ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Регенеративные технологии при реконструктивных операциях на уретре: обзор литературы. Часть 1

В.Н. Павлов, Р.А. Казихинуров, А.А. Казихинуров, Р.И. Гуспанов, Б.И. Шамсов, А.Г. Вардикян, Р.Р. Казихинуров

1) ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Уфа, Россия; 2) ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н. И. Пирогова; Москва, Россия
Реконструктивная урология остается одной из самых сложных и динамично развивающихся разделов современной урологии, где большая доля оперативных вмешательств приходится на хирургию уретры. Наиболее частой причиной стриктур уретры являются ятрогенные повреждения, травмы и инфекции. Несмотря на достигнутые успехи, реконструктивные операции на уретре (уретропластика) остаются одной из самых сложных и нерешенных задач урологии. Использование регенеративных технологий в медицине, по нашему мнению, является наиболее перспективным направлением, которое может улучшать результаты реконструктивных вмешательств на уретре благодаря снижению риска образования фиброза и стимуляции неоангиогенеза. Применение тканевой инженерии представляет возможность создания органоспецифичных трансплантантов, что может обладать большим потенциалом при аугментационной и заместительной уретропластиках. Предпочтение отдается биоразлагаемым природным биоимплантам. В этом обзоре определены ограничения и проблемы, возникающие в реконструктивной урологии, и обсуждаются соответствующие достижения тканевой инженерии в области регенерации уретры.
В первой части литературного обзора представлены данные об использовании регенеративных технологий в медицине, потенциале биоматериалов и клеточной терапии при уретропластике и обсуждаются экспериментальные модели. Тем не менее ряд нерешенных вопросов ограничивает применение данных технологий в клинической практике, что требует проведения дальнейших исследований в этом направлении.

Ключевые слова

уретра
регенеративная медицина
тканевая инженерия
биоматериалы
клеточная терапия
стромально-васкулярная фракция
доклинические исследования

Врожденные аномалии мочеиспускательного канала (уретры), такие как гипоспадия, и приобретенные дефекты уретры, такие как стриктуры уретры, представляют собой основные клинические проявления в урологической практике [1, 2]. Текущие методы лечения включают хирургические (реконструктивные) методы с ограниченной эффективностью и широкими вариациями между пациентами, но потенциально часто сопровождающимися значительными побочными эффектами (например, хроническим воспалением, риском рецидива стриктур или формированием свищей) [3]. Следовательно, необходимость решения вышеуказанных проблем очень актуально. Достижения в области регенеративной медицины и тканевой инженерии за последние два десятилетия могут предложить альтернативные подходы к реконструктивным операциям на уретре (уретропластике).

Регенеративная медицина – это развивающаяся область, которая сосредоточена на восстановлении, замене или регенерации тканей и органов. Она включает несколько дисциплин, посвященных различным аспектам процесса регенерации, в том числе клеточную биологию, материаловедение и биоинженерию [4]. Фундаментальное отличие регенеративной медицины от более традиционных терапевтических стратегий заключается в том, что целью является не только остановить текущий патологический процесс, но и восстановить или усилить функцию ткани или органа. Такие технологии включают использование децеллюлизированных (бесклеточных) биоматериалов, клеточного материала или того и другого вместе при уретропластике и могут применяться для лечения как врожденных, так и приобретенных заболеваний уретры [5, 6]. Кроме того, разработка стратегий тканевой инженерии, включающих использование стромально-васкулярной фракции (СВФ) или мезенхимальных стволовых клеток (МСК) аутологичной жировой ткани, имеет особые перспективы для преодоления недостатков, связанных с использованием клеток из других областей тела пациента, и поиска решений в терапии заболеваний уретры. Ряд экспериментальных проектов успешно использовали СВФ/МСК, и несколько пилотных исследований на людях указывают на потенциал терапии данным типом клеток [7, 8]. Данной работой мы хотели бы продемонстрировать последние достижения использования регенеративных технологий при реконструктивных операциях на уретре. Кроме того, мы более подробно остановимся на изучении возможностей использования клеточного компонента СВФ, учитывая его потенциал.

