Роль инфекции мочевых путей в развитии рецидивного нефролитиаза


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/urology.2017.5.150-154

К.Р. Хамидуллин, А.М. Пушкарев, А.И. Тарасенко, В.Н. Павлов

ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России, Уфа; ГБУЗ «Республиканская клиническая больница им. Г. Г. Куватова», Уфа, Россия; НИИ уронефрологии и репродуктивного здоровья человека ФГАОУ ВО «Первый МГМУ им. И. М. Сеченова Минздрава РФ (Сеченовский Университет), Москва, Россия
Представлен обзор литературы, посвященной исследованиям по изучению роли микробной флоры в развития рецидивов мочекаменной болезни. Освещены патогенетические аспекты повторного камнеобразования, связанные с участием бактериальной флоры. В ряде исследований отмечено, что стандартный посев мочи не служит показателем истинной инфицированности мочевых путей.
Ключевые слова: мочекаменная болезнь, уролитиаз, нефролитиаз, уропатогены, мочевая инфекция, биопленки, масс-спектрометрия

Мочекаменная болезнь (МКБ) – одно из наиболее распространенных урологических заболеваний. По данным статистики, на долю МКБ приходится 30–40% урологической патологии, при этом нефролитиаз составляет до 50% наблюдений [1–3]. Заболеваемость нефролитиазом варьируется от 1 до 13%; в Европе нефролитиазом страдают в среднем 5–9% населения, в Азии – 1–5, в Северной Америке – 7–13, в Саудовской Аравии – до 20% [4–9]. В 2014 г. в России зарегистрированы 846 570 человек с МКБ, тогда как в 2002 г. таких пациентов было 629 453, т.е. прирост за 12 лет составил 34,5%. В 2014 г. показатель заболеваемости МКБ на 100 тыс. населения составил 578,8; в 2002 г. – 440,5 (+31,4%), число пациентов с впервые в жизни установленным диагнозом МКБ на 100 тыс. населения – 150,3 и 123,3 соответственно [10].

Для МКБ характерны частые рецидивы, частота которых в течение 10 лет варьируется в пределах 35–50% [11]. Прогрессирующее и рецидивирующее течение – характерная особенность нефролитиаза любого типа. Частота рецидивов заболевания в течение 5 лет зависит от клинической формы заболевания и методов удаления камней, составляя 15–50%, при этом 90–95% рецидивов фиксируются на первом году наблюдения [12]. Как отмечает S. Keoghane (2010), степень риска повторного камнеобразования определяется выраженностью пролитогенных перманентных или интермиттирующих обменных нарушений и местных патологических изменений уретеро-ренального комплекса, что находит свое отражение в качественном составе конкрементов и в тяжести заболевания [13]. В свою очередь В. В. Борисов, Н. К. Дзеранов (2011) указывают на важную роль исхода предшествовавшего лечения, выразившегося в качестве санации верхних мочевых путей (наличия остаточных фрагментов и конкрементов), наличия уродинамических нарушений и хронической полирезистентной инфекции. Частота рецидивов после применения различных активных методов удаления и дезинтеграции конкрементов может достигать 18–56% [14]. Так, по данным [15–17], после дистанционной литотрипсии вероятность рецидива камнеобразования в течение 4 лет колеблется от 20 до 41,8%. В то же время традиционное оперативное вмешательство в 19–26% случаев служит дополнительным фактором риска рецидива камнеобразования [14]. Таким образом, несмотря на успешное внедрение за последние три десятилетия лечебных малоинвазивных технологий, вопросы профилактики и лечения МКБ и патогенеза камнеобразования остаются открытыми.

Согласно [18], среди инфекций мочевыводящих путей, связанных с мочевыми камнями, чаще выделяются Proteus spp. и Pseudomonas spp., из продуцирующих уреазу – Providencia, Morganella spp. и Corynebacterium urealiticum. Также отмечено, что Klebsiella, Pseudomonas, Serratia spp. и стафилококки могут вырабатывать уреазу. Escherichia coli и энтерококки играют менее важную роль. У пациентов с коралловидными камнями в 88% наблюдений имеет место инфекция мочевыводящих путей, из них 82% возбудителей являются уреазопродуцирующими микроорганизмами [18].

