ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Карбоксикриоабляция почки. Экспериментальное исследование

А.Д. Дамиев, Г.Н. Акопян, Е.В. Шпоть, Р.Р. Харчилава, М.А. Кодзоков, Э.Н. Гасанов, Ю.В. Лернер, М.М. Кривов, М.А. Газимиев

1) ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» МЗ России (Сеченовский Университет), Москва, Россия; 2) РНИМУ Н.И. Пирогова, Москва, Россия
Цель: целью данного экспериментального исследования стала оценка влияния низких температур углекислого газа на «живой» кровоснабжаемый орган (свиная почка), определение возможности выполнения криоабляции ткани почки при помощи углекислого газа (карбоксикриоабляция), а также установление опытным путем режимов карбоксикриоабляции почки.
Материалы и методы. Для проведения данного экспериментального исследования нами использовалась свиная самка линии мини-пиг. Для проведения карбоксикриоабляции доступ к почке нами осуществлялся лапароскопическим способом. В процессе криозаморозки почки проводилось сравнение трех режимов криоэкспозиции: 60, 90 и 120 с. Все режимы сравнивались на одной почке одного животного. Сразу после окончания проведения криоабляции нами выполнялась нефрэктомия, а удаленная почка направлялась на гистологическое исследование. По данным гистологического исследования нами были оценены результаты использования углекислого газа при криоабляции ткани свиной почки. Результаты. Криоабляция на основе углекислого газа (карбоксикриоабляция) приводит к необратимой гибели (некрозу) и деструкции пораженной ткани. Отмечена прямая взаимосвязь между режимом экспозиции и размерами зоны крионекроза. Так, наиболее обширная зона некроза диаметром 10 мм была достигнута при выполнении криоабляции в режиме экспозиции 120 с.
Заключение. Данный эксперимент показал, что криоабляция на основе углекислого газа остается выполнимой процедурой, которая приводит к необратимой гибели (некрозу) и деструкции пораженной ткани. Однако требуются дальнейшие исследования безопасности и эффективности криоабляции ткани почки с помощью углекислого газа.

Ключевые слова

карбоксикриоабляция
криоабляция свиной почки
углекислый газ
некроз
крионекроз

Введение. Прямое применение низких температур в медицине используется давно в качестве хирургического инструментая: в косметологии и для создания очаговых зон деструкции в опухолевых клетках-мишенях [1—3]. Криоабляция — процесс глубокого, локального замораживания и девитализации тканей, позволяющий прицельно создавать зону крионекроза необходимой формы и размера для деструкции пораженной опухолью ткани и прилежащих здоровых клеток [2]. Технический прогресс в медицине привел к созданию нескольких типов криоаппаратов, использующих эффект дросселирования газов. В качестве хладагента применяются жидкий азот, углекислый газ, закись азота, гелий или аргон. В современной урологической практике криоабляция выполняется при раке почки и раке предстательной железы с помощью установок третьего и четвертого поколений на основе аргона и гелия [4—6]. В некоторых экспериментальных и клинических исследованиях продемонстрировано, что криоабляция ткани почки с применением чрескожных открытых или лапароскопических хирургических доступов может быть хорошо переносима [7-9].

Цель исследования. В настоящем исследовании мы стремились оценить влияние низких температур углекислого газа на «живой» кровоснабжаемый орган (свиная почка), определить возможность выполнения криоабляции ткани почки при помощи углекислого газа (карбоксикриоабляция), а также установить опытным путем режимы карбоксикриоабляции почки.

Материалы и методы. В данном эксперименте для карбоксикриоабляции почки нами использовалась свиная самка линии мини-пиг весом 35 кг, возрастом 6 мес. Криоабляция ткани почки нами выполнялась лапароскопическим доступом на «живом» органе с помощью гибкого криозонда Erbecryo-2 компании ErbeElectromedizin (Германия), сконструированного и зарегистрированного для применения в торакальной хирургии для криоэкстракции (опухоль, биопсия ткани, удаление инородного тела, сгустков крови и слизистых пробок), для криореканализации, а также для криодевитализации 10-12]. Холод приводит к кристаллизации внутриклеточной и внеклеточной жидкости. Стенки клеток разрушаются за счет образования кристаллов и перекристаллизации в процессе оттаивания, что способствует девитализации (деструкции) тканей [13-15]. Опыта применения карбоксикриоабляции почечной ткани на установке Erbecryo-2 на момент проведения данного эксперимента в мире не существует.

72-1.jpg (32 KB)

В настоящем эксперименте для проведения криоабляции ткани почки нами использован гибкий криозонд Erbecryo-2 диаметром 2,4 мм и длиной 1,15 м компании ErbeElectromedizin (Германия). Замораживающий эффект Erberyo-2 основан на эффекте Джоуля-Томсона. Эффект Джоуля-Томсона состоит в изменении температуры газа в результате медленного его протекания под действием постоянного перепада давления сквозь дроссель - локальное препятствие газовому потоку, например через пористую перегородку на пути потока. Температура физического замерзания CO2 составляет минус 78,5°C [16]. Углекислый газ под высоким давлением подается из газового баллона в криозонд (рис. 1) через криохирургическую установку (рис. 2).

