ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Современные молекулярно-генетические аспекты гистологических вариантов почечно-клеточной карциномы

Ю.И. Османов, Е.А. Коган, З.К. Гаджиева, Д.Д. Проценко

1) Кафедра патологической анатомии ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова», Москва, Россия; 2) НМИЦ по профилю «урология» ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» МЗ России (Сеченовский Университет), Москва, Россия
В статье представлены основные молекулярные механизмы патогенеза почечно-клеточной карциномы. Рассмотрены молекулярные пути, определяющие развитие гистологических вариантов почечно¬клеточной карциномы, и роль маркеров стволовости в канцерогенезе этих опухолей.

Ключевые слова

почечно-клеточная карцинома
молекулярная диагностика
синдром фон Хиппель—Линдау
синдром Берта—Хогга—Дьюба
стволовые клетки

Современные представления о молекулярных механизмах канцерогенеза при почечно-клеточной карциноме (ПКК) основаны на изучении наследственных форм рака почки. Наследственный, или семейный, рак почки составляет около 4—5 % всех ПКК и относится к проявлениям наследственных онкологических синдромов. Эти синдромы характеризуются герминальными мутациями в соответствующих генах и имеют предрасположенность к определенному гистологическому варианту ПКК [1, 2].

Синдром фон Хиппель—Линдау (VHL) — аутосомно-доминантный синдром, основным проявлением которого служит развитие доброкачественных и злокачественных опухолей в разных органах. По фенотипическим признакам синдром представляется в двух типах. Тип 1 — капиллярные гемангиобластомы сетчатки глаза и ЦНС, а также светлоклеточная ПКК. Тип 2А — капиллярные гемангиобластомы сетчатки глаза, ЦНС и феохромоцитома. Тип 2В — капиллярные гемангиобластомы сетчатки глаза, ЦНС, светлоклеточная ПКК, феохромоцитома и опухоли поджелудочной железы. Тип 2С — только феохромоцитома. При синдроме фон Хиппель—Линдау светлоклеточная ПКК развивается обычно у молодых пациентов и нередко характеризуется мультифокальным ростом и/или билатеральной локализацией. Причиной развития светлоклеточной ПКК при синдроме фон Хиппель—Линдау является герминальная мутация гена-супрессора VHL, расположенного на хромосоме 3р25 [3-4].

Конституциональные транслокации хромосомы 3 — отдельная семейная форма свелоклеточной ПКК, характеризуется сохранением интактной структуры гена VHL и отсутствием «внепочечных» проявлений синдрома фон Хиппель-Линдау [5-6].

Наследственный лейомиоматоз и рак почки - заболевание, характеризующееся развитием лейомиоматоза кожи и матки, папиллярной ПКК 2-го типа и лейомиосаркомой матки. При этом синдроме ПКК обнаруживаются обычно в виде солитарных и унилатеральных узлов, однако отличаются быстрым прогрессированием и ранним метастазированием. Развитие этого заболевания связано с герминальной мутацией гена, локализованного в области 1q42, кодирующего фермент цикла Кребса, фумаратги-дратазу (ФГ). Результаты исследований показывают, что в ФГ-дефицитных ПКК этот фермент выступает в роли опухолевого супрессора и путем двухударной модели Кнадсена участвует в инактивации 2-го аллеля [7-8].

Наследственная папиллярная карцинома почки 1-го типа. Обусловлена герминальными мутациями онкогена МЕТ, локализованного на хромосоме 7q31, что в свою очередь приводит к стимуляции деления клеток и конститутивной активации цитоплазматического домена рецептора. Молекулярная диагностика наследственной папиллярной карциномы почки 1-го типа основывается на обнаружении мутации в экзонах 15-21 гена МЕТ, кодирующих цитоплазматический домен рецептора. При этом заболевании ПКК чаще мультифокальные и билатеральные [9-10].

Синдром Берта-Хогга-Дьюба (BHD) - наследственное аутосомно-доминантное заболевание, которое характеризуется развитием множественных фиброфолликулом кожи лица, шеи, верхней части туловища и кист. Примерно у 35% пациентов с синдромом BHD обнаруживаются разные варианты ПКК, но наиболее часто встречается гибридная онкоцитарная/хромофобная опухоль, или хромофобная ПКК. При этом заболевании опухоли почки, как правило, мультифокальные и билатеральные. При синдроме BHD наблюдается герминальная мутация в гене — супрессоре FLCN, расположенном на хромосоме 17р11.2 [11, 12].