По данным И. С. Колпакова [19], мочевая инфекция выявляется при уролитиазе с частотой до 80%. В работах [19–21] отмечено, что во вторичном фосфатном камнеобразовании участвует уреазообразующая микрофлора: группа Рrоtеus, Рsеudomonas аeruginоsа, Еntеrоbасtеr. Расщепляя мочевину в моче, они повышают рН мочи, что необходимо для минерализации камня. Другие микроорганизмы – Stарhуloсоссus, Strерtососсus, Еntеrососсus, Еscherichia, Кlеbsiеllа – не выделяют уреазу и не влияют на химический состав мочевых камней, но могут потенцировать камнеобразование за счет самого воспалительного процесса, увеличения содержания мукопротеидов, уростаза, нарушения не только лимфооттока из почек, но и транспорта камнеобразуюших веществ в канальцевой системе почек [19–21].

Показано, что входящие в состав клеточной стенки бактерий полисахариды связывают ионы Ca2+ и Mg2+, ускоряя таким образом процессы кристаллизации [22, 23].

При исследовании методом секторных посевов средней порции утренней мочи пациентов с МКБ выявлено преобладание в моче стафилококковой флоры – 49,41%. Среди стафилококков наиболее часто выделяли Staphylococcus epidermidis (37,65%), S. aureus (5,88%) и S. saprophyticus (5,88%), также встречались E. сoli (22,35%), Proteus mirabilis (3,53%), Enterococcus faecalis (3,55%), а каждая бактерия Citrobacter freundii, Enterobacter cloacae, Streptococcus pyogenes, Р. aeruginosa – в 1,18% наблюдений. Ассоциации микроорганизмов встречались довольно редко. От 16,4% больных при посевах мочи роста не получено [24].

В работе [19] проведено раздельное бактериологическое исследование удаленных камней, пузырной мочи, а также мочи, взятой из почечной лоханки во время операции. Показано, что степень инфицирования той и другой мочи, а также удаленных мочевых камней не одинакова, в основном зависит от типа камнеобразования, т.е. от химического состава камней. Наиболее инфицированными, в том числе и по сравнению с мочой, оказались коралловидные фосфатные и смешанные фосфатсодержащие камни почек (9% наблюдений). Моча из почечной лоханки и мочевого пузыря у этих больных инфицирована в 82–84% наблюдений соответственно. Менее инфицированными были моча и мочевые камни – оксалаты, ураты и смешанные уратно-оксалатные камни (37% наблюдений). В инфицированных посевах мочи и мочевых камней преобладали культуры Е. соli, Кlеbsiеllа, Stарhуloсоссus, Еntеrососсus. Сделано заключение, что этиологическим фактором фосфатного (инфекционного) камнеобразования является уреазопродуцирующая микрофлора, а одновременно выявленная кокковая и колибациллярная флора не влияет на химический состав мочевых камней: она только создает дополнительные патогенетические условия для камнеобразования [19].

Определяя частоту МКБ у пациентов с инфекциями мочевыводящих путей, H. Jan и соавт. [25] получили следующие результаты: инфекция была выявлена в 79% наблюдений, чаще всего высевались E. сoli (30%), Proteus (19%), Klebsiella (11%), Pseudomonas (7%), Staphylococcus aureus (3%). Мочекаменная болезнь у пациентов с инфекциями мочевыводящих путей выявлена в 18,98% наблюдений. Авторы пришли к выводу, согласно которому мочевая инфекция играет важную роль в образовании почечных камней [25]. По данным [26], в 41,3% наблюдений микроорганизмы обнаруживаются в камне при стерильной моче. В связи с этим нередко после операций по удалению камней, проведенных при стерильной моче и в стерильных условиях, развиваются инфекционно-воспалительные осложнения. Ретроспективный анализ, проведенный Н. К. Дзерановым и соавт. [27], показал, что в 87,5% наблюдений острый пиелонефрит развивается у пациентов, имевших недиагностированную бактериурию.

