ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Структурные и функциональные особенности сосудистого эндотелия

Бабушкина И.В., Сергеева А.С., Пивоваров Ю.И., Курильская  Т.Е., Корякина Л.Б.

ФГБОУ ВПО «Иркутская государственная сельскохозяйственная академия»; ФГБУ «Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии» СО РАМН, 664079 Иркутск, м-н Юбилейный, 100, а/я 15
В статье обобщены основные представления о структуре и функции сосудистого эндотелия, при этом особое внимание уделяется роли кавеол в регуляции функции как самого эндотелия, так и в трансвезикулярном транспорте метаболических субстратов. Описана роль напряжения сдвига в активации сосудистого эндотелия и предполагаемые механизмы его действия.

Ключевые слова

эндотелий
кавеолы
напряжение сдвига

В настоящее время накоплено значительное количество данных о важнейшей роли сосудистого эндотелия в патогенезе сердечно-сосудистых заболеваний. Эндотелий сосудов — сложный паракринный орган, вырабатывающий большое количество биологически активных веществ. Вариации и комбинации факторов микроокружения и локального кровотока в ходе дифференцировки клеток приводят к образованию специализированных форм эндотелия. По особенностям строения различают 3 основных типа эндотелия: непрерывный (соматический); фенестрированный (висцеральный); прерывистый (синусоидный).

Непрерывный эндотелий наиболее распространен в организме (капилляры скелетных мышц и гематоэнцефалического барьера). Составляющие его эндотелиальные клетки плотно прилегают друг к другу, связаны между собой при помощи плотных контактов и содержат множество пиноцитозных пузырьков, участвующих в транспорте метаболитов между кровью и тканями.

Фенестрированный эндотелий имеет фенестры — истонченные участки диаметром 50—80 нм, которые облегчают транспорт веществ между кровью и тканью. Больше всего фенестрированного эндотелия находится в капиллярных клубочках почки, эндокринных железах, ворсинках кишечника, в эндокринной части поджелудочной железы, печени.

Прерывистый эндотелий характеризуется наличием щелей между клетками, базальная мембрана прерывиста. Прерывистый эндотелий находится в органах, в которых происходит обмен клетками (например, в костном мозге).

Везикулы, стыки между эндотелиальными клетками, фенестры участвуют в транспорте веществ. Ультраструктурный фибриллярный субстрат эндотелия обеспечивает различные формы их подвижности; набухание эндотелия может привести к перекрытию просвета капилляра [1].

Структура эндотелия капилляров также специфична для каждого органа и соответствует его функции. Клетки сосудистого эндотелия выстланы гликокаликсом, основными компонентами которого являются различные углеводы в виде гликопротеидов, гликолипидов, моно- и полисахаридов и гликозаминогликанов. Белки, входящие в состав гликокаликса, связаны с сиаловой кислотой, гиалуромат-, гепарин- и хондроитинсульфатами [2]. Гликокаликс выполняет функции транспортного сетевого барьера для трансэндотелиального передвижения молекул и взаимосвязи эндотелия с форменными элементами крови [3]. Межклеточные связи эндотелия сосудов осуществляются благодаря их плотному соединению через интегриновые рецепторы с белками субэндотелиального матрикса. Кроме того, отдельные эндотелиоциты связываются в единый покров кадгерином — белком, экспрессируемым эндотелиальными клетками [4]. В формировании межклеточных связей участвует также молекула адгезии CD146. Эта молекула находится на поверхности эндотелиальных клеток независимо от калибра сосудов [5].