Наследственная параганглиома обусловлена герминальной мутацией в гене субъединицы В сукцинатдегидрогеназы (СДГ). У пациентов с наследственной параганглиомой наблюдаются феохромоцитомы и параганглиомы, а также СДГ-дефицитная ПКК. Изредка встречаются светлоклеточная ПКК, хромофобная ПКК или онкоцитома [13, 14].

По литературным данным, потеря экспрессии VHL наблюдается в 80% случаев спорадических светлоклеточных ПКК. Как для наследственной формы заболевания, так и для спорадической светлоклеточной ПКК инактивация гена VHL является ключевым событием. Установлено, что в спорадической светлоклеточной ПКК биаллельная инактивация VHL обусловлена точковыми мутациями, аллельными делециями или гиперметилированием промоторной области. Как известно, ген VHL в качестве гена-супрессора контролирует уровень транскрипционных факторов HIF-1a и HIF-2a. В условиях нормальной оксигенации продукт гена VHL (pVHL) в составе E3 убиквитинлигазного комплекса участвует в разрушении транскрипционных факторов путем присоединения убиквитина к гидроксилированным HIF-1a и HIF-2a. В отсутствие pVHL в клетках или в условиях гипоксии продукт гена не связывается с негидроксилированными HIF-1a и HIF-2a, что приводит к накоплению транскрипционных факторов в клетках. При передислокации HIF-a в ядро образуется активный транскрипционный комплекс с HIF-в, вследствие чего запускается механизм активизации генов, связанных с гипоксией: сосудистого эндотелиального фактора роста (VEGF), транспортера глюкозы (GLUT1), тромбоцитарного фактора роста в (PDGFe), рецептора эпидермального фактора роста 1-го типа (EGFR1) и трансформирующего фактора роста (TGFa) [15-18]. В то же время помимо гиперэкспрессии генов, ассоциированных с гипоксией, происходит активация сигнальных путей: сигнального трансдукционного белка (RAS')/гомолога онкогена вирусной мышиной саркомы (Raf)/внеклеточной регулируемой киназы (ERK)/ митогенактивированной протеинкиназы (Мек) и фосфоинозитид-3-киназы (Р/5А)/протеинкиназы В (А_йТ)/мишени для рапамицина млекопитающих (mTOR).

Активация сигнального пути AKT-mTOR является ключевым механизмом в канцерогенезе несветлоклеточных ПКК. При каскадной стимуляции сигнального пути PI3K-AKT-mTOR на фоне связывания факторов роста VEGF и PDGF с их тирозинкиназными рецепторами происходит активация белка 17 mTOR. Внутриклеточная серин/треонинкиназа, именуемая как мишень рапамицина млекопитающих (mTOR), является составной частью двух различных комплексов: TORC1 и TORC2. Комплекс TORC1 стимулирует экспрессию множества белков, регулирующих клеточный цикл (Cyclin D1, c-MYC) и ангиогенез (HIF-1, 2a) путем фосфорилирования ключевых регуляторов трансляции мРНК - 4EBP1 и S6K1-киназы. Комплекс TORC2 поддерживает клеточную полярность и участвует в процессе пространственного роста. Регуляция активности mTOR осуществляется молекулами питательных веществ, различными факторами роста и AKT. Внутриклеточная передача сигнальной кассеты RAS/MAPK является альтернативным путем активации mTOR. Инактивация mTOR наблюдается при нарушении сигнального каскада между PI3K и AKT в результате мутации гена опухолевого супрессора PTEN или вследствие образования комплекса туберозного склероза - TSC1/TSC2. Ряд исследователей отмечают важную роль EGFR-зависимых сигнальных путей в почечном онкогенезе. При этом показана высокая частота экспрессии гена EGFR в различных вариантах ПКК. Схема сигнальных путей, участвующих в онкогенезе ПКК, дана на рисунке [19-22].

132-1.jpg (253 KB)

Проведенные исследования на цито- и молекулярно-генетических уровнях позволили существенно расширить представление о мутационных процессах при различных гистологических вариантах ПКК.