М. И. Коган и соавт. [28] 70 пациентам до перкутанной нефролитотомии (ПНЛ) по поводу коралловидного камня и через год после нее проводили бактериологическое исследование средней порции утренней мочи. При этом использовался расширенный набор питательных сред для выделения аэробных и анаэробных бактерий. После ПНЛ для определения минерального состава конкрементов выполнили их рентгенофазовый анализ. Перед ПНЛ положительные результаты бактериологического исследования мочи получены в 91,4% наблюдений. В большинстве из них (90,6%) регистрировали бактериальные композиции, в структуре которых доминировали аэробно-анаэробные ассоциации (74,1%). Неклостридиальные анаэробы (НА) в моноварианте не были обнаружены. Не выявлено статистически значимой зависимости между минеральным составом кораллавидного камня в виде урицита, вевеллита, ведделлита, витлокита, цистина и наличием в моче аэробно-анаэробных ассоциаций или аэробных бактерий. Однако апатитные конкременты статистически значимо чаще регистрировали у пациентов с аэробной инфекцией, а струвитный состав конкрементов имел место только у пациентов с аэробно-анаэробной ассоциацией. При рецидиве МКБ (5,7%) отмечено статистически значимое преобладание уреазопродуцирующих микроорганизмов и НА над другими бактериями [28].

В работе [29] выявлено несоответствие результатов бактериологического исследования мочи и камней: в камнях микроорганизмы выявлялись чаще, чем в моче, – 59,4 против 33,3%. Виды микроорганизмов в моче и камне не различались и были представлены уропатогенами: Enterococcus faecalis, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Streptococcus haemolyticus, Proteus mirabilis и E.coli. Высокий микробный титр в моче (>103 КОЕ/мл), особенно уреазопродуцирующих микроорганизмов, указывает на фосфатный и струвитный составы камня почки. При цистиновых, уратных и оксалатных камнях моча чаще мало инфицирована или стерильная. Уропатогенные штаммы, выделенные из почечных камней, способны к уреазопродукции и биопленкообразованию, что может служить центром кристаллизации камня и резервуаром хронической инфекции в организме. Остатки биопленок на слизистых лоханки почки и бактериурия служат основным фактором риска рецидива камней в послеоперационном периоде [29].

По данным J. Сosterton [30], развитие инфекции в 65% наблюдений обусловлено образованием биопленок уропатогенов. Ряд авторов [31] считают, что биопленка играет определенную роль в развитии почечных камней, поскольку она совмещает в едином структурном образовании и экзополисахаридный матрикс, и бактерии; кроме того, биопленка служит резервуаром персистирующей инфекции и именно с ней связывают развитие осложнений (септицемия и уросепсис) при нефролитиазе.

Т. С. Перепанова [32] отмечает, что при дроблении уролитов (дистанционном, контактном) необходимо учитывать возможность выхода микроорганизмов и их токсинов из камней и разрушенных биопленок, что в условиях повышенного внутрилоханочного давления из-за постоянной ирригации жидкости, особенно при длительной операции, увеличивает риск развития бактериемии, токсинемии, синдрома системной воспалительной реакции и септических осложнений. Остатки конкрементов и биопленок служат основой для быстрого рецидива камнеобразования, поэтому важно полностью удалить все фрагменты инфицированных камней в ходе операции [32]. Таким образом, часто камни сами служат источником инфекции [33].

В работе [34] около 51% мочевых камней, полученных в ходе оперативного вмешательства, оказались инфицированными. Монокультура была выделена у 39, мультикультура – у 64 пациентов. Наиболее часто выделялись Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus haemolyticus, Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis, E. coli, реже – Streptococcus spp., Staphylococcus aureus, Acinetobacter baumanii, Candida albicans и Morganella morganii. Проведенные тестирования показали, что Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumonia, Proteus mirabilis, Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus aureus, Acinetobacterbaumanii и Morganella morganii обладали уреазной активностью. Те клинические изоляты, которые не проявляли уреазной активности, такие как E. coli, обладали широким набором генов различных факторов патогенности, что позволяет им колонизировать мочевой тракт и вызывать воспалительные заболевания мочеполовой системы. Инфекции, передающиеся половым путем (ИППП), часто служат причиной хронизации мочевых инфекций. Известно, что Ureaplasma urealyticu является одним из главных продуцентов бактериальной уреазы.