Поверхность эндотелиальных клеток, обращенная в просвет сосудов, образует множество инвагинаций, получивших наименование «кавеолы». Кавеолы — это липидные плоты (микродомены липидного бислоя клеточной мембраны, обогащенные холестерином, сфинголипидами и насыщенными фосфолипидами, в структуре которых обязательным компонентом является белок кавеолин [6]. В настоящее время идентифицировано 3 белка семейства кавеолинов: кавеолин-1, -2 и -3 (Cav-1, -2, -3), молекулы которых отличаются друг от друга несколькими фрагментами аминокислотных остатков, при этом отмечается зависимость их распределения от типа клеток. Необходимо подчеркнуть, что в эндотелиальных клетках происходит экспрессия Cav-1 и -2, тогда как экспрессия Cav-3 ограничена мышечной тканью, тем не менее все 3 кавеолина распространены в гладких мышцах [7—9]. Установлено также, что Cav-1 и -3 необходимы для формирования кавеол, в то время как Cav-2 не может самостоятельно обеспечить кавеологенез, а взаимодействует при этом с Cav-1 [9].

Кавеолины вовлечены в различные функции клетки, включая процессы эндоцитоза, метаболизма липидов, передачу сигналов, ангиогенез и процесс подавления опухолевого роста. Известно, что кавеолы участвуют в транспорте белков, при этом их транспорт осуществляется значительно быстрее, чем через остальную мембрану. Кавеолы и кавеолины являются важнейшими модуляторами передачи сигналов в клетке [10—12].

Установлено, что большинство из белков мембраны кавеол представлено сигнальными молекулами и их рецепторами. К основным сигнальным молекулам кавеол относятся следующие: 1) протеинкиназы, модифицирующие другие белки путем фосфорилирования остатков аминокислот и регулирующие метаболические пути, а также пути передачи сигналов внутри клетки (тирозиновые протеинкиназы: Src и фосфолипаза Cγ; митоген-активируемые киназы — MAPК); 2) белок H-Ras, относящийся к семейству малых G-белков, осуществляющих передачу сигнала полученного извне клетки и регулирующих размножение клеток; 3) каспаза-3 (цистеиновая протеаза, участвующая в прямом и опосредованном разрушении клеточных структур при апоптозе); 4) простациклинсинтаза, NO-синтаза и др.

Рецепторы кавеол, участвующие прямо или опосредованно в передаче сигнала, представлены рецептором эпидермального фактора роста (тирозинкиназный рецептор); скавенджер-рецепторами SR B1 и CD36, связывающими модифицированные липопротеиды низкой плотности; рецепторами инсулина, эндотелина, брадикинина, андрогенов и др. В кавеолах концентрация этих молекул и рецепторов в несколько раз выше, чем на других участках плазматической мембраны, в связи с чем кавеолы получили название «сигналосомы» [13—17].

Основные рецепторы эндотелия, имеющие отношение к системе гомеостаза, условно можно разделить на следующие классы: адренергические, гистаминовые, холинергические, серотониновые, рецепторы, активируемые протеиназой, простаноидные, гликопротеиновые, ангиотензиновые, эндотелиновые, тирозинкиназные, мультилигандные и др. [3]. Не все рецепторы еще открыты, например, Hsp70 (белки теплового шока молекулярной массы 70 кДа) связываются с эндотелиоцитами, интернализуются и локализуются на определенных внутриклеточных органеллах, тем не менее рецепторы, с которыми связываются эти белки, неизвестны [18].

В настоящее время Cav-1 считается одним из немногих белков, способным связывать холестерин in vivo. Считается, что синтезированный в клетке холестерин использует Cav-1 как средство доставки к клеточной мембране. При повышении внутриклеточного уровня холестерина его избыток накапливается в кавеолах, которые выполняют роль «порталов» для вывода холестерина из клеток [10—12].

Эндотелий играет ключевую роль в контроле сосудистого тонуса, обеспечивая тонкую регуляцию просвета сосуда в зависимости от скорости кровотока и кровяного давления на сосудистую стенку, метаболических потребностей участка ткани, снабжаемого кровью данным сосудом. Это связано с тем, что сосудистый эндотелий продуцирует такие вазоактивные факторы, как оксид азота (NO), эндотелин, гиперполяризующий фактор (EDHF), продуцируемый эндотелием, простациклин, ангиотензинпревращающий фермент (АПФ). Кроме того, эндотелий сосудов препятствует коагуляции крови и принимает участие в фибринолизе, а также в регуляции роста гладких мышечных клеток (ГМК) [19, 20].

