ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Внеклеточные везикулы – биомаркеры патологии центральной нервной системы плода при плацентарной дисфункции

Кан Н.Е., Леонова А.А., Гусар В.А., Тютюнник В.Л.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия

Представлен анализ современных литературных данных, касающихся изучения внеклеточных везикул в контексте биомаркерных молекул. В статье сделан акцент на их ключевой роли в коммуникации между матерью и плодом. Обсуждаются возможность получения внеклеточных везикул из различных типов нервных клеток, их вовлеченность в регуляцию пластичности нервной системы, нейротрансмиссию, развитие головного мозга, а также патогенез неврологических нарушений. Рассматривается функция нейрональных экзосом в качестве важных медиаторов плацента-ассоциированных механизмов перинатального воспаления и повреждения головного мозга плода. Представлены новые данные по исследованию уровня сигнальных молекул, входящих в состав экзосом нейронального происхождения, подтверждающие возможность их применения в качестве биомаркеров «жидкостной биопсии» головного мозга. Описано успешное использование технологии получения нейрональных фетальных экзосом из крови матери для оценки неблагоприятных исходов развития нервной системы плода в результате воздействия этанола в I триместре беременности.
Заключение: Технология получения нейрональных фетальных экзосом из крови матери открывает уникальную возможность неинвазивной динамической оценки состояния головного мозга и степени дисфункции нервной системы плода во время беременности на основе изучения биомаркерных молекул в составе нейрональных экзосом. Усовершенствование алгоритма ведения беременности с помощью внедрения данных технологий позволит снизить риск повреждения головного мозга новорожденных и избежать возникновения отдаленных последствий неврологических нарушений во взрослом возрасте.

Вклад авторов: Леонова А.А. – поиск публикаций, обработка и анализ материала по теме, написание текста рукописи; Кан Н.Е., Гусар В.А., Тютюнник В.Л. – концепция и дизайн исследования, редактирование статьи.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование: Работа выполнена при финансовой поддержке гранта РНФ №24-64-00006.
Для цитирования: Кан Н.Е., Леонова А.А., Гусар В.А., Тютюнник В.Л. Внеклеточные везикулы – 
биомаркеры патологии центральной нервной системы плода при плацентарной дисфункции.
Акушерство и гинекология. 2024; 9: 5-11
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2024.135

Ключевые слова

внеклеточные везикулы
плацентарная дисфункция
фетальные нейрональные экзосомы
дисфункция нейрогенеза
неинвазивная диагностика

Большие акушерские синдромы – термин, предложенный в 2009 г. Roberto Romero и Gian Carlo Di Renzo [1], объединяющий такие осложнения беременности, как преждевременные роды, преждевременный разрыв плодных оболочек, пре­эклампсия, задержка роста плода и др. [2]. Согласно имеющимся данным, в основе патогенеза больших акушерских синдромов [3] лежит плацентарная недостаточность как результат адаптивного ответа материнско-плодового компартмента на патологические импульсы [3]. С помощью различных механизмов организм матери пытается защитить плод от неблагоприятных воздействий (например, при нарушении кровотока в сосудах матки и плаценты происходит компенсаторное повышение артериального давления у матери). Однако адаптивные реакции материнского организма могут привести к дисфункции многих органов и систем, возникновению неблагоприятных исходов у плода как в краткосрочном, так и в долгосрочном периодах. Перинатальное поражение центральной нервной системы (ЦНС) (внутрижелудочковое кровоизлияние, ишемия головного мозга) проявляется в последующем в виде различных неврологических расстройств; в частности, детский церебральный паралич, задержка физического и психомоторного развития, поведенческие расстройства и неспособность к обучению отмечаются почти у половины детей [4–6]. Тяжелые формы перинатальных поражений ЦНС наблюдаются у 1,5–10% доношенных и у 60–70% недоношенных детей. Увеличивается распространенность аутизма, синдрома дефицита внимания и гиперактивности, а также других нарушений нервного развития, потенциально имеющих внутриутробную этиологию. Воздействие химических веществ, лекарств, инфекций и, как следствие, возникновение воспаления или неблагоприятных условий питания может нарушить развитие головного мозга плода, истощает субпопуляцию нейронов и отрицательно влияет на формирование нормальных синаптических связей [7].

Внеклеточные везикулы открыты в 1967 г. английским исследователем Питером Вульфом. Они впервые верифицированы в плазме крови человека и получили исходное название «тромбоцитарная пыль». Установлено, что внеклеточные везикулы самостоятельно высвобождаются большинством живых клеток различных организмов (архей, про­кариот и эукариот), и эволюционно процесс их высвобождения остается неизменным у всех организмов, то есть формирование этих структур характерно для различных типов клеток любого эволюционного уровня. Внеклеточные везикулы разделяют на три основных класса: экзосомы, апоптозные тельца и микро­везикулы [8].