С целью выявления ИППП из смывов 15 мочевых камней была выделена ДНК и проведен ПЦР-анализ. По результатам тестов в 30% образцов обнаружены ДНК возбудителей: Mycoplasma genitalium. Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum и Gardnerella vaginalis. Таким образом, показано, что мочевые камни у больных уролитиазом могут быть инфицированы широким спектром возбудителей, для выявления которых требуется проведение как стандартных микробиологических, так и молекулярно-генетических исследований [34].

Е. В. Ларцова и соавт. [35] подтвердили диагностическую ценность интраоперационного забора мочи во время выполнения чрескожных эндоскопических операций.

В данном исследовании пациентам, которые не получали антибиотикотерапию на дооперационном этапе, в плановом порядке до операции проводили бактериологическое исследование средней порции утренней пузырной мочи, а в момент дренирования лоханки мочеточниковым катетером либо при пунктировании чашечно-лоханочной системы и во время перкутанной нефролитолапоксии производили забор мочи из чашечно-лоханочной системы. Видовую идентификацию выделенных микроорганизмов осуществляли методом прямого белкового профилирования с помощью масс-спектрометрии. До оперативного лечения при бактериологическом исследовании мочи из мочевого пузыря рост микрофлоры обнаружен у 14,2% пациентов. При локальном заборе мочи интраоперационно из лоханки почки в 22% наблюдений определялся рост патогенной микрофлоры, в ряде наблюдений титр и вид бактериального возбудителя лоханки значительно отличались от результатов бактериологического исследования пузырной мочи. Стандартный положительный посев пузырной мочи не является показателем выраженности бактериального инфицирования. Однако выявление уропатогенов при различных посевах мочи у пациентов с инфекционным генезом камней может свидетельствовать о неизлечимости госпитальной инфекции. Среди пациентов с инфекцией мочевых путей при динамическом контроле рецидив в анамнезе наступил у носителей уреазопродуцирующей флоры [35].

Е. Т. Голощаповым и соавт. [36] изучено 492 мочевых камня, удаленных оперативно или отошедших самостоятельно методом масс-спектрометрии, и проведено сравнение полученных результатов с данными анализа мочи пациентов контрольной группы. У всех больных подтверждено наличие инфекционного агента. В мочевых камнях присутствовали в высоких титрах кокки, бациллы, коринебактерии (Streptococcus mutans, Lactococcus, Acinetobacter Moraxella; Streptococcus/Ruminococcus, Staphylococcus), анаэробы Eubacterium lentum (группа А), Eubacterium, Clostridium ramosum, Clostridium perfringens, Clostridium coccoides, Fusobacterium/Haemophylus; аэробные актинобактерии Actinomyces viscosus, Nocardia asteroids, Streptomyces; энтеробактерии Helicobacter pylori, микроскопические грибы, вирусы Herpes simplex, вирус Эпштейна–Барр. Авторы пришли к выводу, согласно которому при диагностике инфекционно-воспалительных осложнений при нефролитиазе следует проводить тщательное клинико-лабораторное обследование с использованием как стандартных бактериологических методов, дающих информацию в 82,8% случаев, так и газовой хроматографии, выполняемой в специализированных лабораториях, дающей 100%-ные результаты.

Т. С. Перепанова и соавт. [37] обнаружили, что при бактериологическом исследовании камня микроорганизмы выявлялись чаще, чем при исследовании мочи из лоханки: 53,6 против 46,4%. Виды микроорганизмов в камне и моче из лоханки в основном не различались. При проведении послеоперационной антибактериальной терапии следует ориентироваться на результаты бактериологического исследования мочи, взятой из лоханки во время операции. После перкутанной нефролитотрипсии при стерильной моче рецидив камней имел место у 16,2% пациентов, тогда как при наличии мочевой инфекции – у 45,2%.