Выделяют 3 основные группы факторов, активирующих клетки эндотелия.

  1. Изменение объемной скорости кровотока — увеличение напряжения сдвига, которое в свою очередь ведет к активации NO-синтазы.
  2. Циркулирующие гормоны, физиологически активные вещества: катехоламины, вазопрессин, ацетилхолин, брадикинин, аденозин, гистамин.
  3. Факторы тромбоцитарного происхождения: серотонин, аденозинтрифосфат, тромбин, тромбоксан А2.

В результате своего уникального расположения эндотелиальные клетки испытывают действие 3 основных механических сил: боковое давление на стенку сосуда; окружное растяжение или напряжение между эндотелиальными клетками, и напряжение сдвига или силы трения, созданные кровотоком. Из перечисленных механических сил напряжение сдвига является особенно важной, поскольку оно стимулирует высвобождение вазоактивных веществ, изменение уровня экспрессии генов, клеточный метаболизм [21]. Единицей напряжения сдвига является Паскаль (Па) в системе СИ. Для описания напряжения сдвига в сердечно-сосудистой системе используются, как правило, дин/см2 (1 Па = 10 дин/см2).

Вопрос о том, как механический сигнал напряжения сдвига преобразуется в биохимический сигнал внутри эндотелиальной клетки, до сих пор остается открытым. В качестве возможных первичных механорецепторов напряжения сдвига предлагаются следующие 4 кандидата: интегрины, кавеолы, ионные каналы и G-белки, а промежуточными передатчиками сигнала внутри клетки являются митоген-активируемые протеинкиназы (ERK1/2 — киназы, регулируемые внеклеточным сигналом; JNK — c-JUN NH2-концевые киназы; p38 МАРК; ВМК-1 — большая МАР-киназа 1) и ряд других сигнальных молекул — с-Src, Ras, Raf (семейство серин/треониновых протеинкиназ), протеинкиназа С [22]. Имеются данные об образовании специализированного механорецепторного комплекса при ламинарном кровотоке, связанного с взаимодействием тирозинкиназного рецептора Axl с интегринами и обладающего антиапоптотической активностью [23]. M. Chachisvilis и соавт. [24] установили, что изменение напряжения сдвига увеличивает текучесть плазматической мембраны эндотелиальных клеток и способствует лиганд-независимому конформационному переходу в активную форму рецептора брадикинина B2, связанного с G-белками, обеспечивая тем самым процесс релаксации сосудов.

Среди претендентов на роль механорецепторов напряжения сдвига рассматривается также гликокаликс. Исследования in vitro и ex vivo с использованием гепариназы-III и гиалуронидазы, разрушающих протеогликаны и гликозаминогликаны в гликокаликсе, показали значительное снижение выработки NO при напряжении сдвига. Эти данные свидетельствуют, что как гепарансульфат, так и гиалуронан в эндотелиальном гликокаликсе имеют решающее значение для восприятия поток-индуцированных сил [25—27]. В то же время установлено, что гепарансульфатный компонент гликокаликса не участвует в механизме наклона стыков эндотелиальных клеток в ответ на напряжение сдвига [28]. B. Melchior и J.A. Frangos (2010) показали, что эндотелиальные клетки могут адаптироваться к устойчивому сдвигу с определенным углом наклона между эндотелиальными клетками в направлении потока. Авторы выявили, что угол наклона межэндотелиального соединения при однонаправленном потоке снижает распространение напряженности на мембране, уменьшая напряжение межклеточных стыков, что приводит к затуханию механического влияния на клетки. Изменение потока немедленно сопровождается репозиционированием межэндотелиального соединения и повышением уровня цитоплазматического Ca2+ в эндотелии. Корреляция между увеличением наклона стыков и снижением клеточных реакций является показателем эффективной механоадаптации клеток в сосудистом бассейне с ламинарным кровотоком [28].

