ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Воздействие никотина и смол, находящихся в табачном дыме, на процесс атерогенеза

Монгирдиене А., Виежелиене Д., Куршветене Л.

Институт исследования биомедицинских наук, Институт кардиологии, Кафедра биохимии Литовского Университета наук здоровья, Каунас, Ейвениу 4, LT50161
Курение является одним из главных факторов риска атеросклероза и тромбоза. Воздействие никотина и смол на развитие этих процессов исследовано наиболее подробно. Эти вещества табачного дыма изменяют функции тромбоцитов, эндотелия, гладкой мышцы кровеносных сосудов и макрофагов, влияют на активность ферментов антиоксидантной системы, повышая количество окисленных липидов и воздействуя на экспрессию генов. Нарушение функций клеток и изменение активности ферментов способствует формированию атеросклеротических бляшек. Цель этой статьи — обобщение представлений о механизмах, через которые никотин и смолы, находящиеся в табачном дыме, способствуют развитию атеросклероза.

Ключевые слова

атеросклероз
никотин
смолы
ферменты
гены

Эпидемиологические исследования убедительно показали, что курение является одним из главных факторов риска развития атеросклероза и тромбоза [1—3]. Несмотря на многочисленные исследования, точный механизм влияния табачного дыма на развитие атеросклероза остается не раскрытым.

Табачный дым содержит около 4000 различных химических веществ [4]. Наибольшую их часть составляет никотин (0,7—4,8%, в зависимости от марки сигарет), монооксид углерода CO (3—6%), диоксид углерода CO2 (10—15%), цианистый водород (0,1—0,2%), смолы — бензапирен, бензен (4,8—65,6 мг на сигарету) [5], радиоактивный полоний, свинец, висмут [1]. В процессе курения формируются свободные радикалы [4]. Какой вклад в развитие атеросклероза вносит каждое из этих веществ, до сих пор неясно. Установлено, что свободные радикалы и бензапирен являются наиболее вредными для дыхательных путей [6]. CO и CO2 присоединяются к гемоглобину и ухудшают обеспечение тканей достаточным количеством кислорода. Кроме того, CO повышает концентрацию некоторых белков в крови (фибриногена, a1-антитрипсина, гаптоглобина, церулоплазмина), что способствует воспалительным реакциям [7]. Из-за воздействия никотина в бо`льшем количестве формируются свободные радикалы, повреждающие митохондриальную ДНК [8, 9] и окисляющие липиды [10—12].

Никотин также действует на нервную систему. Повышая количество допамина в головном мозге, он увеличивает концентрацию адренокортикотропина, кортизола [13], норадреналина [14] и вазопрессина [15] в крови, приводя к сужению коронарных артерий и повышению артериального давления. В процессе атерогенеза важным является воздействие никотина и смол на клетки, находящиеся в контакте с кровью. Никотин активирует тромбоциты [16—20], изменяет количество разных веществ, синтезируемых в клетках эндотелия, в макрофагах, моноцитах [21, 22] и влияет на активность некоторых ферментов [23].

Перечисленные пути воздействия активируют два основных процесса: пролиферативно-воспалительную реакцию на повреждение сосудистой стенки и отложение в ней липидов. Воздействие никотина и смол на эти процессы исследовано лучше других. Цель настоящей статьи — на основе результатов последних исследований обобщить представления о влиянии никотина и смол на развитие атеросклероза.

Направления воздействий никотина и смол

Воздействие никотина и смол на развитие атеросклероза можно разделить на 3 основные группы (рис. 1). Надо отметить, что очень важной мишенью всех воздействий являются тромбоциты, эндотелиоциты, гладкие мышечные клетки (ГМК) кровеносных сосудов, макрофаги и моноциты. Эти структуры подвергаются воздействию никотина через никотиновые рецепторы ацетилхолина [16]. Механизмы влияния смол еще не установлены.

Рисунок 1

Образование свободных радикалов и их воздействие

Никотин и смолы побуждают образование свободных радикалов, влияя на активность ферментов или на экспрессию генов в тромбоцитах, эндотелиоцитах, ГМК кровеносных сосудов, макрофагах и моноцитах (рис. 2).