Биоматериалы

Как известно, функцией используемых биоматериалов в клинической медицине является контроль биологической микросреды, обеспечивая трехмерное (3D) пространство для регенерируемых тканей [9]. Функции биоматериалов, используемых в тканевой инженерии, зависят от свойств самих выбранных биоматериалов. В частности, в дополнение к роли средств доставки для транспортировки питательных веществ и утилизации отходов свойства выбранных биоматериалов должны также включать функции стимулирования пролиферации, дифференциации и адгезии (прикрепления) клеток [10]. Кроме того, идеальные биоматериалы должны обладать контролируемой скоростью биодеградации без токсичности. Для реконструкции уретры используются различные биоматериалы [11]. Они подразделяются на два основных типа, а именно синтетические и природные биоматериалы (рис. 1). Первый тип включает неразлагаемые биоматериалы (например, силикон и полиуретан) и биоразлагаемые полимеры, такие как полимолочная кислота (polylactic acid –PLA), полигликолевая кислота и полимолочно-гликолевая кислота (polylactic-glycolic acid – PLGA) [12].

114-1.jpg (61 KB)

Известно, что неразлагаемые биоматериалы, используемые при реконструкции уретры, показали плохие результаты с возникновением различных осложнений, таких как кальцификация и свищи [13]. Поэтому приоритет дается биоразлагаемым биоматериалам, поскольку они также дают лучшие результаты. К природным биоматериалам относятся следующие две группы: 1) натуральные полимеры (преимущественно коллаген) и 2) бесклеточные матриксы, полученные из кадаверинах или органов животных ферментативным, физическим или химическим методами [14, 15]. Наиболее часто используемые бесклеточные тканевые матрицы (скаффолды) при реконструкции уретры представляют собой подслизистую оболочку тонкой кишки, бесклеточные матрицы мочевого пузыря и бесклеточные матрицы губчатого тела [15, 16]. Экспериментально оцениваются преимущества и недостатки биоматериалов при уретропластике. Синтетические биоматериалы более доступны, хорошо воспроизводимы и обладают отличными механическими свойствами, однако предполагают отсутствие цитокинов и белков внеклеточного матрикса (ВКМ), которые являются основным фактором регуляции клеточной пролиферации [17]. Некоторые синтетические полимеры могут вызывать воспалительные реакции in vivo и генерировать продукты окислительного стресса, которые способны нарушить рост клеток [18]. Природные биоматериалы сохраняют трехмерную структуру и биоактивные факторы исходной ткани и представляют собой биосовместимые и биоразлагаемые материалы, однако характеризуются отсутствием структурной прочности и трудноконтролируемых биохимических свойств, что связано с фиброзом и контрактурой при имплантации их в уретру [19].

Применение клеточных технологий

Большинство исследований показали, что использование децеллюлизированных биоматериалов может приводить к послеоперационному фиброзу [20–22]. В отношении обширных поражений уретры имеет место быть применение биоматериалов с посевом клеточного компонента для предотвращения образования рубцов и улучшения регенерации тканей. Потенциальный механизм включает содействие быстрому формированию так называемых уротелиальных барьеров биоматериалами, засеянными клетками, и это может также предотвращать раздражение стенки уретры мочой. Известно, что моча токсична для клеток-предшественниц или стволовых клеток, рекрутированных из нормальных соседних тканей [23]. Кроме того, моча также является основным фактором воспалительной инфильтрации, что приводит к более ускоренному образованию фиброзной ткани [24]. Источники клеток, используемые при реконструкции уретры, включают дифференцированные первичные клетки и стволовые клетки (рис. 2).

115-1.jpg (94 KB)

Аутологичная ткань/клетки, получаемые из мочевого пузыря, могут быть использованы при реконструктивных операциях уретры [25]. Биопсия мочевого пузыря является широко используемым методом сбора клеточного материала. Однако она является инвазивным методом и чревата осложнениями [25]. При этом ряд исследователей получили эпителиальные клетки мочевого пузыря из мочи [26]. Клетки, выделенные из мочи, обладают характеристиками нормальных клеток мочевого пузыря и потенциально могут быть использованы для реконструкции уретры. Эпидермальные клетки могут быть легко получены из крайней плоти [27]. Эти клетки можно легко инкубировать, и их количества достаточно при посеве на бесклеточный биоматериал. Эпителиальные клетки, полученные из полости рта, также могут быть адаптированы для замещения тканей уретры, поскольку их структура сходна [28, 29]. Хоть данный подход получения аутологичной эпителиальной ткани менее инвазивен по сравнению с биопсией мочевого пузыря, он также может сопровождаться осложнениями [28]. Гладкомышечные клетки (ГМК) могут быть также выделены из мочевого пузыря, где данный тип клеток может предотвращать спайки стенок и дальнейшее повреждение стенки уретры за счет быстрого формирования мышечного слоя [30]. Кроме того, трансформирующий фактор роста-b1 (transforming growth factor-b1 – TGF-b1), секретируемый ГМК, может способствовать ангиогенезу [30].