Ряд исследователей предполагают, что в качестве механорецепторов могут выступать образования апикальной мембраны органелл в эндотелиальных клетках, так называемые первичные реснички (cilia). Показано, что в линиях мышей с ослабленным аппаратом cilia нарушались направленность миграции эндотелиальных клеток и клеточная проницаемость. Это представление основано на том, что первичные реснички передают механический сигнал актиновым филаментам цитоскелета путем индукции экспрессии белков теплового шока (Hsp27) [29].

Кровоток и гемодинамические силы неравномерно распределены на протяжении сосудистой системы.

В прямых участках артериального русла кровоток, как правило, ламинарный, и напряжение сдвига на стенке высокое и направленное. В сосудистых ответвлениях и изгибах кровоток становится неоднородным с неравномерным распределением низкого напряжения сдвига на стенке сосуда. Нарушенный поток может также возникать с аортальной стороны двустворчатого клапана.

В этих сосудистых зонах кровотока образуются рециркуляционные вихри, отрыв и присоединение потока, и возвратно-поступательный поток, которые способствуют большей восприимчивости сосудистой стенки к развитию атеросклеротического поражения [30—32].

В венозной системе нарушенный кровоток связан с рефлюксом (т.е. ретроградным потоком) при недостаточности клапанов венозных сосудов, при их обструкции или стазе [32]. Гидродинамические потоки обеспечивают регуляцию экспрессии генов эндотелиальных клеток. Профиль экспрессии генов в регионах с нарушенными потоками отражает неустойчивое равновесие между атерогенными и защитными генами, действие факторов риска может склонить чашу весов в сторону развития атеросклероза [33].

При сравнении действия разных гемодинамических условий в эксперименте показано, что пониженное напряжение сдвига активирует гены клеточного цикла, связанные с пролиферацией клеток эндотелия, а меняющий направление поток жидкости вызывает адгезию моноцитов к эндотелию [34]. Пониженное напряжение сдвига также способствует существенной активации экспрессии рецептора кининов B1R, которые являются провоспалительными биологически активными веществами [35]. Важно отметить, что колебательный поток с низким напряжением сдвига обладает также способностью индуцировать экспрессию молекул адгезии VCAM-1, ICAM-1 и в меньшей степени Е-селектина [36].

Основной эффектор напряжения сдвига NO — самый мощный из известных вазодилататоров, синтезируемый из L-аргинина тремя основными изоформами NO-синтазы: двумя конститутивными — нейрональной (nNOS) и эндотелиальной (eNOS) — и индуцибельной (iNOS) [37, 38]. Как уже упоминалось, эндотелиальная NO-синтаза находится в кавеолах. Кавеолин-1, связываясь с кальмодулином, ингибирует eNOS. Активация eNOS происходит в случае, если кальций при соединении с кальмодулином вытесняет кавеолин-1. Таким образом, eNOS обеспечивает продукцию NO после воздействия любого стимула, вызывающего повышение концентрации кальция в клетке [8, 39]. Индуцибельная NOS не присутствует в клетках постоянно, а синтезируется при патологических состояниях, при которых уровень NO в тысячи раз превышает его продукцию в норме [40]. Важно отметить, что действие NO как вазодилататора происходит в течение того времени, пока его синтезирует NO-синтаза, локализованная в монослое эндотелия. Это связано с тем, что NO имеет короткий период жизни, в течение которого газообразный медиатор диффундирует в ГМК сосудов, где активирует гуанилатциклазу с образованием цГМФ, что приводит к вазодилатации [41].

Различные стимулы, влияющие на выделение NO, также вызывают синтез простациклина — одного из конечных продуктов метаболизма арахидоновой кислоты. Простациклин, активируя аденилатциклазу, увеличивает содержание циклического аденозинмонофосфата, который вызывает релаксацию сосудов и препятствует агрегации тромбоцитов.