Рисунок 2.

Никотин и смолы через разные промежуточные соединения ингибируют эндотелиальную NO-синтазу [23, 24], глутатионпероксидазу [25], активируют ксантиноксидазу [26, 27], липоксигеназу [28], в моноцитах и эндотелиоцитах — NADPH-оксидазу [29]. Оксид азота NO в эндотелиоцитах синтезируется NO-синтазой, коферментом которой является тетрагидробиоптерин [23, 30, 31]. Установлено, что никотин, уменьшая количество тетрагидробиоптерина, побуждает NO-синтазу продуцировать свободные радикалы [30], которые повреждают ДНК [2, 9, 32], а клетки начинают синтезировать больше сосудосужающих и провоспалительных веществ. Кроме того, смолы активируют клетки иммунной системы (моноциты), превращая их в источники свободных радикалов, которые повреждают эндотелиоциты [21], активируют тромбоциты [33], стимулируют пролиферацию ГМК кровеносных сосудов [34], а также окисляют липопротеиды низкой плотности (ЛНП) и ускоряют пероксидацию липидов [1]. Макрофаги, находящиеся под эндотелием, фагоцитируют окисленные ЛНП и становятся пенистыми (ксантомными) клетками (см. рис. 2). Из-за ухудшения синтеза NO, нарушения активности ферментов-антиоксидантов в эндотелиоцитах нарушается равновесие между окисленными и восстановленными соединениями. В этих клетках увеличивается количество пероксинитрита и нитротирозина, которые образуются вследствие воздействия NO с анионом супероксида; повышается количество маркеров, указывающих на перекисное окисление липидов — 8-изо-простагландина (8-изо-PGF2a) и окисление ДНК — 8-гидрокси-2-деоксигуанозина (8-OНdG) [21, 33]. Снижение синтеза NO в эндотелиоцитах приводит к снижению отношения между восстановленными и окисленными формами глутатиона в тромбоцитах, что вызывает окислительный стресс в этих клетках [19]. Тромбоциты активируются, выделяют соединения, участвующие в пролиферации ГМК кровеносных сосудов (тканевый фактор), в воспалительных реакциях (цитокины), в адгезии и агрегации тромбоцитов (тромбоксан А2 —TxA2, фибриноген) а также в свертывании крови (факторы свертывания тромбоцитов) [35].

Важно отметить, что на поверхности тромбоцитов расположены рецепторы для липопротеинов высокой плотности. Эти рецепторы необходимы для поддержания нормальной функции тромбоцитов и препятствуют образованию тромбов [36]. Предполагается, что свободные радикалы могут повредить эти рецепторы и окислять полиненасыщенные жирные кислоты, содержащиеся в мембранах клеток, нарушая таким образом деятельность клеток [10, 36].

Свободные радикалы способствуют синтезу ядерного фактора каппа-бетта (NF-κβ), который активирует многие гены, кодирующие соединения воспалительных реакций, например ген IL-8 [37]. Влияние свободных радикалов на экспрессию генов, продукты которых важны в процессе атерогенеза, не зависит от причины их появления. Никотин также влияет на экспрессию генов, продукты которых важны для транспорта электронов в дыхательной цепи митохондрий. В результате этого воздействия повышается внутриклеточное количество свободных радикалов [38].

Обобщая изложенное, можно утверждать, что никотин и смолы участвуют в образовании свободных радикалов, подавляя NO-синтазу и действуя на активность ферментов антиоксидантной системы (подавляя глутатионпероксидазу, активируя NADPH-оксидазу, ксантиноксидазу и липооксигеназу). Кроме того, смолы активируют моноциты, а никотин влияет на экспрессию генов, важных для транспорта электронов в митохондриях.

Bозбуждение воспалительных реакций

Никотин и смолы способствуют развитию воспалительных реакций через Т-лимфоциты, эндотелиоциты, макрофаги, ГМК кровеносных сосудов [22, 39, 40] (рис. 3).

Рисунок 3.