В исследовании Э. Р. Толордавы, Т. С. Перепановой (2012) [38] изучено действие антибиотика ципрофлоксацина группы фторхинолонов II поколения на формированные биопленки. По рекомендациям Европейской ассоциации урологов (EUA), при неосложненных инфекциях мочевыводящих путей, часто сопутствующих уролитиазу, этот препарат назначают в дозе 125 мг/сут. Для проведения опыта был подобран чувствительный к данному антибиотику клинический изолят Pseudomonas aeruginosa (S) и использованы разные концентрации антибиотика. Под воздействием ципрофлоксацина оптическая плотность планктонных клеток существенно уменьшилась и при дозе антибиотика в 0,06 мкг/мл приблизилась к минимальной отметке. Но при этом антибиотик практически не повлиял на сформированные биопленки. Оказалось, что добавление антибиотика в дозах, ниже терапевтических, провоцирует образование биопленки. В случае исследования действия ципрофлоксацина на клинические изоляты Pseudomonas aeruginosa (R), резистентные к нему, также было показано, что антибиотики, к которым микроорганизмы резистентны, не подавляют рост и формирование биопленки, а наоборот, провоцируют процесс ее формирования. Этот нежелательный эффект усиливается с увеличением дозы «неэффективного» антибиотика [38]. Кроме того, в исследовании данных авторов было изучено влияние фаговых препаратов на процесс формирования биопленок клиническим изолятом E. coli и изучено действие пробиотика споробактерина на способность к образованию биопленок бактериями Pseudomonas aeruginosa. Оказалось, что применение бактериофагового препарата, аналогично антибиотику, в низких титрах провоцирует формирование биопленки [39]. А бактерии, предварительно обработанные фильтратом споробактерина, сохраняли способность прикрепляться к поверхности мочевого камня, но не образовывали биопленку с матриксом. Обработка уже сформированной биопленки фильтратом приводила к видимому уменьшению матрикса биопленки по сравнению с контролем. Полученные данные показали, что споробактерин способен не только значительно замедлять процесс образования биопленки, но и воздействовать на уже сформированную биопленку, ускоряя ее деградацию.

При разработке новых подходов к снижению содержания оксалатов в моче внимание исследователей [40] привлек облигатный кишечный анаэроб Oxalobacter formigenes (OF), который обладает свойством расщеплять оксалаты. Исследования на животных и людях подтвердили, что колонизация кишечника OF может снижать уровень оксалатов в моче, однако остается неясным, влияет ли OF на процесс формирования мочевых камней. Этот вопрос необходимо исследовать более детально. Кроме того, действенной альтернативой OF могут быть молочнокислые бактерии, которые также метаболизируют оксалаты.

Анализ данных литературы позволяет заключить: несмотря на массу научных работ и клинических исследований, в которых приведено множество данных о роли микробной флоры мочевых путей в развитии нефролитиаза, данный вопрос требует дальнейшего изучения, а проблема рецидивного нефролитиаза сохраняет свою актуальность.


Литература


1. Türk C. (ChairKnoll), T. (Vice-chair), Petrik A., Sarica K., Skolarikos A., Straub M., Seitz C. EAU Guidelines on Urolithiasis. European Association of Urology 2016.

2. Glybochko P.V., Lopatkin N.А., Аlyaev YU.G., Аkhvlediani N.D. Diagnosis and treatment of urolithiasis. What has changed over the past 20 years? Saratov. Scientific medical journal. 2011; 7 (2, attachment Materials of Rus. Sci. Conf. With international participation); 9–12. Russian. (Глыбочко П.В., Лопаткин Н.А., Аляев Ю.Г., Ахвледиани Н.Д. Диагностика и лечение мочекаменной болезни. Что изменилось за последние 20 лет? Саратов. науч.-мед. журн. 2011; 7 (2, прил. Материалы Рос. науч. конф. с международным участием); 9–12).

3. Alyaev Yu.G., Glybochko P.V., Pushkar D.Yu. Urology. Russian Clinical Recommendations. Moscow: GEOTAR-Media. 2016; 496. Russian (Аляев Ю.Г., Глыбочко П.В., Пушкарь Д.Ю. Урология. Российские клинические рекомендации. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2016; 496).