В последние десятилетия активно ведутся исследования по изучению и применению внеклеточных везикул в качестве биомаркеров различных патологических состояний, в том числе связанных с плацентарной дисфункцией [8–11]. Недавние открытия в области перинатальной медицины показали, что внеклеточные везикулы являются ключевыми молекулами, проникающими через плаценту и осуществляющими сигналинг между плодом и ма­­терью. Их роль существенна в иммунологических, сосудистых реакциях и метаболической адаптации беременной к вынашиванию плода. Внеклеточные везикулы секретируются монослоем синцитиотрофобласта, покрывающим ворсинки хориона. И по мере увеличения гестационного срока их количество растет. При различных осложнениях беременности, в частности преэклампсии, гестационном сахарном диабете, преждевременных родах и задержке роста плода, их количество увеличивается по сравнению с физиологической беременностью [12]. В кровотоке матери внеклеточные везикулы могут быть обнаружены уже на ранних сроках беременности (˜6 недель) [9, 13]. При этом груз и биологическая активность внеклеточных везикул изменяются по мере развития дисфункции, что позволяет рассматривать их в качестве специфичных маркеров патологического течения беременности до появления клинических симптомов [8, 10, 13–19].

Внеклеточные везикулы весьма гетерогенны, что в значительной степени затрудняет характеристику их свойств и функций. По современным представлениям, основанным на биогенезе, внеклеточные везикулы являются гетерогенной популяцией мембранных пузырьков различного происхождения [20]. Экзосомы (диаметр 30–100 нм) образуются в виде внутрипросветных пузырьков в результате почкования эндосомальной мембраны внутрь и секретируются во время слияния мультивезикулярных эндосом с поверхностью клетки, тогда как микровезикулы (диаметр от 50 до 1000 нм) образуются путем формирования отростка (почкование) плазматической мембраны наружу и последующего высвобождения пузырьков во внеклеточное пространство [21, 22]. К популяции внеклеточных везикул также относят апоптотические тельца (диаметр >1000 нм), которые высвобождаются клетками, подвергшимися запрограммированной клеточной гибели (апоптозу) [23].

Доказано, что каждый тип клеток настраивает биогенез внеклеточных везикул в зависимости от физиологического или патологического состояния клетки и высвобождает их с определенным составом липидов, белков и нуклеиновых кислот [24]. Кроме того, природа и количество груза внеклеточных везикул зависят от типа и состояния донорской клетки, а также стимулов, модулирующих их выработку и секрецию [25]. Несмотря на то что образование микровезикул и экзосом происходит в разных компартментах клетки, в их биогенезе участвуют общие внутриклеточные механизмы сортировки, что во многих случаях является препятствием для возможности различать субпопуляции внеклеточных везикул [20].

Экзосомы содержат определенный груз, в частности белки, метаболиты, нуклеиновые кислоты и некодирующие виды РНК. Среди основных белков, включенных в экзосомы, представители семейства тетраспанинов (CD9, CD63, CD81 и CD82), участвующих в формировании экзосом и сортировке груза, эндосомального сортировочного комплекса (ESCRT), необходимого для транспортных белков (Alix, TSG101), интегрины, белки теплового шока (Hsp), актин и флотилины. Кроме того, экзосомы содержат липидные компоненты, из которых состоит их двуслойная мембрана, такие как сфингомиелин, холестерин и церамиды, также оказывающие влияние на сортировку груза, секрецию экзосом и передачу сигналов [23, 26, 27]. Помимо белков, в экзосомы избирательно упакованы микроРНК (мкРНК). Последние сортируются в экзосомах в зависимости от присутствия специфических мотивов в их последовательности, что указывает на зависимую регуляцию данного процесса [28].

Экзосомы секретируются различными типами клеток, включая макрофаги, раковые, дендритные и мезенхимальные стволовые клетки. Их присутствие в различных биологических жидкостях, таких как грудное молоко, кровь, сыворотка, моча, слюна, амниотическая и синовиальная жидкость, опосредует системно и локально межклеточную коммуникацию и обеспечивает внутриклеточную передачу сигналов [29, 30]. Небольшой размер и мембранный состав позволяют им преодолевать основные биологические мембраны, включая гематоэнцефалический барьер. Они обладают значительным терапевтическим потенциалом благодаря содержанию различного груза и способности доставлять его к клеткам-мишеням, воздействуя, таким образом, на разные сигнальные пути [31].