В результате воздействия никотина, эндотелиоциты, макрофаги и клетки альвеолярного эпителия выделяют больше интерлейкина-6 (IL-6), колониестимулирующего фактора макрофагов (КСФ-M) [41—44], NK-κβ и α-фактора некроза опухоли (TNF-a) [45—47]. IL-6 является маркером воспалительного процесса [41, 44]. Он активирует синтез белков острой фазы в печени [48], а в эндотелиоцитах — синтез молекул адгезии (например, молекулы адгезии кровеносных сосудов — VCAM-1) [49], которые принимают участие в миграции моноцитов и лимфоцитов в интиму [48, 50]. КСФ-М активирует моноциты, стимулирует адгезию тромбоцитов к моноцитам, поэтому тромбоциты начинают выделять TxA2

[33]. КСФ-М оказывает локальное и системное действие. Локально КСФ-М способствует дополнительной секреции TxA2 [33] и дифференцированию моноцитов в макрофаги [51]. Систематическое воздействие КСФ-М заключается в повышении способности макрофагов фагоцитировать окисленные ЛНП [42]. Все эти факторы играют важную роль в процессе атерогенеза.

Из-за нарушения окислительно-восстановительных процессов в клетках иммунной системы инициируются воспалительные процессы в сосудистой стенке. В ответ на повышенное количество свободных радикалов в крови увеличивается количество окисленных ЛНП и маркеров воспаления [11]. Моноциты и лимфоциты начинают синтезировать цитокины [48], а эндотелиоциты — молекулы адгезии [48, 46]. Эти вещества участвуют в регуляции активности эндотелиоцитов, в адгезии моноцитов и их миграции под эндотелием [19, 52]. Моноциты и фибробласты, подвергшиеся воздействию цитокинов и фактора роста, выделяют матричные металлопротеазы [23, 48]. Эти ферменты гидролизируют белки межклеточного вещества, что способствует миграции ГМК сосудов и макрофагов [10, 53]. Выяснено, что матричные металлопротеазы освобождаются и под прямым воздействием никотина [54, 55]. Кроме того, в крови курящих людей уменьшается концентрация витамина С, с чем связано снижение синтеза коллагена-1 [55].

Смолы усиливают экспрессию митохондриальной ДНК, приводя к увеличению роста культуры клеток и размножения под воздействием митогенов [8]. Важно отметить, что соединения, находящиеся в табачном дыме, активируют пролиферацию ГМК сосудов и через фермент Rho-киназу, т.е., через ферментную систему, которая регулирует множество сигнальных путей, контролирующих рост, воспроизведение и другие функции клеток [56]. Rho-киназу активируют тромбоцитарный фактор роста, выделяемый активированными тромбоцитами [57], и 8-iso-PGF2a [33]. Из-за воздействия никотина на тромбоциты эти клетки начинают выделять больше фактора роста. Он способствует миграции ГМК сосудов в интиму [58].

На поверхности эндотелиоцитов и лейкоцитов никотин повышает количество межклеточных молекул адгезии (ICAM) и VCAM-1 [52, 59] , что также способствует миграции моноцитов и лимфоцитов под эндотелием [48]. Экспрессия VCAM-1 увеличивается из-за повреждения эндотелия, который меньше синтезирует и выделяет NO [30, 45]. В зоне промотора гена VCAM-1 находятся несколько областей для присоединения факторов транскрипции, в том числе NF-κβ [50]. Известно, что NO ингибирует NF-κβ, поэтому экспрессия гена VCAM-1 подавляется [50, 59].

Никотин повышает экспрессию гена, продукт которого — фермент циклооксигеназа-2 (СОХ-2) — в разных клетках (эндотелиоцитах, моноцитах, макрофагах, ГМК кровеносных сосудов и др.) участвует в синтезе простагландинов [45]. В развитии воспалительных реакций важную роль играет влияние TxA2 и простациклина E2 (PGE2). PGE2 активирует экспрессию матриксных металлопротеиназ и ICAM [60]. Поэтому лейкоциты и моноциты прикрепляются к эндотелиоцитам, что способствует атерогенезу [52]. В зоне промотора гена COX-2 находится несколько областей для присоединения разных факторов, в том числе NF-κβ и IL-6 [45]. Никотин активирует экспрессию гена СОХ-2 через активацию NF-κβ [45]. Известно, что NF-κβ активирует синтез веществ, стимулирующих воспаление, таких как IL-6, α -ТNF и интерферон [47]. Кроме того, фермент СОХ-2 активируется NADPH-оксидазой, которую, в свою очередь, активируют свободные радикалы [29]. TxA2 активирует тромбоциты, стимулирует синтез тканевого фактора в фибробластах, и активирует ГМК кровеносных сосудов, вследствие чего дестабилизируются атеросклеротические бляшки [61].