Стволовые клетки считаются недифференцированными клетками и могут дифференцироваться в широкий спектр клеток. Эмбриональные стволовые клетки (ЭСК) теоретически рассматриваются как идеальный источник засеваемых клеток из-за потенциала множественной дифференцировки [31]. Кроме того, ЭСК могут дифференцироваться в клетки уретры при обработке транс-ретиноевой кислотой in vitro [32]. Способность индуцировать ЭСК в уротелий in vitro имеет большое значение для реконструкции уретры. Однако применение ограничено серьезной проблемой, а именно происхождением их и вероятностью образования опухолей [33]. Индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (ИПСК) являются альтернативой ЭСК и обладают важными характеристиками, сходными с ЭСК, такими как способность к пролиферации и клонированию. В частности, ИПСК могут быть получены из аутологичных соматических клеток взрослого человека с помощью вирусных векторов для экспрессии ключевых факторов SOX2, c-Myc, OCT4 и Klf4 [34, 35]. Один из ярких примеров был продемонстрирован в работе Osborn и соавт., где он и его команда разработали эффективный протокол для индукции ИПСК в уротелий in vitro, обеспечивая тем самым новый источник для регенеративной медицины при реконструктивных операциях на уретре [36].

Взрослые (постнатальные) стволовые клетки из тканей и органов взрослого человека, таких как костный мозг, кожа и жир, представляют собой резидентные стволовые клетки. Эти клетки поддерживают гомеостаз и регенерацию тканей после незначительного повреждения за счет способности к пролиферации и дифференцировке [37, 38]. Кроме того, взрослые стволовые клетки являются аутологичными и не вызывают явного иммунного отторжения [38]. Более того, использование этих клеток допустимо со стороны этических вопросов и относительно легко изолируется. Стволовые клетки, выделенные из мочеточника или мочевого пузыря, обладают свойством самообновления и могут дифференцироваться в уротелий [38, 39]. Стволовые клетки костного мозга имеют также перспективу для применения в реконструкциях уретры. Однако основной проблемой, связанной с применением данного типа клеток, является их небольшое количество в костном мозге, что влечет за собой значительное время для размножения in vitro и для получения «функциональных» клеток. Кроме того, процесс получения костного мозга довольно травматичен и требует более длительной реабилитации для донора [40].

Клеточная терапия никогда не перестает пользоваться популярностью в области медицинских наук, особенно в области регенеративной медицины. В последнее время жировая ткань стала объектом интереса многих исследователей и медицинских экспертов в связи с тем, что она представляет собой новый и потенциальный источник клеток для целей тканевой инженерии и регенеративной медицины. Например, СВФ, производная жировой ткани, дает оптимистичные результаты во многих сценариях. Ее биологический потенциал можно использовать и вводить в поврежденные ткани, особенно в области, в которых нарушена регенерация [41]. Это типичный признак стриктуры уретры – распространенного заболевания мочеиспускательного канала, вызванного патологическим рубцово-склеротическим процессом, характеризующимся стойким воспалением и деструкцией окружающих тканей [42]. Известно, что СВФ несет массу стволовых клеток и клеток-предшественниц, способных к самообновлению, дифференцировке и пролиферации [43]. Кроме того, они также секретируют несколько цитокинов и несколько факторов роста, эффективно поддерживая иммуномодулирующие эффекты и останавливая эскалацию провоспалительного статуса при стриктурах уретры in vivo [44, 45]. Несмотря на то что СВФ продемонстрировала эффективность, все же крайне желательны дополнительные доклинические и клинические исследования для дальнейшего выяснения ее потенциала в отношении использования в регенеративной медицине.

Можно предположить, что был достигнут многообещающий прогресс в регенеративных технологиях при реконструктивных операциях на уретре. Тем не менее эти многообещающие результаты представлены в основном только в исследованиях in vivo или in vitro и ряд вопросов остаются нерешенными для полноценного внедрения в клиническую практику, как, например, выбор источника клеток или типа биоматериалов. Кроме того, необходимо проводить дальнейшие многоцентровые исследования с большими выборками пациентов, чтобы подтвердить безопасность и осуществимость данных технологий в целях эффективной реконструкции уретры.

Список литературы

1. Pastorek D., Culenova M., Csobonyeiova M., Skuciova V., Danisovic L., Ziaran S. Tissue Engineering of the Urethra: From Bench to Bedside. Biomedicines. 2021;9(12):1917. Doi: 10.3390/biomedicines9121917.