Оценка дисфункции головного мозга плода во время родов, обусловленной плацентарной недостаточностью, и новорожденного вскоре после рождения является одной из острейших проблем в перинатальной медицине [32, 33]. Основным препятствием на пути к выявлению механизмов и сроков манифестации нарушений нервно-психического развития является почти полное отсутствие чувствительных неинвазивных методов диагностики [7]. При этом магнитно-резонансную томографию и позитронно-эмиссионную томографию возможно использовать для исследования функции головного мозга плода, начиная с 18 недель беременности [34]. Кроме того, ограничениями исследований специфичных биомаркеров в периферической крови являются невозможность связать их уровни с патологией головного мозга, а также относительная неопределенность их тканевого происхождения [35].

Возможность получения экзосом из различных клеточных источников, в частности нейрональных, ознаменовала новый этап в изучении биомаркеров дисфункции головного мозга [36, 37]. Нейрональные экзосомы вовлечены в его развитие посредством регуляции пластичности нервной системы и морфологии клеток [38], в патогенез неврологических нарушений, а также процесс регенерации нейронов после травмы головного мозга путем усиления ремоделирования нейритов [39]. Недавние исследования показали, что экзосомы служат важным медиатором и регулятором нейротрансмиссии посредством изменения пресинаптической/постсинаптической передачи сигналов и контроля высвобождения нейротрансмиттеров [40–42]. Все основные типы нервных клеток, включая нейроны, микроглию, астроциты, олигодендроциты и нервные стволовые клетки, могут секретировать экзосомы и поглощать их [43]. Таким образом, коммуникация между нервными клетками посредством экзосом может регулировать различные физиологические процессы в ЦНС [35].

Помимо общих особенностей, экзосомы нейронального происхождения обладают некоторыми характеристиками в зависимости от их клеточного происхождения и содержат специфичные для нейронов маркеры, включая молекулу клеточной адгезии L1 (L1CAM) и субъединицы GluR2/3 глутаматных рецепторов [35]. Секреция экзосом была продемонстрирована как в развивающихся, так и в дифференцированных зрелых нейронах. Было показано, что на их высвобождение из высокодифференцированных нейронов влияют приток кальция и глутаматергическая синаптическая возбудимость [44]. Важной особенностью нейрональных экзосом является способность преодолевать гематоэнцефалический барьер двунаправленным образом, что позволяет рассматривать их применение в качестве «жидкостной биопсии» головного мозга [45].

Микроглия является первой линией защиты ЦНС от проникновения патогенов и повреждения головного мозга, участвует в иммунной регуляции, восстановлении и ремоделировании тканей для поддержания гомеостаза ЦНС [35]. Секреция экзосом микроглией тесно связана с инфекцией и нейровоспалением. А анализ содержания белка в этих экзосомах представил уникальные для них маркеры, в частности аминопептидазу CD13 и переносчик лактата MCT-1 [46]. Кроме того, астроциты, наиболее распространенный тип глиальных клеток, играющих важную регуляторную роль в контроле транспорта, активации иммунных клеток и поддержании гомеостаза головного мозга, также секретируют экзосомы, отличающиеся специфичными маркерами, включая глиальный фибриллярный кислый белок (GFAP), транспортер глутамин-аспартата (GLAST) и глутаминсинтетазу (GLUL) [47]. Олигодендроциты, отвечающие за образование миелиновых оболочек на аксонах и обеспечивающие их поддержку [48], секретируют экзосомы, содержащие компоненты миелина, основной белок миелина (MBP), миелиновый олигодендроцитарный гликопротеин (MOG) и липиды миелина [49].

Экзосомы являются важными медиаторами плацента-опосредованных механизмов перинатального воспаления и повреждения головного мозга плода [50]. Содержащие уникальный паттерн активных молекул, они могут отражать степень дисфункции нервной системы плода во время беременности. Их способность стимулировать перекрестные помехи между матерью и плодом обеспечивает функциональные изменения и межклеточную передачу сигналов не только локально, но и в отдаленных органах, включая головной мозг. В одном из исследований были выделены экзосомальные маркеры из плодных оболочек на фоне воздействия медиаторов инфекции и воспаления для оценки риска преждевременных родов или разрыва плодных оболочек, оно показало наличие уникальной сигнатуры экзосомальных белков из разных типов клеток в ответ на различные стимулы [51]. Экзосомы вовлечены в нейровоспаление по оси «плацента-плод-головной мозг» [50]. Во время патологических состояний они могут перемещаться к нервным клеткам, ингибировать или нарушать регуляцию экспрессии специфических генов за счет содержания в них нейротоксического груза, в частности мкРНК, и способствовать, таким образом, перинатальному повреждению головного мозга плода [52]. Перемещенные экзосомы также могут индуцировать нейровоспаление путем стимуляции клеток-реципиентов к выработке провоспалительных цитокинов [53]. Локально активированные моноциты и макрофаги пересекают гематоэнцефалический барьер и секретируют экзосомы, которые поглощаются астроцитами, вызывая дисфункцию нейронов посредством высвобождения специфического груза [52]. В другом исследовании было показано, что экзосомы, секретируемые микроглией, подвергшейся воздействию воспалительных стимулов, сливаются с нейронами и трансфицируют мкРНК, приводя к изменениям синаптической структуры и уменьшению дендритных отростков [54]. Кроме того, пренатальное воздействие воспаления с использованием доклинической модели церебрального паралича привело к гиперреактивности иммунной системы, которая сохранялась во взрослом возрасте [55]. Вышеизложенное свидетельствует о том, что внутриутробное воспаление может способствовать не только нейровоспалению и острому повреждению головного мозга плода, но и приводить к устойчивым и долгосрочным изменениям в иммунном статусе у детей с неврологической дисфункцией, обусловленной плацентарной недостаточностью.