Функции моноцитов и макрофагов регулируют простациклины [35]. В организме курильщиков большее количество PGH2 требуется для увеличенного синтеза TxA2 в агрегатах моноцитов с тромбоцитами [35], а это способствует синтезу фактора роста в фибробластах [61]. Таким образом, в артериальной стенке повышается число ГМК и количество синтезированного ими межклеточного вещества. В крови курильщиков также повышается уровень аденозиндифосфата (АДФ), выделяемого активированными тромбоцитами. Важно отметить, что повышенная концентрация АДФ способствует агрегации тромбоцитов [62].

Никотин, действуя через никотиновые рецепторы ацетилхолина, увеличивает число рецепторов P2Y12 на поверхности тромбоцитов, эндотелиоцитов и ГМК кровеносных сосудов [16]. Показано, что никотин связывается с никотиновыми рецепторами ацетилхолина на поверхности мегакариоцитов, из которых в костном мозге формируются тромбоциты, имеющие больше рецепторов P2Y12. Этот феномен наблюдается только в результате регулярного курения, так как только в таких случаях повреждаются мегакариоциты [18]. Увеличивая количество рецепторов P2Y12 на поверхности эндотелиоцитов и ГМК кровеносных сосудов, никотин активирует эти клетки [16]. Клетки ГМК кровеносных сосудов начинают размножаться (см. рис. 3); они синтезируют и выделяют больше коллагена, приводя к утолщению артериальной стенки. Активированные эндотелиоциты синтезируют и выделяют больше тканевого фактора эндотелина-1, активирующего тромбоциты [20], а макрофаги — IL-1, α -ТNF [11]. Эти вещества активируют тромбоциты, стимулируют местное воспаление, и следовательно, процессы атерогенеза. Недавно установлено, что в макрофагах и миофибробластах число сегментов рецептора, участвующих в присоединении никотина, в атеросклеротических зонах увеличивается [22].

Обобщая воздействие никотина и смол на клетки, участвующие в воспалительных реакциях, можно отметить, что они выделяют различные соединения (IL-6, TNF-a, NF-κβ, протеазы) и экспрессируют молекулы адгезии (ICAM, VCAM-1), которые и инициируют воспалительные реакции. Пролиферация ГМК сосудов в организме курильщиков осуществляется и через активацию Rho-киназы. Кроме того, никотин усиливает экспрессию генов VCAM-1 и СОХ-2, увеличивает число рецепторов P2Y12 на поверхности тромбоцитов, эндотелиоцитов и ГМК кровеносных сосудов, что способствует воспалительным реакциям в развитии атеросклероза.

Другие воздействия

Соединения, находящиеся в табачном дыме, также влияют на экспрессию других генов, продукты которых важны в процессе атерогенеза. Например, в мегакариоцитах курящих людей активируются ферменты, деметилирующие промотор гена моноаминооксидазы (МАО) [63], т.е., курение активирует экспрессию этого гена. МАО инактивирует биологически активный амин серотонин, участвующий в воспалительных реакциях организма, превращая его в 5-гидроксииндолуксусную кислоту [63]. В тромбоцитах, произошедших из мегакариоцитов курильщиков, серотонин инактивируется быстрее. Такое изменение метаболизма серотонина в тромбоцитах можно объяснить как защитную реакцию организма против воспаления, инициированного соединениями, находящимися в табачном дыме [64].

Никотин ухудшает и комуникационные возможности между эндотелиоцитами, так как уменьшает экспрессию конексинов Сх 37 и Сх 43 на их поверхности [65].