72-2.jpg (157 KB)

Криоустановка позволяет регулировать поток углекислого газа и время замораживания. Проходя через узкую трубку зонда (рис. 3а), углекислый газ попадает в полый наконечник зонда (рис. 3б). В момент перехода из узкой части трубки криозонда в широкую часть наконечника углекислый газ за счет большой разницы давления подвергается резкой декомпрессии. В тот момент за счет эффекта Джоуля-Томсона газ очень быстро охлаждает кончик зонда (рис. 4, фото кончика зонда с ледяным шариком). В зависимости от давления СО2 в системе и размера зонда на кончике гибкого криозонда возможно создание температуры от -35°C до -50°C.

Накануне эксперимента животное не кормили. После премедикации атропином 0,05 мг/кг анестезию вызывали с помощью 10 мг/кг золетил и 0,2 мг/кг ксилазина, введенного внутримышечно. Устанавливалась канюля для ушной вены и после чего животное было интубировано. Анестезию индуцировали следующими препаратами: пропофол 5 мг/кг в/в, веро-пипекуроний 0,02 мг/кг в/в, аерран с кислородом, ингаляционно концентрация - 1,3-3,0%.

Пневмоперитонеум был достигнут при помощи установки иглы Вереша в околопупочное пространство и достижения давления 12 мм рт.ст. После установки 12-мм лапароскопического троакара около пупка животное перемещали в боковое положение, устанавливали два дополнительных порта диаметром 5 мм латеральнее прямой мышцы живота, проксимальнее и дистальнее пупка. После этого по 5 мм троакарам последовательно мы проводили иглу, эндоскопическую пунктирующую (ИЭП), диаметром 3 мм (рис. 5), проводили последовательно пункцию почки в нижнем, среднем и верхнем сегментах почки на глубину 2 см. В последующем по просвету ИЭП проводили в паренхиму почки криозонд (рис. 6). Время криоэкспозиции в нижнем сегменте составило 120 с, время оттаивания - 80 с (рис. 7).

73-1.jpg (369 KB)

Аналогичные манипуляции выполнены в среднем и верхнем сегментах почки. Время криоабляции в среднем сегменте составило 90 с, время оттаивания криодатчика - 70 с. Время криоабляции в верхнем сегменте составило 60 с, время оттаивания - 60 с. В последующем выполнены нефрэктомия и извлечение почки через разрез по средней линии (рис. 8). По завершении эксперимента животное подверглось эвтаназии введением препаратов, останавливающих сердечную деятельность. Удаленная почка была направлена на гистологическое исследование.

Результаты эксперимента

По данным патоморфологического исследования, во всех зонах введения криозонда отмечены массивные кровоизлияния, представленные скоплениями эритроцитов. По периферии участка проникновения криозонда наблюдались массивные зоны необратимой гибели ткани почки (некроз). Зоны некроза включали отдельные клубочки и канальцы с явлениями кариопикноза (ядра в эпителиальных клетках определялись, но резко сморщены и уменьшены) и кариолизиса (местами отмечалось исчезновение ядер в эпителиальных клетках канальцев).

Зона некроза сохранялась на расстоянии 1,0 см от мест внедрения криозонда на всех участках почечной ткани, подвергшейся криоабляции. На всех представленных участках почечной ткани зону некроза окружало демаркационное воспаление — фокусы кровоизлияний, отдельные резко расширенные полнокровные сосуды (рис. 10 а, б).

74-1.jpg (228 KB)

74-2.jpg (273 KB)

Эпителий канальцев в демаркационной зоне в состоянии белковой (гиалиново-капельной и гидропической) дистрофии. Необходимо отметить, что выраженная инфильтрация полиморфноядерными лейкоцитами, обычно характерная для воспалительной инфильтрации при различных формах некроза, в данном случае не наблюдалась. Присутствовали единичные лейкоциты. На расстоянии 2 и 3 см от мест введения криозондов сохранялись дистрофические изменения эпителия канальцев и присутствовала очаговая лимфомакрофагальная инфильтрация. Кровоизлияния и некроз не распространялись на область почечной лоханки. В некоторых участках переходного эпителия, выстилающего лоханку, отмечены явления гиперплазии. Стенка лоханки инфильтрирована лимфо-макрофагальными элементами с единичными лимфоидными фолликулами в толще стенки.