Первые данные о возможности получения внеклеточных везикул, обогащенных экзосомами нейронального происхождения, и доказательства того, что нейрональные экзосомы являются наиболее чувствительными и специфичными биомаркерами дисфункции головного мозга, были получены группой исследователей из США [56]. Было показано, что нейрональные экзосомы содержат более высокие уровни сигнальных молекул, вовлеченных в клеточный метаболизм, процессы репарации и регенерации. Кроме того, груз нейрональных экзосом может отражать дозозависимые реакции на лекарственную терапию, что может быть использовано для мониторинга и/или прогнозирования фармакологического ответа [57]. Предложенная учеными методология продемонстрировала хорошие диагностические и прогностические результаты при ряде нейродегенеративных заболеваний [35, 37, 47, 56, 58–60].

Успешное применение указанной технологии было позже продемонстрировано для получения нейрональных экзосом фетального происхождения из крови матери во время беременности [7, 61, 62]. Использование такого подхода открывает весьма привлекательную перспективу получения специфичных биомаркеров для патологий плода, связанных с неврологической дисфункцией, поскольку нейрональные экзосомы способны проникать через гематоэнцефалический барьер плода и плацентарный барьер в кровоток матери [43, 61, 63]. По данным Goetzl L. et al., 20% от общего количества нейрональных экзосом, выделенных из образцов плазмы крови матери в I и II триместрах беременности, состоят из везикул, секретируемых ЦНС плода [7]. Авторам, в частности, удалось получить данные везикулы с использованием антитела против Contactin-2, аксонального гликопротеина-1 (TAG-1), который временно экспрессируется на аксональной поверхности определенных нейронов в течение эмбрионального развития, для оценки неблагоприятных исходов развития нервной системы плода в результате воздействия этанола в I триместре [7, 61]. А дальнейший анализ нейрональных экзосом фетального происхождения показал, что экспрессия miR-9, ключевой мкРНК, участвующей в нейрогенезе, а также уровни ряда синаптических белков значительно снижены в связи с влиянием этанола во время беременности [61]. Наряду с этим, способность нейрональных экзосом пересекать гематоэнцефалический барьер двунаправленным образом позволяет использовать их нейропротекторные или нейрорегенеративные свойства с целью разработки и доставки лекарств для лечения перинатального повреждения головного мозга [64].

Заключение

Разработка технологии детекции фетальных нейрональных везикул в кровотоке матери в качестве платформы для «жидкостной биопсии» головного мозга плода открывает новые возможности по неинвазивному пренатальному мониторингу нарушений развития нервной системы и их потенциальной коррекции при плацента-ассоциированных заболеваниях. Усовершенствование алгоритма ведения беременности с помощью внедрения данных технологий позволит снизить риск повреждения головного мозга новорожденных и избежать возникновения отдаленных последствий неврологических нарушений во взрослом возрасте.