Светлоклеточная ПКК. При полногеномном секвенировании следующего поколения (next generation sequencing, NGS) 417 образцов светлоклеточной ПКК были выявлены 36 353 соматические мутации, однако по наибольшей частоте повторяемости мутаций было выделено всего 8 генов: VHL, PTEN, BAP1, SETD2, TP53, KDM5C, BRM1 и MTOR. В описанных генах частота мутаций существенно отличалась от таковой в других генах. Приблизительно в 20% светлоклеточной ПКК не были обнаружены мутации ни в одном из этих 8 генов [23, 24].

Мультилокулярная кистозная опухоль почки с низким потенциалом малигнизации по молекулярно-генетическим характеристикам имеет сходство со светлоклеточной ПКК. По литературным данным, примерно в 75% мультилокулярной кистозной опухоли почки с низким потенциалом малигнизации наблюдается потеря короткого плеча хромосомы 3, где расположен ген VHL (регион 3р25). В 25% случаев обнаруживаются соматические мутации или гиперметилирование CрG-островка промоторной области [25-26].

ПКК с мутацией гена TCEB-1 на цитогенетическом уровне характеризуется моносомией по 8-й хромосоме. При NGS 15 образцов ПКК с мутацией гена TCEB-1 были идентифицированы другие мутации в генах Tyr79 (>80%), Ala100, Ala106 и Ser23. При анализе транскриптома показано значительное снижение содержания мРНК генов-POLR2E, POLR2C, CDK7, TCEA1 и TCEB2 [27, 28].

Папиллярная ПКК на цитогенетическом уровне характеризуется увеличением числа копий хромосом 7 и 17, утратой Y-хромосомы. При комплексном генетическом исследовании 161 образца ППКК в 17% опухолей 1-го типа были выявлены точковые мутации гена МЕТ. Среди карцином 2-го типа по наибольшей частоте повторяемости мутаций выделено три гена: SETD2, FH и MiT. В другом исследовании при секвенировании экзома 31 образца в качестве мутаций-драйверов обнаружены изменения в генах ремоделинга хроматина SETD2, BAP1, KDM6A и ARID2. По литературным данным, при папиллярной ПКК мутации в генах SMARCB1 и PBRM1 встречаются с частотой 20-38% [29, 30].

Хромофобные ПКК на цитогенетическом уровне несут потери участков или целых хромосом 1, 2, 6, 10, 13, 17 и 21. При NGS 66 образцов ХПКК было идентифицировано 142 варианта соматических мутаций. Наибольшая частота повторяемости встречалась в генах ND5, P53 и PTEN. Вместе с тем в другом исследовании при полногеномном секвенировании 12 онкоцитом обнаружено, что в них, в отличие от хромофобных ПКК, точковые мутации в генах P53 и PTEN отсутствуют. В связи с этим авторы предположили, что в ходе клональной эволюции инактивирующие мутации в генах P53 и PTEN могут быть причиной трансформации онкоцитомы в эозинофильном варианте ХПКК [31, 32].

Гибридная онкоцитарная/хромофобная опухоль на молекулярно-цитогенетическом уровне характеризуется герминальной мутацией гена FLCN, расположенного на хромосоме 17р11.2. В спорадической форме обнаруживаются моно- и полисомии по хромосомам 1, 2, 6, 9, 10, 13, 17, 21 и 22 [33].

Светлоклеточная папиллярная ПКК. В отличие от светлоклеточной ПКК и папиллярной ПКК, для нее нехарактерны делеция гена VHL и аберрации в хромосомах 7, 17 и Y. При светлоклеточной папиллярной ПКК отмечена гиперэкспрессия мРНК-200 [34, 35].

Тубулокистозная ПКК по молекулярно-генетическому профилю имеет сходство с папиллярной ПКК и характеризуется увеличением числа копий хромосом 7 и 17, утратой Y-хромосомы. При NGS 12 образцов тубулокистозной ПКК мутации были обнаружены в 14 генах. При этом в 60% случаев наибольшая частота повторяемости мутаций была замечена в генах ABL1 и PDFGRA [36-37].

При муцинозной тубулярной и веретеноклеточной ПКК на цитогенетическом уровне обнаруживаются потери участков хромосом 1, 4, 6, 13-15 и 22. В то же время при сравнительной геномной гибридизации определяется увеличение числа копий хромосом 11q, 16q, 17 и 20q. Трисомия по хромосомам 7 и 17 или утрата Y-хромосомы не наблюдаются [38, 39].