Заключение

Никотин и смолы стимулируют атерогенез, усиливая формирование свободных радикалов и способствуя развитию воспалительных реакций. Никотин, действуя через никотиновые рецепторы ацетилхолина, активирует тромбоциты, эндотелиоциты и гладкие мышечные клетки кровеносных сосудов, вследствие чего выделяется большее количество соединений, способствующих воспалению, свертыванию крови и пролиферации гладких мышечных клеток сосудов (тромбоциты выделяют больше тромбоксана A2, фактора роста, эндотелиоциты — простациклинов, эндотелина-1, активирующего фактора тромбоцитов, гладкие мышечные клетки — коллагена). Никотин также активирует макрофаги, альвеолярные эпителиальные клетки, которые выделяют больше соединений, способствующих воспалению и фагоцитозу (интерлейкин-6 и колониестимулирующий фактор макрофагов). Смолы ингибируют NO-синтазу, активируют NADPH-оксидазу и ксантиноксидазу, поэтому усиливается перекисное окисление липидов и активируются матриксные металлопротеиназы, из-за чего гладкие мышечные клетки легче мигрируют. На основе этих исследований составлены схемы (см. рис. 2, 3), объединяющие воздействия никотина и смол на атерогенез. Новейшие научные данные подтвердили, что соединения, находящиеся в табачном дыме, способствуют атерогенезу и через воздействие на экспрессию генов (Rho-киназы, МАО, VCAM-1, ICAM и СОХ-2).

Список литературы

1. von Holf K., Lebrun S., Stinn W. et al. Progression of atherosclerosis in the ApoE–/– model: 12-month exposure to cigarette mainstream smoke combined with high-cholesterol/fat diet. Atherosclerosis 2009; 205:135—143.

2. Gairola C.G., Howatt D.A., Daugherty A. Dietary coenzyme Q10 does not protect against cigarette smoke-augmented atherosclerosis in apoEdeficient mice. Free Rad Biol Med 2010; 48:1535—1539.

3. Liang L.-R., Wong N.D., Shi P. et al. Cross-sectional and longitudinal association of cigarette smoking with carotid atherosclerosis in Chinese adults. Prev Med 2009; 49:62—67.

4. Jenkins R.A., Guerin M.R., Tomkins B.A. The chemistry of environmental tobacco smoke: composition and measurement. Second Edition CRC Press 2000; 480 p.

5. Lauterbach J.H., Bao M., Joza P.J. et al. Free-base nicotine in tobacco product. PartI. Determination of free-base nicotine in the particulate phase of mainstream cigarette smoke and the relevance of these findings to product design parameters. Reg Tox Pharm 2010; 58:45—63.

6. Li Z., Wu Y., Zhao Y. et al. Analysis of coal tar pitch and smoke extract components and their cytotoxicity on human bronchial epithelial cells. J Hazardous Materials 2011; doi: 10.1016/J.jhazmat.2010.11.123.

7. Hedblad B., Orgen M., EngstromG. et al. Heterogeneity of cardiovascular risk among smokers is related to degree of carbon monoxide exposure. Atheroscler 2005; 179:177—183.

8. Yang Z., Harrison C.M., Chuang G C. et al. The role of tobacco smoke induced mitochondrial damage in vascular disfunction and atherosclerosis. Mutation Res 2007; 621:61—74.

9. Das S., Neogy S., Gautam N. et al. In vitro nicotine induced superoxide mediated DNA fragmentation in lymphocytes: protective role of Andrographis paniculata Nees. Toxicology in Vitro 2009; 23:90—98.

10. Fearon I.M., Faux S.P. Oxidative stress and cardiovascular disease: novel tools free radicals insight. J Mol Cel Cardiol 2009; 47:372—381.

11. Markov Kh.M. Nitrous oxide and atherosclerosis. Nitrous oxide, dysfunction of vascular endothelium, and pathogenesis of atherosclerosis. Kardiologiia; 2009; (11):64—74. (Марков Х.М. Оксид азота и атеросклероз. Оксид азота, дисфункция сосудистого эндотелия и патогенез атеросклероза. Кардиология 2009; 11:64—74).