4. Trinchieri A., Curhan G., Karlsen S., Jun Wu K. Stone Disease Epidemiology. Paris: Health Publications. 2003; 13–30.

5. Hesse А. Urinary Stones: Diagnosis, Treatment, and Prevention of Recurrence. Switzerland: Karger A.G. 2009; 232.

6. Ramello A., Vitale C., Marangella D. Epidemiology of nephrolithiasis. J. Nephrol. 2000;13(Suppl. 3):45–50.

7. Scales C.D., Smith AC., Hanley JM., Saigal C.S. Prevalence of kidney stones in the United States. Urologic Diseases in America Project. Eur Urol. 2012;62(1);160–165. Doi: 10.1016/j.eururo.2012.03.052.

8. Tiselius H.G. Epidemiology and medical management of stone disease. BJU Int. 2003; 91(8);758–767.

9. Sorokin I., Mamoulakis C., Miyazawa K., Rodgers A., Talati J., Lotan Y. Epidemiology of stone disease across the world. World J Urol. 2017;1–20. Doi: 10.1007/s00345-017-2008-6.

10. Kaprin A.D., Apolikhin O.I., Sivkov A.V., Solntseva T.V., Komarova V.A. Analysis of uronephrosiological morbidity and mortality in the Russian Federation for the period 2002–2014. According to official statistics. Experimental and clinical urology. 2016;(3):4–13. Russian (Каприн А.Д., Аполихин О.И., Сивков А.В., Солнцева Т.В., Комарова В.А. Анализ уронефрологической заболеваемости и смертности в Российской Федерации за период 2002–2014 гг. по данным официальной статистики. Экспериментальная и клиническая урология, 2016;(3):4–13).

11. Avdoshin V.P., Andryukhin M.I., Olshanskaya E.V. Urolithiasis disease. Therapist. 2008;1:42–46. Russian (Авдошин В.П., Андрюхин М.И., Ольшанская Е.В. Мочекаменная болезнь. Лечащий врач. 2008;1:42–46).

12. Dzyurak V.S. Urolithiasis: pathogenesis. Diagnostics, treatment. Journal of the practitioner. 1998;2:2–4. Russian (Дзюрак В.С. Мочекаменная болезнь: патогенез. диагностика, лечение. Журнал практикующего врача. 1998;2:2–4).

13. Keoghane S., Walmsley B., Hodgson D. The natural history of untreated renal tract calculi. BJU Int. 2010;105(12):1627–1629. Doi: 10.1111/j.1464-410X.2010.09389.x.

14. Borisov V.V., Dzeranov N.K. Urolithiasis disease. Therapy patients with kidney stones and ureters. M., 2011. 96 c. Russian (Борисов В.В. Дзеранов Н.К. Мочекаменная болезнь. Терапия больных камнями почек и мочеточников. М., 2011. 96 c.).

15. Kamihira O., Ono Y., Katoh N. Long-term stone recurrence rate after extracorporeal shock wave lithotripsy. J Urol. 1996;156(4);1267–1271.

16. Lahme S., Wilbert D.M., Bichler K.H. Significance of clinically insignificant residual fragments (CIRF) after ESWL. Urology. 1997;36(3):226–230.

17. Tiselius H.G. Recurrent stone formation in patients treated with extracorporal shock wave lithotripsy. J Stone Dis. 1992;4:152–157.

18. Naber K., Bergman B., Bishop M., Grabe M. et al. Guidelines on Urinary and Male Genital Tract Infections European Association of Urology. 2013;493.2):30.

19. Kolpakov I.S. Urolithiasis disease. M.: Academy. 2006; 224. Russian (Колпаков И.С. Мочекаменная болезнь. М.: Академия. 2006; 224).

20. Tiktinsky O.L., Alexandrov V.P. Urolithiasis disease. St. Petersburg: Peter. 2000. 384 p. Russian (Тиктинский О.Л., Александров В.П. Мочекаменная болезнь. СПб.: Питер. 2000. 384 с).

21. Suleimanov S.I., Kadyrov Z.A., Istratov V.N., Ramishvili V.Sh. The role of the infectious factor in the pathogenesis of urolithiasis. Clinical laboratory diagnostics. 2010;7:18–23. Russian (Сулейманов С.И., Кадыров З.А., Истратов В.Н., Рамишвили В.Ш. Роль инфекционного фактора в патогенезе уролитиаза. Клиническая лабораторная диагностика. 2010;7:18–23).