Список литературы

  1. Di Renzo G.C. The great obstetrical syndromes. J. Matern. Fetal Neonatal. Med. 2009; 22(8): 633-5. https://dx.doi.org/10.1080/14767050902866804.
  2. Ахмадеев Н.Р., Фаткуллин И.Ф., Фаткуллина Л.С. Сердечно-сосудистые последствия больших акушерских синдромов. Акушерство и гинекология. 2023; 4: 5-11.
  3. Моргоева А.А., Цахилова С.Г., Сакварелидзе Н.Ю., Зыкова А.С., Олисаева И.В. Роль внеклеточных везикул в развитии эндотелиальной дисфункции при преэклампсии. Эффективная фармакотерапия. 2021; 17(32): 8-12.
  4. Wan L., Luo K., Chen P. Mechanisms underlying neurologic injury in intrauterine growth restriction. J. Child Neurol. 2021; 36(9): 776-84. https://dx.doi.org/10.1177/0883073821999896.
  5. Mazarico E., Llurba E., Cabero L., Sánchez O., Valls A., Martín-Ancel A. et al. Associations between neural injury markers of intrauterine growth-restricted infants and neurodevelopment at 2 years of age. J. Matern. Fetal Neonatal. Med. 2019; 32(19): 3197-203. https://dx.doi.org/10.1080/14767058.2018.1460347.
  6. Sacchi C., Marino C., Nosarti C., Vieno A., Visentin S., Simonelli A. Association of intrauterine growth restriction and small for gestational age status with childhood cognitive outcomes: a systematic review and meta-analysis. JAMA Pediatr. 2020; 174(8): 772-81. https://dx.doi.org/10.1001/jamapediatrics.2020.1097.
  7. Goetzl L., Darbinian N., Goetzl E.J. Novel window on early human neurodevelopment via fetal exosomes in maternal blood. Ann. Clin. Transl. Neurol. 2016; 3(5): 381-5. https://dx.doi.org/10.1002/acn3.296.
  8. Buca D., Bologna G., D'Amico A., Cugini S., Musca F., Febbo M. et al. Extracellular vesicles in feto-maternal crosstalk and pregnancy disorders. Int J Mol. Sci. 2020; 21(6): 2120. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21062120.
  9. Adam S., Elfeky O., Kinhal V., Dutta S., Lai A., Jayabalan N. et al. Review: Fetal-maternal communication via extracellular vesicles – Implications for complications of pregnancies. Placenta. 2017; 54: 83-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2016.12.001.
  10. Menon R., Shahin H. Extracellular vesicles in spontaneous preterm birth. Am. J. Reprod. Immunol. 2021; 85(2): e13353. https://dx.doi.org/10.1111/aji.13353.
  11. Yang C., Song G., Lim W. Effects of extracellular vesicles on placentation and pregnancy disorders. Reproduction. 2019; 158(5): R189-R196. https://dx.doi.org/10.1530/REP-19-0147.
  12. Salomon C., Rice G.E. Role of exosomes in placental homeostasis and pregnancy disorders. Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. 2017; 145: 163-79. https://dx.doi.org/10.1016/bs.pmbts.2016.12.006.
  13. Afzal A., Khan M., Gul Z., Asif R., Shahzaman S., Parveen A. et al. Extracellular vesicles: the next frontier in pregnancy research. Reprod. Sci. 2024; 31(5): 1204-14. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-023-01434-2.
  14. Morelli A.E., Sadovsky Y. Extracellular vesicles and immune response during pregnancy: A balancing act. Immunol. Rev. 2022; 308(1): 105-22. https://dx.doi.org/10.1111/imr.13074.
  15. Wang Z., Yang R., Zhang J., Wang P., Wang Z., Gao J. et al. Role of extracellular vesicles in placental inflammation and local immune balance. Mediators Inflamm. 2021; 2021: 5558048. https://dx.doi.org/10.1155/2021/5558048.
  16. Fudono A., Imai C., Takimoto H., Tarui I., Aoyama T., Yago S. et al. Trimester-specific associations between extracellular vesicle microRNAs and fetal growth. J. Matern. Fetal Neonatal. Med. 2022; 35(25): 8728-34. https://dx.doi.org/10.1080/14767058.2021.2000598.
  17. Gebara N., Correia Y., Wang K., Bussolati B. Angiogenic properties of placenta-derived extracellular vesicles in normal pregnancy and in preeclampsia. Int. J. Mol. Sci. 2021; 22(10): 5402. https://dx.doi.org/10.3390/ijms22105402.
  18. Taglauer E.S., Fernandez-Gonzalez A., Willis G.R., Reis M., Yeung V., Liu X. et al. Mesenchymal stromal cell-derived extracellular vesicle therapy prevents preeclamptic physiology through intrauterine immunomodulation. Biol. Reprod. 2021; 104(2): 457-67. https://dx.doi.org/10.1093/biolre/ioaa198.