12. Chen J., Higby R., Tian D. et al. Toxicological analysis of low-nicotine-free cigarettes. Toxicology 2008; 249:194—203.

13. Xue Y., Morris M., Ni L. et al. Venous plasma nicotine correlates of hormonal effects of tobacco smoking. Pharmacol, Biochem Behavior 2010; 95:209—215.

14. Czernin J., Waldher C. Cigarette smoking and coronary blood flow. Prognosis Cardiovasc Dis 2003; 45:395—404.

15. Yu G., Chen H., Zhao W. et al. Nicotine self-administration differentially regulates hypothalamic corticotropin-relasing factor and arginine vasopresin mRNRs and facilitates stress-induced neuronal activation. J Neuroscience 2008; 28:2773—282.

16. Shanker G., Kontos L., Eckman M. et al. Nicotine upregulates the expression of P2Y12 on vascular cells and megakarioblasts. J Thrombos Thrombolys 2006; 22:213—220.

17. Balakumar P., Kaur T., Singh M. Potential target sites to modulate vascular endothelial dysfunction: current perspectives and future directions. Toxicology 2008; 245:49—64.

20. Desai R., Mega L., Jiang S. et al. Interaction between cigarette smoking and clinical benefit of clopidogrel. J Am Coll Card 2009; 53:1273—1279.

21. Morita H., Ikeda H., Haramaki M. et al. Only twoo-week smoking cessation improves platelet aggregability and intraplatelet redox imbalance of long-term smokers. J Am Coll Cardiol 2005; 45:589—595.

22. Yost Ch., Weyrich A., Zimmerman G. The platelet activating factor signalling cascade in systemic inflammatory responses. Biochimie 2010; doi:10.1016/j.biochi.2010.02.011.

23. Antoniades C., Tousoulis D., Stefanades Ch. Smoking in Asians: it doesn’t stop at vascular endothelium. In J Cardiol 2008; 128:151—153.

24. Zhang G., Kernan K.A., Thomas A. A novel signalling pathway: fibroblast nicotinic receptor-1 binds urokinase and promotes renal fibrosis. J Biol Chem 2009; 284:29 050—29604.

25. Balakumar P., Kaur J. Is nicotine a kay player or spectator in the induction and progression of cardiovascular disorders? Pharm Res 2009; 60:361—368.

26. Dutschak A.P. Nitrogen oxide as a risk marker of formation of artery hypertension in infants. Clinical pediartics 2008; 4:45—51. (Дудчак А.П. Оксид азота как маркер риска формирования артериальной гипертензии у детей. Клин пед 2008; 4:45—51).

27. Lewis P., Stefanovic N., Pete J. et al. Lack of the antioxidant enzyme glutathione peroxidase-1 accelerates atherosclerosis in diabetic apolipoprotein E-deficient mice. Circulation 2007; 115:2178—2187.

28. Berry C.E., Hare J.M. Xanthine oxidoreductase and cardiovascular disease: molecular mechanisms and pathophysiological implications. J Physiol 2004; 555:589—606.

29. Schroder K., Vecchione C., Jung O. et al. Xanthine oxidase inhibitor tungsten prevents the development of atherosclerosis in ApoE knockoutmice fed aWestern-type diet. Free Radicals Biol Med 2006; 41:1353—1360.

30. Leopold J.A , Loscalzo J. Oxidative enzymopathies and vascular disease. Arteriosclerosis and Thrombosis Vasc Biol 2005;25:1332—1340.

31. Barbieri S., Zacchi E., Weksler B. et al. Cigarette smoke up-regulates cyclooxygenase-2 expression in endothelial cells via NADPH oxidase activation. J Clin Lipid 2008; 2:s19.

32. Cooper R.G., Magwere T. Nitric oxide-mediated pathogenesis during nicotine and alcohol consumption. Ind J Physiol Pharm 2008; 52:11—18.

33. Toda N., Toda H. Nitric oxide-mediated blood flow regulation as affected by smoking and nicotine. Eur J Pharm 2010; 649:1—13.

34. Knight-Lozano C.A., Young C.G., Burow D.L. et al. Cigarette smoke exposure and hypercholesterolemiaincrease mitochondrial damage in cardiovascular tissues. Circulation 2002; 105:849—854.