22. Torzewska A., Staczek P., Rózalski A. Crystallization of urine mineral components may depend on the chemical nature of Proteus endotoxin polysaccharides. J Med Microbiol. 2003;52(Pt 6):471–477.

23. Dumanski A.J., Hedelin H., Edin-Liljegren A., Beauchemin D., McLean R.J. Unique ability of the Proteus mirabilis capsule to enhance mineral growth in infectious urinary calculi. Infect Immun. 1994;62(7):299–3003.

24. Al-Gabri A., Shein I.A. Rational antibiotic therapy for urolithiasis. Bulletin of VSMU. 2003;2(2):50–54. Russian (Аль-Габри А., Шеин И.А. Рациональная антибиотикотерапия при мочекаменной болезни. Вестник ВГМУ. 2003;2(2):50–54).

25. Jan H., Akbar I., Kamran H., Khan J. Frequency of renal stone disease in patients with urinary tract infection. J Ayub Med Coll Abbottabad. 2008;20(1):60–62.

26. Palagin I.S., Sukhorukova M.V., Dehnich A.V., Eidelshtein M.V., Shevelev A.N., Grinev A.V., Perepanova T.S., Kozlov R.S. The current state of antibiotic resistance of pathogens of community-acquired infections of the urinary tract in Russia: the results of the DARMIS study (2010–2011). Clinical microbiology and antimicrobial chemotherapy. 2012;14(4):280–302. Russian (Палагин И.С., Сухорукова М.В., Дехнич А.В., Эйдельштейн М.В., Шевелев А.Н., Гринев А.В., Перепанова Т.С., Козлов Р.С. Современное состояние антибиотикорезистентности возбудителей внебольничных инфекций мочевых путей в России: результаты исследования «ДАРМИС» (2010–2011). Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2012;14(4):280–302).

27. Dzeranov N.K., Beshliev D.A., Serebryany S.A., Shaduri V.R. Prognostic significance of the detection of urinary tract infection with remote and contact lithotripsy. Saratov Journal of Medical Scientific Research. 2011;7(S2):153. Russian (Дзеранов Н.К., Бешлиев Д.А., Серебряный С.А., Шадури В.Р. Прогностическая значимость выявления инфекции мочевых путей при дистанционной и контактной литотрипсиях. Саратовский научно-медицинский журнал. 2011;7(S2):153).

28. Naboka Yu.L., Kogan M.I., Gudima I.A. The role of nonclostridial anaerobes in the development of infectious and inflammatory diseases of the organs of the urinary and reproductive systems. Urologiia. 2013;6:118–121. Russian (Набока Ю.Л., Коган М.И., Гудима И.А. Роль неклостридиальных анаэробов в развитии инфекционно-воспалительных заболеваний органов мочевой и половой систем. Урология. 2013;6:118–121).

29. Perepanova T.S., Egamberdiev D.K., Tolordava E.R., Didenko L.V., Romanova Yu.M. Investigation of bacterial composition on distant kidney stones. Theses of the report in the book. «VIII All-Russian Scientific and Practical Conference with International Participation» Rational Pharmacotherapy in Urology «February 7–8, 2013». M., 2013; 8–9. Russian (Перепанова Т.С., Эгамбердиев Д.К., Толордава Э.Р., Диденко Л.В., Романова Ю.М. Исследование бактериального состава на удаленных камнях почек. Тезисы доклада в кн. «VIII Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием «Рациональная фармакотерапия в урологии» 7–8 февраля 2013 г.». М., 2013; 8–9).

30. Сosterton J.W. Cystic fibrosis pathogenesis and the role of biofilms in persistent infection. Trends Microbiol. 2001;9(2):50–52.

31. Marcus R.J., Post J.C., Stoodley P., Hall-Stoodley L., McGill R.L., Sureshkumar K.K., Gahlot V. Biofilms in nephrology. J Med Microbiol. 2003;52(6):471–477.

32. Perepanova Т.S. The significance of infections caused by the formation of biofilms in urological practice. Effective pharmacotherapy. Urology and nephrology. 2013;4:18–27. Russian (Перепанова Т.С. Значение инфекций, обусловленных образованием биопленок, в урологической практике. Эффективная фармакотерапия. Урология и нефрология. 2013;4:18–27).