ПКК, ассоциированная с приобретенной кистозной болезнью почки на цитогенетическом уровне характеризуется увеличением числа копий хромосом 1, 2, 3, 6, 7, 16, 17 и Y. Наряду с этим, по литературным данным, в этих опухолях в редких случаях обнаруживаются потери участков хромосом 7, 17 или утрата Y-хромосомы [40, 41].

MiTF-ассоциированные ПКК на генетическом уровне обусловлены транслокациями t (X;17)(p11.2;q25), t (X;1) (p11.2;q21), t (X;1)(p11.2;q34), t (X;17)(p11.2;q23), inv (X) (p11.2;q12), t (X;3)(p11.2; q23), t (X;10)(p11.2; q23) и t (6; 11) (p21; q12) с формированием химерных генов (см. таблицу). При комплексном генетическом исследовании в большинстве MiTF-ассоциированных ПКК выявлены соматические мутации в генах MET и BIRC7 [42, 44].

133-1.jpg (115 KB)

Карцинома из собирательных трубочек на цитогенетическом уровне несут потери участков или целых хромосом 1, 6, 8, 14, 15, 16 и 22. Ряд авторов отмечают в опухоли увеличение числа копий 13q. По литературным данным, амплификация Her-2/neu в карциноме из собирательных трубочек определяется примерно в 45% случаев. Результаты NGS показали, что в этих новообразованиях наблюдаются соматические мутации в генах NF (29%), SETD2 (24%), SMARCB1 (18%) и CDKN2A (12%) [45-46].

Медуллярная карцинома на цитогенетическом уровне характеризуется моносомией 11-й хромосомы. Результаты сравнительной геномной гибридизации показывают, что для медуллярной карциномы характерна утрата гетерозиготности в гене SMARCB1/INI1. Кроме того, в отдельных случаях обнаруживается амплификация генов ABL1 и BCR. В одной из работ в опухоли наблюдалась транслокация t (2;10)(p23;q22) с формированием химерного онкогена VCL-ALK [47-49].

Эозинофильная солидная и кистозная ПКК на генетическом уровне характеризуется транслокациями 16p13.3-16q23.1 (от 33 до 67%), 7p21.2-7q36.2 (от 42 до 50%), 13q14.2 (33%) и 19p12 (3 %), а также делециями Xp11.21 (42%) и 22q11.23 (33%). Потеря гетерозиготности наиболее часто обнаруживалась в хромосомах 16p11.2-11.1 (75%), Xq11.1-13.1 (75%), Xq13.1-21.1 (33%), 11p11.2-11.11 (33%), 9q21.1-22.2 (33%) и 9q33.1 (33%). В одной из работ при исследовании 7 образцов спорадической эозинофильной солидной и кистозной ПКК методом NGS в 5 и 2 случаях наблюдались соматические мутации в генах TSC2 и TSC1 соответственно [50, 51].

Фолликулярная карцинома почки, СДГ-дефицитная ПКК и ФГ-дефицитная ПКК, по данным литературы, на цитогенетическом уровне не имеют характерных хромосомных аберраций. Между тем в одном исследовании при сравнительной геномной гибридизации одного образца фолликулярной карциномы обнаружено увеличение числа копий хромосом 7q36, 8q24, 12, 16, 17p11-q11, 17q24, 19q, 20q13, 21q22.3 и утрата 1p36.3, 9q21-33 и Х-хромосомы [52-54].

В настоящее время активно обсуждается роль раковых стволовых клеток (РСК) в молекулярном патогенезе ПКК. РСК - небольшая устойчивая субпопуляция клеток, способных к постоянному самообновлению и дифференцировке. Такие стволовые клетки, также известные как опухольинициирующие клетки, обладают высокой степенью резистентности и часто выживают после химио- и лучевой терапии. Изучение свойств РСК и механизмов их регуляции открывает большие перспективы в разработке новых подходов к противоопухолевой терапии. По данным ряда исследователей, среди потенциальных диагностических маркеров РСК ПКК большой интерес представляют ALDH1A1, CXCR4, CD24, CD82, CD105, CD133, SOX-2, NANOG и OCT4 [55-57].

Таким образом, ПКК представляют собой широкую и гетерогенную группу заболеваний. С каждым последующим пересмотром классификация этих опухолей неуклонно расширяется, появляются все новые критерии дифференциальной диагностики с применением молекулярных маркеров. Внедрение в морфологическую практику усовершенствованных алгоритмов молекулярно-генетической диагностики сможет обеспечить высокую диагностическую достоверность в определении конкретной нозологической формы ПКК, а в конечном итоге более достоверно прогнозировать течение заболевания.