2. Kolpatsinidi F.G., Kyzlasov P.S., Martov A.G., etc. Surgical treatment of extended urethral strictures. Astrakhan Medical Journal= Astrahanskij medicinskij žurnal. 2019;14(3):36–45. Russian (Колпациниди Ф.Г., Кызласов П.С., Мартов А.Г. и др. Оперативное лечение протяженных стриктур уретры. Астраханский медицинский журнал. 2019;14(3):36–45).

3. Waterloos M., Verla W. Female Urethroplasty: A Practical Guide Emphasizing Diagnosis and Surgical Treatment of Female Urethral Stricture Disease. Biomed Res Int. 2019;2019:6715257. doi: 10.1155/2019/6715257.

4. Edgar L., Pu T., Porter B., Aziz J.M., La Pointe C., Asthana A., Orlando G. Regenerative medicine, organ bioengineering and transplantation. Br J Surg. 2020;107(7):793–800. Doi: 10.1002/bjs.11686.

5. Kanematsu A. Regenerative medicine for urological tissues: Updated review 2018. Int J Urol. 2018;25(9):788–791. Doi: 10.1111/iju.13762.

6. Pederzoli F., Joice G., Salonia A., Bivalacqua T.J., Sopko N.A. Regenerative and engineered options for urethroplasty. Nat Rev Urol. 2019;16(8):453–464. Doi: 10.1038/s41585-019-0198-y.

7. Bensemmane L., Squiban C., Demarquay C., Mathieu N., Benderitter M., Le Guen B., Milliat F., Linard C. The stromal vascular fraction mitigates radiation-induced gastrointestinal syndrome in mice. Stem Cell Res Ther. 2021;12(1):309. Doi: 10.1186/s13287-021-02373-y.

8. Carstens M.H., Quintana F.J., Calderwood S.T., Sevilla J.P., Ríos A.B., Rivera C.M., Calero D.W., Zelaya M.L., Garcia N., Bertram K.A., Rigdon J., Dos-Anjos S., Correa D. Treatment of chronic diabetic foot ulcers with adipose-derived stromal vascular fraction cell injections: Safety and evidence of efficacy at 1 year. Stem Cells Transl Med. 2021;10(8):1138–1147. Doi: 10.1002/sctm.20-0497.

9. Davis N.F., Cunnane E.M., Quinlan M.R., Mulvihill J.J., Lawrentschuk N., Bolton D.M., Walsh M.T. Biomaterials and Regenerative Medicine in Urology. Adv Exp Med Biol. 2018;1107:189–198. doi: 10.1007/5584_2017_139.

10. Marin E., Boschetto F., Pezzotti G. Biomaterials and biocompatibility: An historical overview. J Biomed Mater Res A. 2020;108(8):1617–1633. Doi: 10.1002/jbm.a.36930.

11. Fayzullin A.L., Shekhter A.B., Istranov L.P., Istranova E.V., Rudenko T.G., Guller A.E., Aboyants R.K., Timashev P.S., Butnaru D.V. Bioresorbable collagen materials in surgery: 50 years of success. Sechenov Medical Journal. 2020; 11(1): 59–70. https://doi.org/10.47093/2218-7332.2020.11.1.59-70. Russian (Файзуллин А.Л., Шехтер А.Б., Истранов Л.П. и др. Биорезорбируемые коллагеновые материалы в хирургии: 50 лет успеха. Сеченовский вестник. 2020;11(1):59–70. https://doi.org/10.47093/2218-7332.2020.11.1.59-70).

12. Facklam A.L., Volpatti L.R., Anderson D.G. Biomaterials for Personalized Cell Therapy. Adv Mater. 2020;32(13):e1902005. Doi: 10.1002/adma.201902005.

13. Culenova M., Bakos D., Ziaran S., Bodnarova S., Varga I., Danisovic L. Bioengineered Scaffolds as Substitutes for Grafts for Urethra Reconstruction. Materials (Basel). 2019;12(20):3449. Doi: 10.3390/ma12203449.

14. Brovold M., Almeida J.I., Pla-Palacín I., Sainz-Arnal P., Sánchez-Romero N., Rivas J.J., Almeida H., Dachary P.R., Serrano-Aulló T., Soker S., Baptista P.M. Naturally-Derived Biomaterials for Tissue Engineering Applications. Adv Exp Med Biol. 2018;1077:421–449. Doi: 10.1007/978-981-13-0947-2_23.

15. Masaeli R., Zandsalimi K., Tayebi L. Biomaterials Evaluation: Conceptual Refinements and Practical Reforms. Ther Innov Regul Sci. 2019;53(1):120–127. Doi: 10.1177/2168479018774320.

16. Mangir N., Wilson K.J., Osman N.I., Chapple C.R. Current state of urethral tissue engineering. Curr Opin Urol. 2019;29(4):385–393. Doi: 10.1097/MOU.0000000000000637.