  19. Ortega M.A., Fraile-Martínez O., García-Montero C., Paradela A., Asunción Sánchez-Gil M., Rodriguez-Martin S. et al. Unfolding the role of placental-derived extracellular vesicles in pregnancy: from homeostasis to pathophysiology. Front. Cell. Dev. Biol. 2022; 10: 1060850. https://dx.doi.org/10.3389/fcell.2022.1060850.
  20. van Niel G., D'Angelo G., Raposo G. Shedding light on the cell biology of extracellular vesicles. Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 2018; 19(4): 213-28. https://dx.doi.org/10.1038/nrm.2017.125.
  21. Ghafourian M., Mahdavi R., Akbari Jonoush Z., Sadeghi M., Ghadiri N., Farzaneh M. et al. The implications of exosomes in pregnancy: emerging as new diagnostic markers and therapeutics targets. Cell. Commun. Signal. 2022; 20(1): 51. https://dx.doi.org/10.1186/s12964-022-00853-z.
  22. Yang W., Pan X., Ma A. The potential of exosomal RNAs in atherosclerosis diagnosis and therapy. Front. Neurol. 2021; 11: 572226. https://dx.doi.org/10.3389/fneur.2020.572226.
  23. Gurung S., Perocheau D., Touramanidou L., Baruteau J. The exosome journey: from biogenesis to uptake and intracellular signalling. Cell. Commun. Signal. 2021; 19(1): 47. https://dx.doi.org/10.1186/s12964-021-00730-1.
  24. Colombo M., Raposo G., Théry C. Biogenesis, secretion, and intercellular interactions of exosomes and other extracellular vesicles. Annu. Rev. Cell. Dev. Biol. 2014; 30: 255-89. https://dx.doi.org/10.1146/annurev-cellbio-101512-122326.
  25. Minciacchi V.R., Freeman M.R., Di Vizio D. Extracellular vesicles in cancer: exosomes, microvesicles and the emerging role of large oncosomes. Semin. Cell. Dev. Biol. 2015; 40: 41-51. https://dx.doi.org/10.1016/j.semcdb.2015.02.010.
  26. Zhang Y., Liu Y., Liu H., Tang W.H. Exosomes: biogenesis, biologic function and clinical potential. Cell. Biosci. 2019; 9: 19. https://dx.doi.org/10.1186/s13578-019-0282-2.
  27. Abels E.R., Breakefield X.O. Introduction to extracellular vesicles: biogenesis, RNA cargo selection, content, release, and uptake. Cell. Mol. Neurobiol. 2016; 36(3): 301-12. https://dx.doi.org/10.1007/s10571-016-0366-z.
  28. Villarroya-Beltri C., Gutiérrez-Vázquez C., Sánchez-Cabo F., Pérez-Hernández D., Vázquez J., Martin-Cofreces N. et al. Sumoylated hnRNPA2B1 controls the sorting of miRNAs into exosomes through binding to specific motifs. Nat. Commun. 2013; 4: 2980. https://dx.doi.org/10.1038/ncomms3980.
  29. Qin J., Xu Q. Functions and application of exosomes. Acta Pol. Pharm. 2014; 71(4): 537-43.
  30. Morishita M., Takahashi Y., Nishikawa M., Takakura Y. Pharmacokinetics of exosomes-an important factor for elucidating the biological roles of exosomes and for the development of exosome-based therapeutics. J. Pharm. Sci. 2017; 106(9): 2265-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.xphs.2017.02.030.
  31. Zhang J., Shi W., Qu D., Yu T., Qi C., Fu H. Extracellular vesicle therapy for traumatic central nervous system disorders. Stem. Cell. Res. Ther. 2022; 13(1): 442. https://dx.doi.org/10.1186/s13287-022-03106-5.
  32. Graham E.M., Burd I., Everett A.D., Northington F.J. Blood biomarkers for evaluation of perinatal encephalopathy. Front. Pharmacol. 2016; 7: 196. https://dx.doi.org/10.3389/fphar.2016.00196.
  33. Приходько А.М., Киртбая А.Р., Романов А.Ю., Баев О.Р. Биомаркеры повреждения головного мозга у новорожденных. Неонатология: новости, мнения, обучение. 2018; 7(1): 70-6.
  34. Griffiths P.D., Bradburn M., Campbell M.J., Cooper C.L., Embleton N., Graham R. et al. MRI in the diagnosis of fetal developmental brain abnormalities: the MERIDIAN diagnostic accuracy study. Health Technol. Assess. 2019; 23(49): 1-144. https://dx.doi.org/10.3310/hta23490.
  35. Huo L., Du X., Li X., Liu S., Xu Y. The emerging role of neural cellderived exosomes in intercellular communication in health and neurodegenerative diseases. Front. Neurosci. 2021; 15: 738442. https://dx.doi.org/10.3389/fnins.2021.738442.
  36. Silachev D.N., Goryunov K.V., Shpilyuk M.A., Beznoschenko O.S., Morozova N.Y., Kraevaya E.E. et al. Effect of MSCs and MSC-derived extracellular vesicles on human blood coagulation. Cells. 2019; 8(3): 258. https://dx.doi.org/10.3390/cells8030258.