35. Khasawneh F., Huang J., Hir F. et al. Characterization of isoprostane signaling: evidense for a unique coordination profile of 8-izo-PGF2a with the thromboksane A2 rеcеptor and activation of a separate cAMP-dependent inhibitory pathway in human platelets. Bioch Pharm 2008;75:2301—2315.

36. Thomas G., Chook P., Yip T. C. Smoking withouth exception adversely affects vascular structure and function in apparently healthy Chinese: implications in global atherosclerosis prevention. Int J Cardiol 2008;128:172—177.

37. McAdam B.F., Byrne D., Morrow J.D. et al. Contribution of cyclooxygenase-2 to elevated biosyntesis of thromboxane A2 and prostacyclin in cigarette smokers. Circulation 2005; 112:1024—1029.

38. Korporaal S., Meurs I., Vergeer M. et al. The HDL receptor SR-BI modulates platelet function and susceptibility to thrombosis in vivo. Atherosclerosis 2009; 10:e436.

39. Sarir H., Mortaz E., Janse W.T. et al. IL-8 production by macrophages is synergistically enhanced when cigarette smoke is combined with TNF-a. Biochem Pharm 2010; 79:698—705.

40. Wang J., Kim J., Donovan D. et al. Significant modulation of mitochondrial electron transport system by nicotine in various rat brain regions. Mitochondrion 2009; 9:186—195.

41. Blasi C. The autoimmune origin of atherosclerosis. Atherosclers 2008;201:17—32.

42. Cooke J.P., Ghebremariam Y.T. Endothelial nicotine acetylcholine receptors and angiogenesis. Trends Cardiovasc Med 2008; 18:247—253.

43. Lee Y.W., Lee W.H., Kim P.H. Oxidative mechanisms of IL-4-induced expression in vascular endothelium. Cytokine 2010; 49:73—79.

44. Ikonomidis I., Lekakis J., Vamyakou G. et al. Cigarette smoking is associated with increased circulating proinflammatory and procoagulant markers in patients with chronic coronary artery disease: effects of aspirin treatment. Am Heart J 2005; 149:832—839.

45. Brocheriou I., Maouche S., Durand H. et al. Antagonistic regulation of macrophage phenotype by M-CSF and GM-CSF: implication in atherosclerosis Atheroscler 2011; 214:316—324.

46. Lin Ch.-Ch., Lee I.T., Yang Y.-L. et al. Induction of COX-2/PGE2/IL-6 is crucial for cigarette smoke extract-induced airway inflammation: role of TLR4-dependent NADPH oxidase activation. Free Radical Biol Med 2010; 48:240—254.

47. Zhou Y., Wany Z., Tang M. et al. Nicotine induces cyclooxygenase-2 and prostaglandin E2 expression in human umbilicale vein endothelial cells. Int immunopharm 2010; 10:461—466.

48. Mahapatra S.K., Bhattacharjee S., Chakraborty S.P. et al. Alteration of immune functions and Th1/Th2 cytokine balance in nicotineinduced murine macrophages: Immunomodulatory role of eugenol and N-acetylcysteine. Int Immunopharm 2011, doi:10.1016/j.intimp.2010.12.020

49. Hakki A., Hallquist N., Friedman H. et al. Differential impact of nicotine on cellular proliferation and cytokine production by LPS-stimulated murine splenocytes. Int Immunopharm 2000; 22:403—410.

50. Correale M., Brunetti N. D., Gennaro L. et al. Acute phase proteins in atherosclerosis (acute coronary syndrome). Cardiovasc and hematology agents in Med Chem 2008; 6:272—277.

51. Vardam T.D., Zhou L., Appenheimer M.M. et al. Regulation of a lymphocyte-endothelial-IL-6 trans-signaling axis by fever-range thermal stress: hot spot of immune surveillance. Cytokine 2007; 39:84—96.

52. Oesterling E., Toborek M., Hennig B. Benzo[a]pyrene induces intercellular adhesion molecule-1 through a caveolae and aryl hydrocarbon receptor mediated pathway. Tox Appl Pharm 2008; 232: 309—316.