Список литературы

1. Apolikhin O.I., Mikhaylenko D.S., Mikhalchenko A.E. et al. Molecular- genetic alterations as criteria in differential diagnostics of rare renal tumors. Experimental & clinical urology. 2013;3:21-27. Russian (Аполихин О.И., Михайленко Д.С., Михальченко А.Е. и др. Молекулярно¬генетические нарушения как критерии в дифференциальной диагностике редких опухолей почки. Эксперментальная и клиническая урология, 2013;3:21-27).

2. Mikhaylenko D.S.. Alekseev B.Y., Efremov G.D. et al. Genetic characteristics of the non-clear cell renal cancer. Oncourology. 2016; 3 (12): 14-21. Russian (Михайленко Д.С., Алексеев Б.Я., Ефремов Г.Д. и др. Генетические особенности несветлоклеточного рака почки. Онкоурология, 2016;3(12):14-21). Doi: 10.17 650 /1726-9776-2016-12- 3-14-21.

3. Couch Vindor N.M., Karnes P.S. et al. von Hippel-Lindau disease. Mayo Clin Proc. 2000;75(3):265-272. Doi: 10.4065/75.3.265.

4. Shuin T., Yamasaki I., Tamura K et al. Von Hippel-Lindau disease: molecular pathological basis, clinical criteria, genetic testing, clinical features of tumors and treatment. Jpn J Clin Oncol., 2006;36(6):337-343. Doi: 10.1093/jjco/hyl052.

5. Foster R., Abdulrahman M., Morris M. et al. Characterization of a 3;6 Translocation Associated with Renal Cell Carcinoma. Genes Chromosomes Cancer. 2007;46(4):311-317. Doi: 10.1002/gcc.20403.

6. Kanayama H., Lui W.O., Takahashi M. et al. Association of a novel constitutional translocation t(1q;3q) with familial renal cell carcinoma. J Med Genet., 2001 Mar;38(3):165-170. Doi: 10.1136/jmg.38.3.165.

7. Menko F.H., Maher E.R., Schmidt L.S. et al. Hereditary leiomyomatosis and renal cell cancer (HLRCC). Renal cancer risk, surveillance and treatment. Fam Cancer, 2014;13(4):637-644. Doi: 10.1007/s10689-014-9735-2.

8. Raymond V.M., Herron C.M., Giordano T.J., Gruber S.B. Familial renal cancer as an indicator of hereditary leiomyomatosis and renal cell cancer syndrome. Fam Cancer, 2012;11(1):115-121. Doi: 10.1007/s10689-011- 9485-3.

9. Linehan W.M. Genetic basis of kidney cancer: role of genomics for the development of disease-based therapeutics. Genome Res., 2012;22:2089- 2100. Doi: 10.1101/gr.131110.111.

10. Wadt K., Gerdes A.M., Hansen T.V. et al. Novel germline c-Met mutation in a family with hereditary papillary renal carcinoma. Fam Cancer. 2012;11(3):535-537. Doi: 10.1007/s10689-012-9542-6. doi: 10.1007/ s10689-012-9542-6.

11. Benhammou J.N., Vocke C.D., Santani A. et al. Identification of intragenic deletions and duplication in the FLCN gene in Birt-Hogg-Dube syndrome. Genes Chromosomes Cancer, 2011;50(6):466-477. Doi: 10.1002/gcc.20872.

12. Schmidt L.S., Linehan W.M. Clinical features, genetics and potential therapeutic approaches for Birt-Hogg-Dube syndrome. Expert Opin Orphan Drugs., 2015;3(1):15-29. Doi: 10.1517/21678707.2014.987124.

13. Benn D.E., Robinson B.G., Clifton-Bligh R.J. et al. Clinical manifestations of paraganglioma syndromes types 1-5. J Endocrine-Related Cancer, 2015;22:91-103. Doi: 10.1530/ERC-15-0268.

14. Muller U. Pathological mechanisms and parent-of-origin effects in hereditary paraganglioma/pheochromocytoma (PGL/PCC). Neurogenetics, 2011 Aug;12(3):175-181. Doi: 10.1007/s10048-011-0280-y.

15. Jacobsen J., Grankvist K., Rasmuson T. et al. Expression of vascular endothelial growth factor protein in human renal cell carcinoma. BJU Int, 2004 93:297-302. Doi: 10.1111/j.1464-410x.2004.04605.x.