  37. Wang L., Zhang L. Circulating exosomal miRNA as diagnostic biomarkers of neurodegenerative diseases. Front. Mol. Neurosci. 2020; 13: 53. https://dx.doi.org/10.3389/fnmol.2020.00053.
  38. Morton M.C., Neckles V.N., Seluzicki C.M., Holmberg J.C., Feliciano D.M. Neonatal subventricular zone neural stem cells release extracellular vesicles that act as a microglial morphogen. Cell. Rep. 2018; 23(1): 78-89. https://dx.doi.org/10.1016/j.celrep.2018.03.037.
  39. Xia X., Wang Y., Zheng J.C. Extracellular vesicles, from the pathogenesis to the therapy of neurodegenerative diseases. Transl. Neurodegener. 2022; 74(2): 101558. https://dx.doi.org/10.1186/s40035-022-00330-0.
  40. Frühbeis C., Fröhlich D., Kuo W.P., Amphornrat J., Thilemann S., Saab A.S. et al. Neurotransmitter-triggered transfer of exosomes mediates oligodendrocyte-neuron communication. PLoS Biol. 2013; 11(7): e1001604. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pbio.1001604.
  41. Яковлев А.А. Нейрональные экзосомы как новые системы сигналинга. Биохимия. 2023; 88(4): 457-65.
  42. Турчинец А.М., Яковлев А.А. Структурные детерминанты малых внеклеточных везикул (экзосом) и их роль в осуществлении биологических функций. Нейрохимия. 2023; 40(4): 353-66.
  43. Gamage T.K.J.B., Fraser M. The role of extracellular vesicles in the developing brain: current perspective and promising source of biomarkers and therapy for perinatal brain injury. Front. Neurosci. 2021; 15: 744840. https://dx.doi.org/10.3389/fnins.2021.744840.
  44. Lachenal G., Pernet-Gallay K., Chivet M., Hemming F.J., Belly A., Bodon G. et al. Release of exosomes from differentiated neurons and its regulation by synaptic glutamatergic activity. Mol. Cell. Neurosci. 2011; 46(2): 409-18. https://dx.doi.org/10.1016/j.mcn.2010.11.004.
  45. Chen C.C., Liu L., Ma F., Wong C.W., Guo X.E., Chacko J.V. et al. Elucidation of exosome migration across the blood-brain barrier model in vitro. Cell. Mol. Bioeng. 2016; 9(4): 509-29. https://dx.doi.org/10.1007/s12195-016-0458-3.
  46. Potolicchio I., Carven G.J., Xu X., Stipp C., Riese R.J., Stern L.J. et al. Proteomic analysis of microglia-derived exosomes: metabolic role of the aminopeptidase CD13 in neuropeptide catabolism. J. Immunol. 2005; 175(4): 2237-43. https://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.175.4.2237.
  47. Goetzl E.J., Mustapic M., Kapogiannis D., Eitan E., Lobach I.V., Goetzl L. et al. Cargo proteins of plasma astrocyte-derived exosomes in Alzheimer's disease. FASEB J. 2016; 30(11): 3853-9. https://dx.doi.org/10.1096/fj.201600756R.
  48. Reiter C.R., Bongarzone E.R. The role of vesicle trafficking and release in oligodendrocyte biology. Neurochem. Res. 2020; 45(3): 620-9. https://dx.doi.org/10.1007/s11064-019-02913-2.
  49. Krämer-Albers E.M., Bretz N., Tenzer S., Winterstein C., Möbius W., Berger H. et al. Oligodendrocytes secrete exosomes containing major myelin and stress-protective proteins: Trophic support for axons? Proteomics Clin. Appl. 2007; 1(11): 1446-61. https://dx.doi.org/10.1002/prca.200700522.
  50. Gall A.R., Amoah S., Kitase Y., Jantzie L.L. Placental mediated mechanisms of perinatal brain injury: evolving inflammation and exosomes. Exp. Neurol. 2022; 347: 113914. https://dx.doi.org/10.1016/j.expneurol.2021.113914.
  51. Monsivais L.A., Sheller-Miller S., Russell W., Saade G.R., Dixon C.L., Urrabaz-Garza R. et al. Fetal membrane extracellular vesicle profiling reveals distinct pathways induced by infection and inflammation in vitro. Am. J. Reprod. Immunol. 2020; 84(3): e13282. https://dx.doi.org/10.1111/aji.13282.
  52. Gupta A., Pulliam L. Exosomes as mediators of neuroinflammation. J. Neuroinflammation. 2014; 11: 68. https://dx.doi.org/10.1186/1742-2094-11-68.
  53. Tsilioni I., Theoharides T.C. Extracellular vesicles are increased in the serum of children with autism spectrum disorder, contain mitochondrial DNA, and stimulate human microglia to secrete IL-1β. J. Neuroinflammation. 2018; 15(1): 239. https://dx.doi.org/10.1186/s12974-018-1275-5.