Сосудистый эндотелий также является источником эндотелина-1 — мощного вазоконстриктора и митогенного фактора для ГМК сосудов, фибробластов и кардиомио-цитов. Повышение его уровня способствует атеросклеротическому повреждению сосудов, развитию легочной и системной гипертензии, ишемии мозга, сахарному диабету и рассматривается как маркер и предиктор тяжести и исхода этих патологических состояний. Помимо эндотелина-1 известны еще 2 изоформы эндотелина: эндотелин-2 и эндотелин-3 [42, 43]. Эндотелины оказывают свое действие через эндотелиновые рецепторы типов А и В. Эндотелиновые рецепторы типа А локализуются в ГМК сосудов и опосредуют вазоконстрикторный эффект эндотелина-1 и эндотелина-2, рецепторы типа В обнаружены в эндотелиальных клетках сосудов и участвуют в эндотелийзависимой вазодилатации [44].

Важно также упомянуть АПФ, который экспрессируется в большом количестве в сосудистых эндотелиальных клетках [45]. Растворимые формы фермента обнаруживаются в плазме крови и предположительно происходят от мембрано-связанной формы путем протеолитического расщепления [46]. АПФ играет важную роль в регуляции сосудистого тонуса, участвуя в превращении биологически неактивного ангиотензина I в ангиотензин II, который является мощным вазоконстриктором и разрушает вазодилататор брадикинин [47].

Кроме того, в эндотелии образуются такие факторы вазоконстрикции, как простагландин Н2 и небольшое количество тромбоксана А2 [48]. Тромбоксан А2 и его предшественник — простагландин Н2 связываются с одним рецептором на ГМК и снижают концентрацию циклического аденозинмонофосфата в них, вызывая вазоконстрикцию [49].

Таким образом, эндотелий сосудов — система, выполняющая большое число важнейших регуляторных функций, направленных на поддержание сосудистого гомеостаза. Дальнейшее исследование механизмов регуляции функции эндотелия в условиях нормы и патологии расширит наше представление о роли различных патогенных факторов, влияющих на дисфункцию эндотелия в генезе сердечно-сосудистых заболеваний.