33. Sayenko V.S. Metaphylaxis of urolithiasis. Fundamental research in uronephrology. Saratov. 2009. 165–171. Russian (Саенко В.С. Метафилактика мочекаменной болезни. Фундаментальные исследования в уронефрологии. Саратов. 2009. 165–171).

34. Tolordava E.R., Tigapova I.G., Alekseeva T.V., Stepanova Yu.M., Terekhov A.A., Egamberdiev D.L., Mulabaev N.S., Shevlyagina N.V., Didenko L.V., Romanova Yu.M. The microflora of kidney stones in urolithiasis and the search for a means of fighting biofilms of uropathogenic bacteria. Journal of Microbiology. 2012;4:56–62. Russian (Толордава Э.Р., Тигапова И.Г., Алексеева Т.В., Степанова Ю.М Терехов А.А., Эгамбердиев Д.Л., Мулабаев Н.С., Шевлягина Н.В, Диденко Л.В., Романова Ю.М. Микрофлора почечных камней при мочекаменной болезни и поиск средств борьбы с биопленками уропатогенных бактерий. Журнал микробиология. 2012;4:56–62).

35. Larcova E.V., Spivak L.G., Morozova O.A. Bacterial contamination of urine in patients with large and coral calculous kidney stones. Herald of urology. 2015;2:34–40. Russian (Ларцова Е.В., Спивак Л.Г., Морозова О.А. Бактериальная обсемененность мочи у пациентов с крупными и коралловидными камнями почек. Вестник урологии. 2015;2:34–40).

36. Goloshchapov E.T., Chetverikov AV, Belozerov E.S. Infectious factor in the genesis of urinary calcification. Urological statements 2016;6(4):21–27. Russian (Голощапов Е.Т., Четвериков А.В., Белозеров Е.С. Инфекционный фактор в генезе мочевого камнеобразования. Урологические ведомости. 2016;6(4):21–27). DOI: 10.17816/uroved6421–27.

37. Perepanova Т.S. Golovanov S.A., Merinov D.S., Arustamov L.D., Radzhabov U.A. Metaphylaxis of infectious kidney stones after percutaneous nephrolithotripsy. Experimental and clinical urology. 2016; 4:96–99. Russian (Перепанова Т.С. Голованов С.А., Меринов Д.С., Арустамов Л.Д., Раджабов У.А. Метафилактика инфекционных камней почек после перкутанной нефролитотрипсии. Экспериментальная и клиническая урология. 2016;4:96–99).

38. Tolordava E.R., Perepanova T.S., Egamberdiyev D.K., Romanova YU.M. Izucheniye protsessa obrazovaniya bioplenki patogennymi mikroorganizmami na poverkhnosti pochechnykh kamney. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2010;9:31–32. Russian (Толордава Э.Р., Перепанова Т.С., Эгамбердиев Д.К., Романова Ю.М. Изучение процесса образования биопленки патогенными микроорганизмами на поверхности почечных камней. Клиническая лабораторная диагностика. 2010;9:31–32).

39. Romanova Yu.M., Tolordava E.R., Navolnev S.O., Ginzburg A.L. The effect of phage OKZ on the formation of biofilm by bacteria Pseudomonas aeruginosa. Preventive medicine – practical health care. The fourth issue. M., 2010;239–243. Russian (Романова Ю.М., Толордава Э.Р., Навольнев С.О., Гинцбург А.Л.Влияние фага OKZ на образование биопленки бактериями Pseudomonas aeruginosa. Профилактическая медицина – практическому здравоохранению. Четвертый выпуск. М., 2010; 239–243).

40. Siva S., Barrack E.R., Reddy G.P., Thamilselvan V., Thamilselvan S., Menon M., Bhandari M. A critical analysis of the role of gut Oxalobacter formigenes in oxalate stone disease. BJU Int. 2009;103(1):18–21. Doi: 10.1111/j.1464-410X.2008.08122.x.


Об авторах / Для корреспонденции


А в т о р д л я с в я з и: К. Р. Хамидуллин – аспирант кафедры урологии с курсом ИДПО ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России, Уфа, Россия; е-mail: kamil.urolog@gmail.com


Бионика Медиа