53. Popova A., Kzyshkowska J., Nurgazieva D. et al. Pro-and anti-inflammatory control of M-SCF-mediated macrophage differentiation. Immunobiology 2011; 216:164—172.

54. Ueno H., Pradhan S., Schlessel D. et al. Nicotine enhances human vascular endothelial cell expression of ICAM-1 and VCAM-1 via protein kinase C, p38 mitogen-activated protein kinase, NF-kappaB, and AP-1. Cardiovasc Tox 2006; 6:39—50.

55. Stanciute D., Didziapetriene J., Kadziauskas J. Expression of matrix metalloproteinases in patients with malignant tumors. Medicina (Kaunas) 2004; 40(12):1143-1150. (Stančiūtė D., Didžiapetrienė J., Kadziauskas J.Matrikso metaloproteinazės sergant piktybiniais navikais. Medicina 2004;40:1143—1150). http://medicina.kmu.lt

56. Ferreira A.L., Palei A.C., Cau S.B. et al. Evidence for the involvement of matrix metalloproteinases in the cardiovascular effects produced by nicotine. Eur J Pharm 2010; 627:216—222.

57. Sorensen L.T., Toft B. G., Rygaard J. et al. Effect of smoking, smoking cessation and nicotine patch on wound dimension, vitamin C and systemic markers of collagen metabolism. Surgery 2010; 148:982—990.

58. Aznar S., Lacal J.C. Rho signals to cell growth and apoptosis. Cancer Left 2001; 165:1—10.

59. Akiyama N., Naruse K., Kobayashi Y. et al. High glucose-induced upregulation of Rho/Rho-kinase via platelet-derived growth factor receptor-b increases migration of aortic smooth muscle cells. J Molecul Cel Cardiol 2008; 45:326—332.

60. Kanada Y., Watanable Y. Nicotine-induced vascular endothelial growth factor release via the EGFR-ERK patways in rat vascular smooth muscle cells. Life Scienci 2007; 80:1409—1414.

61. Albaugh G., Bellavance E., Strande L. et al. Nicotine induces mononuclear leukocyte adhesion and expression of adhesion molecules VCAM and ICAM in endothelial cells in vitro. Annual Vasc Surg 2004;18:302—307.

62. Cipollone F., Prontera C., Pini B. et al. Overexpression of functionally coupled cyclooxygenase-2and prostaglandin E synthase in symptomatic atherosclerotic plaques as a basis of prostaglandin E(2)-dependent plaque instability. Circulation 2001; 104:921—927.

63. Schildnecht S., van der Leo B., Weber K. et al. Endogenous peroxynitrite modulates PGHS-1-dependent thromboxane A2 formation and aggregation in human platelets. Free Rad Biol Med 2008; 45:512—520.

64. Addad F., Chakroune T., Asma A. et al. Clopidogrel but not aspirin prevents acute smoking-induced platelet aggregation in patients with stabile artery disease. Thromb Res 2009; 123:640—643.

65. Rendu S., Del Pino M., Chironi G. et al. Smoking induces long lasting modifications of platelet serotonin catabolism through demethylation of the monoamine oxidase gene promoter J Clin Lipid 2008; 2:s18—s19.

66. Ball S., Shuttleworth C., Kielty C. Platelet derived grouth factor receptor-a is a key determinant of smooth muscule a-actin nfilaments in bone marrow-derived mesenchymal stem cells. Int J Biochem Cell Biol 2007;39:379—391.

67. Haussig S., Schubert A., Mohr F. et al. Sub-chronic nicotine exposure induces intercellular communication failure and differential downregulation of connexins in cultured human endothelial cells. Atheroscler 2008; 196:210—218.

Об авторах / Для корреспонденции

Литовский Университет наук здоровья
Институт кардиологии
Лаборатория молекулярной кардиологии
Аушра Монгирдиене - н.с. лаборатории.
Кафедра биохимии
Дале Виежелиене - д.м.н., проф. кафедры.
Кафедра биохимии
Лолита Куршветене - к.м.н., доцент кафедры.
E-mail: ausra.mongirdiene@mail.com

Также по теме