Список литературы

  1. Лупинская З.А., Зарифьян А.Г., Гурович Т.Ц., Шлейфер С.Г. Эндотелий. Функция и дисфункция. Бишкек: КРСУ 2008.
  2. Куприянова В.В., Бобрика И.И., Караганова Я.Л. Сосудистый эндотелий. Киев: Здоров'я 1986.
  3. Кузник Б.И. Клеточные и молекулярные механизмы регуляции системы гемостаза в норме и патологии. Чита 2010.
  4. Пальцев М.А., Иванов А.А., Северин С.Е. Межклеточные взаимодействия. М: Медицина 2003.
  5. Bardin N., Moal V., Anlosso F. et al. Soluble CD146, a novel endothelial marker, is increased in physiopathological setting linked to endothelial functional alteration. J Thromb Hemost 2003;5:915—920.
  6. Cohen A.W., Hnasko R., Schubert W. et al. Role of caveolae and caveolins in health and disease. Physiol Rev 2004;84:1341—1379.
  7. Tang Z., Scherer P.E., Okamoto T. et al. Molecular cloning of caveolin-3, a novel member of the caveolin gene family expressed predominantly in muscle. J Biol Chem 1996;271:2255—2261.
  8. Garcia-Cardena G., Martasek P., Masters B.S. et al. Dissecting the interaction between nitric oxide synthase (NOS) and caveolin. Functional significance of the nos caveolin binding domain in vivo. J Biol Chem 1997;272:25437—25440.
  9. Scheiffele P., Verkade P., Fra A.M. et al. Caveolin-1 and -2 in the exocytic pathway of MDCK cells. J Cell Biol 1998;140:795—806.
  10. Stan R.V. Structure and function of endothelial caveolae. Microsc Res Tech 2002;57:350—364.
  11. Philippe G.F., Scott E.W., David S.P. et al. Caveolin, caveolae, and endothelial cell function. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2003;23:1161—1168.
  12. Воробьева Е.Н., Шумахер Г.И., Хорева М.А. и др. Роль кавеол и кавеолинов в патогенезе болезней человека. Пробл клин мед 2008;5—6:117—124.
  13. Lisanti M.P., Scherer P.E., Vidugiriene J. et al. Characterization of caveolin-rich membrane domains isolated from an endothelial-rich source: Implications for human disease. J Cell Biol 1994;126:111—126.
  14. Igarashi J., Michel T. Agonist-modulated targeting of the EDG-1 receptor to plasmalemmal caveolae: eNOS activation by sphingosine 1-phosphate and the role of caveolin-1 in sphingolipid signal transduction. J Biol Chem 2000;275:32363—32370.
  15. Ju H., Venema V.J., Liang H. et al. Bradykinin activates the Janus-activated kinase/signal transducers and activators of transcription (JAK/STAT) pathway in vascular endothelial cells: localization of JAK/STAT signalling proteins in plasmalemmal caveolae. Biochem J 2000;351:257—264.
  16. Oh P., Schnitzer J. E. Segregation of heterotrimeric G proteins in cell surface microdomains. G(q) binds caveolin to concentrate in caveolae, whereas G(i) and G(s) target lipid rafts by default. Mol Biol Cell 2001;12:685—698.
  17. Sotgia F., Razani B., Bonuccelli G. et al. Intracellular retention of glycosylphosphatidyl inositol-linked proteins in caveolin-deficient cells. Mol Cell Biol 2002;22:3905—3926.
  18. Pockley A.G., Calderwood S.K., Multhoff G. The atheroprotective properties of Hsp70: a role for Hsp70-endothelial interactions? Cell Stress and Chaperones 2009;14:545—553.
  19. Мартынов А.И., Аветян Н.Г., Акатова Е.В. и др. Дисфункции эндотелия у больных гипертонической болезнью. Кардиология 2005;10:101—104.
  20. Намаканов Б.А. Роль эндотелия в формировании артериальной гипертензии. Кардиология 2005;12:62—66.
  21. Davies P.F. Flow-mediated endothelial mechanotransduction. Physiol Rev 1995;75:519—560.
  22. Traub O., Berk B.C. Laminar shear stress: mechanisms by which endothelial cells transduce an atheroprotective force. Arterioscler Thromb Vasc Biol 1998;18:677—685.
  23. Arcangelo D.D., Ambrosino V., Giannuzzo M. et al. Axl receptor activation mediates laminar shear stress anti-apoptotic effects in human endothelial cells. Cardiovasc Res 2006;71:754—763.
  24. Chachisvilis M., Zhang Y.-L., Frangos J.A. G protein-coupled receptors sense fluid shear stress in endothelial cells. Proc Natl Acad Sci USA 2006;103:15463—15468.
  25. Mochizuki S., Vink H., Hiramatsu O. et al. Role of hyaluronic acid glycosaminoglycans in shear-induced endothelium-derived nitric oxide release. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2003;285:722—726.
