.S., et al. Role of gut microbiota in infectious and inflammatory diseases. Front Microbiol. 2023;14. Doi: 10.3389/fmicb.2023.1098386.

41. Shaheen W.A., Quraishi M.N., Iqbal T.H. Gut microbiome and autoimmune disorders. Clin Exp Immunol. 2022;209(2):161–74. Doi: 10.1093/cei/uxac057.

42. Christovich A., Luo X.M. Gut Microbiota, Leaky Gut, and Autoimmune Diseases. Front Immunol. 2022;13. 2024. Doi: 10.3389/fimmu.2022.946248.

43. Su X., Yin X., Liu Y., et al. Gut Dysbiosis Contributes to the Imbalance of Treg and Th17 Cells in Graves’ Disease Patients by Propionic Acid. J Clin Endocrinol Metab. 2020;105(11):dgaa511. Doi: 10.1210/clinem/dgaa511.

44. Gasaly N., de Vos P., Hermoso M.A. Impact of Bacterial Metabolites on Gut Barrier Function and Host Immunity: A Focus on Bacterial Metabolism and Its Relevance for Intestinal Inflammation. Front Immunol. 2021;12:658354. Doi: 10.3389/fimmu.2021.658354.

45. Du H.X., Yue S.Y., Niu D., et al. Gut Microflora Modulates Th17/Treg Cell Differentiation in Experimental Autoimmune Prostatitis via the Short-Chain Fatty Acid Propionate. Front Immunol. 2022;13:915218. Doi: 10.3389/fimmu.2022.915218.

46. Fishbein S.R.S., Mahmud B., Dantas G. Antibiotic perturbations to the gut microbiome. Nat Rev Microbiol. 2023;21(12):772–88. Doi: 10.1038/s41579-023-00933-y.

47. Patangia D.V., Anthony Ryan C., Dempsey E., et al. Impact of antibiotics on the human microbiome and consequences for host health. Microbiologyopen. 2022;11(1):e1260. Doi: 10.1002/mbo3.1260

48. Qiao J., Xiao X., Wang K., et al. Rapeseed bee pollen alleviates chronic non-bacterial prostatitis via regulating gut microbiota. J Sci Food Agric. 2023;103(15):7896–904. Doi: 10.1002/jsfa.12878.

49. Liu J., Yu J., Peng X. Poria cocos Polysaccharides Alleviates Chronic Nonbacterial Prostatitis by Preventing Oxidative Stress, Regulating Hormone Production, Modifying Gut Microbiota, and Remodeling the DNA Methylome. J Agric Food Chem. 2020;68(45):12661–670. Doi: 10.1021/acs.jafc.0c05943.

50. Yu J., Hu Q., Liu J., et al. Metabolites of gut microbiota fermenting Poria cocos polysaccharide alleviates chronic nonbacterial prostatitis in rats. Int J Biol Macromol. 2022;209(Pt B):1593–604. Doi: 10.1016/j.ijbiomac.2022.04.029.

51. Cai T., Gallelli L., Cione E., et al. The use of Lactobacillus casei DG® prevents symptomatic episodes and reduces the antibiotic use in patients affected by chronic bacterial prostatitis: results from a phase IV study. World J Urol. 2021;39(9):3433–40. Doi: 10.1007/s00345-020-03580-7.

52. Bretto E., D’Amico F., Fiore W., Tursi A., Danese S. Lactobacillus paracasei CNCM I 1572: A Promising Candidate for Management of Colonic Diverticular Disease. J Clin Med. 2022;11(7):1916. Doi: 10.3390/jcm11071916.

Об авторах / Для корреспонденции

Автор для связи: Андрей Анатольевич Михайлов, ассистент кафедры общей врачебной практики Медицинского института, Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы, Москва, Россия; andrey_mikhaylov77@bk.ru

ORCID: 
Н.В. Стуров (N.V. Sturov), https://orcid.org/0000-0002-3138-8410 
С.В. Попов (S.V. Popov), https://orcid.org/0000-0002-0567-4616 
А.А. Михайлов (A.A. Mikhailov), https://orcid.org/0009-0008-5751-4383
В.А. Жуков (V.A. Zhukov), https://orcid.org/0000-0001-9995-264X

Также по теме