Наиболее обширная зона некроза представлена в нижнем сегменте почки с режимом экспозиции 120 с (участок № 1) — на препарате участок некроза темно-коричневого цвета. От места введения криозонда данные изменения распространяются в паренхиму почки на глубину от 0,3 до 1,0 см. Фрагменты толщиной 0,2 см — зона некроза сохраняется на всех фрагментах.

Выводы. Криоабляция на основе углекислого газа (карбоксикриоабляция) приводит к необратимой гибели (некрозу) и деструкции пораженной почечной ткани. Отмечена прямая взаимосвязь между режимом экспозиции и размерами зоны некроза. Так, наиболее обширная зона некроза диаметром 10 мм достигнута при выполнении криоабляции режимом экспозиции 120 с.

Заключение. Данный эксперимент показал, что криоабляция на основе углекислого газа является выполнимой процедурой, позволяет получать необходимую по размерам зону некроза почечной ткани. Однако считаем, что требуются дальнейшие исследования ее безопасности и эффективности.

Список литературы

1. Neel H.B. Cryosurgery for the treatment of cancer. Laryngoscope. 1980;90(8 Pt 2):1-48. Doi: 10.1288/00005537-198008001-00001.

2. Patel B.C., Parsons C.L., Bidair M., Schmidt J.D. Cryoablation for carcinoma of the prostate. Journal of Surgical Oncology. 1996;63(4):256-264. doi: 10.1002/(SICI)1096-9098(199612)63:4<256:AID-JSO8>3.0.CO;2-B.

3. Rowbotham G.F., Haigh A.L., Leslie W.G. Cooling cannula for use in the treatment of cerebral neoplasms. Lancet. 1959; 273(7062):12-15. Doi: 10.1016/S0140-6736(59)90976-6.

4. EAU Guidelines: Prostate Cancer | Uroweb. https://uroweb.org/guideline/ prostate-cancer/#6 (accessed Nov. 25, 2020).

5. Melodie Vander Borght, Christine Wyns. Clinically Localized Prostate Cancer: AUA/ASTRO/SUO Guideline. Part II: Recommended Approaches and Details of Specific Care Options. J. Urol. 2018; 199(4)990-997. Doi: 10.1016/J.JURO.2018.01.002.

6. Campbell S. et al. Renal Mass and Localized Renal Cancer: AUA Guideline. J Urol 2017;198(3):520-529. Doi: 10.1016/J.JURO.2017.04.100.

7. Long J.P., Faller G.T. Percutaneous cryoablation of the kidney in a porcine model. Cryobiology. 1999;38(1):89-93. Doi: 10.1006/cryo.1999.2150.

8. Young J.L. et al. Optimal freeze cycle length for renal cryotherapy. J. Urol. 2011;186(1):283-288. Doi: 10.1016/J.JURO.2011.03.034.

9. Brashears J.H. 3rd et al. Renal cryoablation and radio frequency ablation: an evaluation of worst case scenarios in a porcine model. J Urol. 2005;173(6):2160-2165. Doi: 10.1097/01.JU.0000158125. 80981.F1.

10. Schumann C. et al. Endobronchial tumor debulking with a flexible cryoprobe for immediate treatment of malignant stenosis. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2010;139(4):997-1000. Doi: 10.1016/J.JTCVS.2009.06.023.

11. Hetzel J. et al. Cryobiopsy increases the diagnostic yield of endobronchial biopsy: a multicentre trial. Eur. Respir. J. 2012 39(3):685-690. Doi: 10.1183/09031936.00033011.

12. Fruchter O., Kramer M.R. Retrieval of various aspirated foreign bodies by flexible cryoprobe: in vitro feasibility study. Clin. Respir. J. 2015;9(2):176- 179. Doi: 10.1111/CRJ.12120.

13. Tomic R., Podgaetz E., Andrade R.S., Dincer H.E. Cryotechnology in diagnosing and treating lung diseases. J. Bronchology Interv. Pulmonol. 2015;22(1):76-84. Doi: 10.1097/LBR.0000000000000103.

14. Vergnon J.M., Huber R.M., Moghissi K. Place of cryotherapy, brachytherapy and photodynamic therapy in therapeutic bronchoscopy of lung cancers. Eur. Respir. J. 2006;28(1):200-218. Doi: 10.1183/09031936.06.00014006.

15. Lee S.H. et al. Endoscopic cryotherapy of lung and bronchial tumors: a systematic review. Korean J. Intern. Med. 2011;26(2):137-144. Doi: 10.3904/KJIM.2011.26.2.137.

16. Lentz R.J. et al. Transbronchial cryobiopsy for diffuse parenchymal lung disease: a state-of-the-art review of procedural techniques, current evidence, and future challenges. J. Thorac. Dis. 2017;9(7):2186-2203. Doi: 10.21037/JTD.2017.06.96.

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: А. Д. Дамиев - ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» МЗ России (Сеченовский Университет), Москва, Россия; e-mail: damievakhmed@mail.ru

Также по теме