16. Lidgren A., Hedberg Y., Grankvist K. et al. Hypoxia-inducible factor 1alpha expression in renal cell carcinoma analyzed by tissue microarray. Eur Urol. 2006;50:1272-1277. Doi: 10.1016/j.eururo.2006.05.043.

17. Na X., Wu G., Ryan C.K., Schoen S.R. et al. Overproduction of vascular endothelial growth factor related to von Hippel-Lindau tumor suppressor gene mutations and hypoxia-inducible factor-1 alpha expression in renal cell carcinomas. J Urol., 2003;170:588-592. Doi: 10.1097/01. ju.0000074870.54671.98.

18. Wiesener M.S., Munchenhagen P.M., Berger I. et al. Constitutive activation of hypoxia-inducible genes related to overexpression of hypoxia-inducible factor-1alpha in clear cell renal carcinomas. Cancer Res., 2001;61:5215- 5222.

19. Eichelberg C., Junker K., Ljungberg B. et al. Diagnostic and Prognostic Molecular Markers for Renal Cell Carcinoma: A Critical Appraisal of the Current State of Research and Clinical Applicability. J European Urology, 2009;55:851-863. Doi: 10.1016/j.eururo.2009.01.003.

20. Hudes G., Carducci M., Tomczak P. et al. A phase 3, randomized, 3-arm study of temsirolimus (TEMSR) or interferonalpha (IFN) or the combination of TEMSR + IFN in the treatment of first-line, poor-risk patients with advanced renal cell carcinoma (adv RCC)

21. Motzer R.J., Escudier B. Oudard S et al. RAD001 vs placebo in patients with metastatic renal cell carcinoma (RCC) after progression on VEGFr-TKI therapy: results from a randomized, double-blind, multicenter phase-III study

22. Youssif T., Tanguay S., Alam-Fahmy M. et al. Expression of PI3K/AKT/ mTOR pathway in renal cell carcinoma metastases: correlation with pathologic findings and survival. J Urol. 2008; 179:210.

23. Dmitriev A., Rudenko E., Kudryavtseva A. et al. Epigenetic Alterations of Chromosome 3 Revealed by NotI-Microarrays in Clear Cell Renal Cell Carcinoma. J BioMed Research International. 2014; Article ID 735292. Doi: 10.1155/2014/735292.

24. Gunawan B., Huber W., Holtrup M. et al. Prognostic Impacts of Cytogenetic Findings in Clear Cell Renal Cell Carcinoma: Gain of 5q31-qter Predicts a Distinct Clinical Phenotype with Favorable Prognosis. J Cancer Research, 2001;61:7731-7738.

25. Halat S., Eble J.N., Grignon D.J. et al. Multilocular cystic renal cell carcinoma is a subtype of clear cell renal cell carcinoma. Mod Pathol. 2010 Jul; 23(7):931-936. Doi: 10.1038/modpathol.2010.78.

26. von Teichman A., Comperat E., Behnke S. et al. VHL mutations and dysregulation of pVHL- and PTEN-controlled pathways in multilocular cystic renal cell carcinoma. Mod Pathol. 2011;24 (4):571-578. Doi: 10.1038/modpathol.2010.222.

27. Hakimi A.A., Tickoo S.K., Jacobsen A. et al. TCEB1-mutated renal cell carcinoma: a distinct genomic and morphological subtype. Mod Pathol., 2015 Jun;28(6):845-853. Doi: 10.1038/modpathol.2015.6.

28. Parilla M., Alikhan M., Segal J. et al. TCEB1-mutated renal cell carcinoma in relation to renal cell carcinoma with smooth muscle stroma in tuberous sclerosis complex. Journal of Clinical Oncology 36, no. 6_suppl (February 20, 2018) 699-699. Doi: 10.1200/JCO.2018.36.6_suppl.699

29. Saleeb R.M., Brimo F., Farag M. et al. Toward Biological Subtyping of Papillary Renal Cell Carcinoma With Clinical Implications Through Histologic, Immunohistochemical, and Molecular Analysis. American Journal of Surgical Pathology, 2017;41(12):1618-1629. Doi: 10.1097/ PAS.0000000000000962.

30. Yang XJ, Tan MH, Kim HL et al. A molecular classification of papillary renal cell carcinoma. Cancer Res., 2005;65(13):5628-5637. Doi: 10.1158/0008- 5472.CAN-05-0533.