  54. Prada I., Gabrielli M., Turola E., Iorio A., D'Arrigo G., Parolisi R. et al. Glia-to-neuron transfer of miRNAs via extracellular vesicles: a new mechanism underlying inflammation-induced synaptic alterations. Acta Neuropathol. 2018; 135(4): 529-50. https://dx.doi.org/10.1007/s00401-017-1803-x.
  55. Kitase Y., Chin E.M., Ramachandra S., Burkhardt C., Madurai N.K., Lenz C. et al. Sustained peripheral immune hyper-reactivity (SPIHR): an enduring biomarker of altered inflammatory responses in adult rats after perinatal brain injury. J. Neuroinflammation. 2021; 18(1): 242. https://dx.doi.org/10.1186/s12974-021-02291-z.
  56. Mustapić M., Eitan E., Werner J.K., Berkowitz S.T., Lazaropoulos M.P., Tran J. et al. Plasma extracellular vesicles enriched for neuronal origin: a potential window into brain pathologic processes. Front. Neurosci. 2017; 11: 278. https://dx.doi.org/10.3389/fnins.2017.00278.
  57. Athauda D., Gulyani S., Karnati H.K., Li Y., Tweedie D., Mustapic M. et al. Utility of neuronal-derived exo utility of neuronal-derived exosomes to examine molecular mechanisms that affect motor function in patients with parkinson disease: a secondary analysis of the Exenatide-PD trial. JAMA Neurol. 2019; 76(4): 420-9. https://dx.doi.org/10.1001/jamaneurol.2018.4304.
  58. Pulliam L., Sun B., Mustapic M., Chawla S., Kapogiannis D. Plasma neuronal exosomes serve as biomarkers of cognitive impairment in HIV infection and Alzheimer's disease. J. Neurovirol. 2019; 25(5): 702-9. https://dx.doi.org/10.1007/s13365-018-0695-4.
  59. Goetzl E.J., Boxer A., Schwartz J.B., Abner E.L., Petersen R.C., Miller B.L. et al. Low neural exosomal levels of cellular survival factors in Alzheimer's disease. Ann. Clin. Transl. Neurol. 2015; 2(7): 769-73. https://dx.doi.org/10.1002/acn3.211.
  60. Goetzl E.J., Kapogiannis D., Schwartz J.B., Lobach I.V., Goetzl L., Abner E.L. et al. Decreased synaptic proteins in neuronal exosomes of frontotemporal dementia and Alzheimer's disease. FASEB J. 2016; 30(12): 4141-8. https://dx.doi.org/10.1096/fj.201600816R.
  61. Goetzl L., Darbinian N., Merabova N. Noninvasive assessment of fetal central nervous system insult: Potential application to prenatal diagnosis. Prenat. Diagn. 2019; 39(8): 609-15. https://dx.doi.org/10.1002/pd.5474.
  62. Goetzl L., Thompson-Felix T., Darbinian N., Merabova N., Merali S., Merali C. et al. Novel biomarkers to assess in utero effects of maternal opioid use: First steps toward understanding short- and long-term neurodevelopmental sequelae. Genes Brain Behav. 2019; 18(6): e12583. https://dx.doi.org/10.1111/gbb.12583.
  63. Sheller-Miller S., Lei J., Saade G., Salomon C., Burd I., Menon R. Feto-maternal trafficking of exosomes in murine pregnancy models. Front. Pharmacol. 2016; 7: 432. https://dx.doi.org/10.3389/fphar.2016.00432.
  64. Cho K.H.T., Xu B., Blenkiron C., Fraser M. Emerging roles of miRNAs in brain development and perinatal brain injury. Front. Physiol. 2019; 10: 227. https://dx.doi.org/10.3389/fphys.2019.00227.

Поступила 06.09.2024

Принята в печать 03.07.2024

Об авторах / Для корреспонденции

Кан Наталья Енкыновна, профессор, д.м.н., Заслуженный деятель науки Российской Федерации, заместитель директора по научной работе, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина,
д. 4, kan-med@mail.ru, Researcher ID: B-2370-2015, SPIN-код: 5378-8437, Authors ID: 624900, Scopus Author ID: 57008835600, https://orcid.org/0000-0001-5087-5946
Леонова Анастасия Александровна, аспирант, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика
В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, nastena27-03@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-6707-3464
Гусар Владислава Анатольевна, к.м.н., с.н.с. лаборатории прикладной транскриптомики отдела системной биологии в репродукции, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина,
д. 4, v_gusar@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0003-3990-6224
Тютюнник Виктор Леонидович, профессор, д.м.н., в.н.с. центра научных и клинических исследований, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, tioutiounnik@mail.ru,
Researcher ID: B-2364-2015, SPIN-код: 1963-1359, Authors ID: 213217, Scopus Author ID: 56190621500, https://orcid.org/0000-0002-5830-5099

Также по теме