  26. Yao Y., Rabodzey A., Dewey C.F. Jr. Glycocalyx modulates the motility and proliferative response of vascular endothelium to fluid shear stress. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2007;293:1023—1030.
  27. Potter D.R., Damiano E.R. The hydrodynamically relevant endothelial cell glycocalyx observed in vivo is absent in vitro. Circ Res 2008;102:770—776.
  28. Melchior B., Frangos J.A. Shear-induced endothelial cell-cell junction inclination. Am J Physiol Cell Physiol 2010;299:621—629.
  29. Jones T.J., Adapala R.K., Geldenhuys W.J. et al. Primary cilia regulates the directional migration and barrier integrity of endothelial cells through the modulation of hsp27 dependent actin cytoskeletal organization. J Cellular Physiology 2012;227:70—76.
  30. Stone P.H., Coskun A.U., Yeghiazarians Y. et al. Prediction of sites of coronary atherosclerosis progression: in vivo profiling of endothelial shear stress, lumen, and outer vessel wall characteristics to predict vascular behavior. Curr Opin Cardiol 2003;18:458—470.
  31. Libby P., Theroux P. Pathophysiology of coronary artery disease. Circulation 2005;111:3481—3488.
  32. Chiu J.-J., Chien S. Effects of Disturbed Flow on Vascular Endothelium: Pathophysiological Basis and Clinical Perspectives. Physiol Rev 2011;91:327—387.
  33. Passerini A.G., Polacek D.C., Shi C. et al. Coexisting proinflammatory and antioxidative endothelial transcription profiles in a disturbed flow region of the adult porcine aorta. Proc Natl Acad Sci USA 2004;101:2482—2487.
  34. Conway D.E., Williams M.R., Eskin S.G. et al. Endothelial cell responses to atheroprone flow are driven by two separate flow components: low time-average shear stress and fluid flow reversal. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2010;298:367—374.
  35. Duchene J., Cayla C., Vessillier S. et al. Laminar shear stress regulates endothelial kinin B1 receptor expression and function. Potential implication in atherogenesis. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2009;29:1757—1763.
  36. Chappell D.C., Varner S.E., Nerem R.M. et al. Oscillatory shear stress stimulates adhesion molecule expression in cultured human endothelium. Circ Res 1998;82:532—539.
  37. Griffits P.W., Stuehr D.J. Nitric oxide synthases: properties and catalytic mechanism. Ann Rev Physiol 1995;57:707—736.
  38. Stuehr D.J. Mammalian nitric oxide synthases. Biochem Biophys Acta 1999;1411:217—230.
  39. Michel J.B., Feron O., Sacks D. et al. Reciprocal regulation of endothelial nitric-oxide synthase by Ca2+-calmodulin and caveolin. J Biol Chem 1997;272:15583—15586.
  40. Марков Х.М. Оксид азота и ишемическая болезнь сердца. Докл РАМН 2009;2:40—46.
  41. Титов В.Н. Диагностическое значение эндотелийзависимой вазодилатации. Функциональное единение эндотелина, оксида азота и становление функции в филогенезе. Клин лаб диагн 2009;2:3—16.
  42. Herrmann J., Lerman A. The endothelium: dysfunction and beyond. J Nucl Cardiol 2001;8:197—206.
  43. Teerlink J.R. Endothelins: pathophysiology and treatment implications in chronic heart failure. Curr Heart Fail Reports 2005;2:191—197.
  44. Rich S., McLaughlin V.V. Endothelial receptors blockers in cardiovascular disease. Circulation 2003;108:2184—2190.
  45. Gohlke P., Bunning P., Unger T. Distribution and metabolism of angiotensin I and II in the blood vessel wall. Hypertension 1992;20:151—157.
  46. Erdos E.G. Some old and some new ideas on kinin metabolism. J Cardiovasc Pharmacol 1990;15:20—24.
  47. Bhoola K.D., Figueroa C.D., Worthy K. Bioregulation of kinins, kallikreins, kininogens, and kininases. Pharmacol Rev 1992;44:1—80.
  48. Silberbauer K., Sinzinger H. Thrombocyte function and systemic effect of prostaglandin I2 inhalation. Acta Med Austriaca Suppl 1979;6:401—403.
  49. Davidge S.T. Prostaglandin H synthase and vascular function. Circ Res 2001;89:650.

Об авторах / Для корреспонденции

Сведения об авторах:
ФГБУ «Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии» СО РАМН, Иркутск
Научный отдел коронарного атеросклероза
Бабушкина И.В. - к.биол.н., ст.н.с.
Сергеева А.С. - к.биол.н., ст.н.с.
Пивоваров Ю.И. - д.м.н., проф., вед.н.с.
Курильская Т.Е. - д.м.н., зав. отделом.
Корякина Л.Б. - к.м.н., ст.н.с.
E-mail: babushcinai@mail.ru

Также по теме