31. Brunelli M., Delahunt B., Gobbo S. et al. Diagnostic usefulness of fluorescent cytogenetics in differentiating chromophobe renal cell carcinoma from renal oncocytoma: a validation study combining metaphase and interphase analyses. Am J Clin Pathol., 2010;133(1):116-126. Doi: 10.1309/ AJCPSATJTKBI6J4N.

32. Davis C.F., Ricketts C.J., Wang M.et al. The somatic genomic landscape of chromophobe renal cell carcinoma. Cancer Cell, 2014;26(3):319-330. Doi: 10.1016/j.ccr.2014.07.014.

33. Petersson F., Gatalica Z., Grossmann P. et al. Sporadic hybrid oncocytic/ chromophobe tumor of the kidney: a clinicopathologic, histomorphologic, immunohistochemical, ultrastructural, and molecular cytogenetic study of 14 cases. Virchows Arch. 2010 Apr;456(4):355-365. Doi: 10.1007/s00428- 010-0898-4.

34. Adam J., Couturier J., Molinie V. et al. Clear-cell papillary renal cell carcinoma: 24 cases of a distinct low-grade renal tumour and a comparative genomic hybridization array study of seven cases. Histopathology, 2011;58(7):1064-1071. Doi: 10.1111/j.1365-2559.2011.03857.x.

35. Rohan S.M., Xiao Y., Liang Y. et al. Clear cell papillary renal cell carcinoma: molecular and immunohistochemical analysis with emphasis on the von Hippel-Lindau gene and hypoxia-inducible factor pathway- related proteins. Mod Pathol., 2011;24(9):1207-1220. Doi: 10.1038/ modpathol.2011.80.

36. Lawrie C.H., Armesto M., Fernandez-Mercado M. et al. Noncoding RNA Expression and Targeted Next-Generation Sequencing Distinguish Tubulocystic Renal Cell Carcinoma (TC-RCC) from Other Renal Neoplasms. J Mol Diagn., 2018;20(1):34-45. Doi: 10.1016/j. jmoldx.2017.09.002.

37. Zhang W., Yu W.J., Xia Y. et al. Expression of carbonic anhydrase IX, PAX2 and PAX8 and their association with clinicopathologic characteristics in renal epithelial tumors. Zhonghua Bing Li Xue Za Zhi, 2013;42(7):442- 445. Doi: 10.3760/cma.j.issn.0529-5807.2013.07.003.

38. Brandal P., Lie A.K., Bassarova A. et al. Genomic aberrations in mucinous tubular and spindle cell renal cell carcinomas. Mod Pathol. 2006;19(2):186- 194. Doi: 10.1038/modpathol.3800499.

39. Cossu-Rocca P., Eble J.N., Delahunt B. et al. Renal mucinous tubular and spindle carcinoma lacks the gains of chromosomes 7 and 17 and losses of chromosome Y that are prevalent in papillary renal cell carcinoma. Mod Pathol., 2006;19(4):488-493. Doi: 10.1038/modpathol.3800565.

40. Kuroda N., Yamashita M., Kakehi Y. et al. Acquired cystic disease- associated renal cell carcinoma: an immunohistochemical and fluorescence in situ hybridization study. Med Mol Morphol,. 2011 Dec; 44(4):228-232. Doi: 10.1007/s00795-010-0496-1.

41. Srigley J.R., Delahunt B., Eble J.N. et al. The International Society of Urological Pathology (ISUP) vancouver classification of renal neoplasia. Am J Surg Pathol., 2013;37(10):1469-1489. Doi: 10.1097/ PAS.0b013e318299f2d1.

42. Wang Y., Wang Yu., Feng M. et al. Renal cell carcinoma associated with Xp11.2 translocation/transcription factor E3 gene fusion: an adult case report and literature review. Journal of International Medical Research 48(10) 1-10. doi.org/10.1177/0300060520942095

43. Magers M.J., Udager A.M., Mehra R. MiT family translocation- associated renal cell carcinoma: a contemporary update with emphasis on morphologic, immunophenotypic, and molecular mimics. Arch Pathol Lab Med. 2015;139(10):1224-1233. Doi: 10.5858/arpa.2015-0196-RA.

44. Rao Q., Shen Q., Xia Q.Y. et al. PSF/SFPQ is a very common gene fusion partner in TFE3 rearrangement-associated perivascular epithelioid cell tumors (PEComas) and melanotic Xp11 translocation renal cancers: clinicopathologic, immunohistochemical, and molecular characteristics suggesting classification as a distinct entity. Am J Surg Pathol., 2015;39(9):1181-1196. Doi: 10.1097/PAS.0000000000000502.

45. Pal S.K., Choueiri T.K., Wang K. et al. Characterization of Clinical Cases of Collecting Duct Carcinoma of the Kidney Assessed by Comprehensive Genomic Profiling. Eur Urol., 2016;70(3) 516-521. Doi: 10.1016/j. eururo.2015.06.019.

46. Wang J., Papanicolau-Sengos A., Chintala S. et al. Collecting duct carcinoma of the kidney is associated with CDKN2A deletion and SLC family gene up-regulation. Oncotarget. 2016;7 (21):29901-29915. 10.18632/ oncotarget.9093.

47. Beckermann K.E., Sharma D., Chaturvedi S. et al. Renal Medullary Carcinoma: Establishing Standards in Practice. J Oncol Pract., 2017 Jul;13(7):414-421. Doi: 10.1200/JOP.2017.020909.

48. Liu Q., Galli S., Srinivasan R. et al. Renal medullary carcinoma: molecular, immunohistochemistry, and morphologic correlation. Am J Surg Pathol., 2013;37(3):368-374. Doi: 10.1097/PAS.0b013e3182770406.

49. Marino-Enriquez A., Ou W.B., Weldon C.B. et al. ALK rearrangement in sickle cell trait-associated renal medullary carcinoma. Genes Chromosomes Cancer. 2011 Mar;50(3):146-153. Doi: 10.1002/gcc.20839.

50. Mehra R., Vats P., Cao X. et al. Somatic Bi-allelic Loss of TSC Genes in Eosinophilic Solid and Cystic Renal Cell Carcinoma. Eur Urol., 2018;74(4):483-486. Doi: 10.1016/j.eururo.2018.06.007.

51. Palsgrove D.N., Li Y., Pratilas C.A. et al. Eosinophilic Solid and Cystic (ESC) Renal Cell Carcinomas Harbor TSC Mutations: Molecular Analysis Supports an Expanding Clinicopathologic Spectrum. Am J Surg Pathol, 2018 Sep;42(9):1166-1181. Doi: 10.1097/PAS.0000000000001111.

52. Alaghehbandan R,, Montiel D..P, Luis As et al. Molecular Genetics of Renal Cell Tumors: A Practical Diagnostic Approach. J Cancers, 2020;12:85. Doi: 10.3390/cancers12010085.

53. Jung SJ, Chung JI, Park SH et al. Thyroid follicular carcinoma-like tumor of kidney: a case report with morphologic, immunohistochemical, and genetic analysis. Am J Surg Pathol, 2006 Mar; 30(3):411-415. Doi: 10.1097/01.pas.0000194745.10670.dd.

54. Skala S.L., Dhanasekaran S., Mehra R. Hereditary Leiomyomatosis and Renal Cell Carcinoma Syndrome (HLRCC): A Contemporary Review and Practical Discussion of the Differential Diagnosis for HLRCC-Associated Renal Cell Carcinoma. J Archives of Pathology & Laboratory Medicine, 2018;142(10):1202-1215. Doi: 10.5858/arpa.2018-0216-RA.

55. Brodaczewska K., Bielecka Z., Maliszewska-Olejniczak K. et al. Metastatic renal cell carcinoma cells growing in 3D on poly-D-lysine or laminin present a stem-like phenotype and drug resistance. J Oncology Reports, 2019;42:1878-1892. Doi: 10.3892/or.2019.7321.

56. Corro C., Moch H. Biomarker discovery for renal cancer stem cells. J Pathol Clin Res. 2018;4(1):3-18. Doi: 10.1002/cjp2.91.

57. Yuan Z, Mo J, Zhao G et al. Targeting Strategies for Renal Cell Carcinoma: From Renal Cancer Cells to Renal Cancer Stem Cells. J Frontiers in Pharmacology. 2016; 7 (423): 1-15. doi: 10.3389/fphar.2016.00423.

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: Ю. И. Османов — д.м.н., профессор кафедры патологической анатомии им. А И. Струкова ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» (Сеченовский Университет), Москва, Россия; e-mail: osmanovyouseef@yandex.ru

Также по теме