17. Austin M.J., Rosales A.M. Tunable biomaterials from synthetic, sequence-controlled polymers. Biomater Sci. 2019;7(2):490–505. Doi: 10.1039/c8bm01215f.

18. García-Perdomo H.A., Jurado-Penagos A. Application of regenerative medicine and 3d bioprinting in urology. Actas Urol Esp (Engl Ed). 2022;46(6):323–328. English, Spanish. Doi: 10.1016/j.acuroe.2022.03.006.

19. Beiko DT, Knudsen BE, Watterson JD, Denstedt JD. Biomaterials in urology. Curr Urol Rep. 2003 Feb;4(1):51-5. doi: 10.1007/s11934-003-0057-4.

20. Zhu D., Jiang Z., Li N., Wang X., Ren L., Ye Y., Pan Y., Yang G. Insights into the use of genetically modified decellularized biomaterials for tissue engineering and regenerative medicine. Adv Drug Deliv Rev. 2022;188:114413. Doi: 10.1016/j.addr.2022.114413.

21. Beiko D.T., Knudsen B.E., Watterson J.D., Cadieux P.A., Reid G., Denstedt J.D. Urinary tract biomaterials. J Urol. 2004;171(6 Pt 1):2438–2444. Doi: 10.1097/01.ju.0000125001.56045.6c.

22. Kwaan H.C. Complications of Implanted Nonbiologic Devices-An Overview. Semin Thromb Hemost. 2018;44(1):7–11. doi: 10.1055/s-0037-1608798.

23. Gorelova A.A., Muravyev A.N., Vinogradova T.I., Gorelov A.I., Yudintseva N.M., Orlova N.V., Nashchekina Yu.A., Khotin M.G., Lebedev A.A., Peshkov N.O., Yablonsky P.K. Tissue engineering technologies in urethral reconstruction. Medical Alliance. 2018;3:75-82. Russian (Горелова А.А., Муравьев А.Н., Виноградова Т.И., Горелов А.И., Юдинцева Н.М., Орлова Н.В., Нащекина Ю.А., Хотин М.Г., Лебедев А.А., Пешков Н.О., Яблонский П.К. Тканеинженерные технологии в реконструкции уретры. Медицинский альянс. 2018;3:75–82).

24. Rajasekaran M., Stein P., Parsons C.L. Toxic factors in human urine that injure urothelium. Int J Urol. 2006;13(4):409–414. Doi: 10.1111/j.1442-2042.2006.01301.x.

25. de Kemp V., de Graaf P., Fledderus J.O., Ruud Bosch J.L., de Kort L.M. Tissue engineering for human urethral reconstruction: systematic review of recent literature. PLoS One. 2015;10(2):e0118653. Doi: 10.1371/journal.pone.0118653.

26. Wood D., Southgate J. Current status of tissue engineering in urology. Curr Opin Urol. 2008;18(6):564–569. Doi: 10.1097/MOU.0b013e32830f9402.

27. Orabi H., Bouhout S., Morissette A., Rousseau A., Chabaud S., Bolduc S. Tissue engineering of urinary bladder and urethra: advances from bench to patients. Scientific World Journal. 2013;2013:154564. doi: 10.1155/2013/154564.

28. Larsson H.M. Is tissue engineering of patient-specific oral mucosa grafts the future of urethral reconstruction? EBioMedicine. 2017;24:30–31. Doi: 10.1016/j.ebiom.2017.09.006.

29. Glybochko P.V., Aljaev J.G., Nikolenko V.N., et al. Tissue-engineered substitution urethroplasty based on decellularized vascular matrix and autologous cells of the buccal mucosa: the first experience. Urologiia. 2015;3:4–10. Russian (Глыбочко П.В., Аляев Ю.Г., Николенко В.Н. и др. Заместительная уретропластика с использованием тканеинженерной конструкции на основе децеллюляризированной сосудистой матрицы и аутологичных клеток слизистой оболочки щеки: первый опыт. Урология. 2015;3:4–10).

30. Kajbafzadeh A.M., Abbasioun R., Sabetkish S., Sabetkish N., Rahmani P., Tavakkolitabassi K., Arshadi H. Future Prospects for Human Tissue Engineered Urethra Transplantation: Decellularization and Recellularization-Based Urethra Regeneration. Ann Biomed Eng. 2017;45(7):1795–1806. Doi: 10.1007/s10439-017-1857-x.

31. Aboushwareb T., Atala A. Stem cells in urology. Nat Clin Pract Urol. 2008;5(11):621–631. Doi: 10.1038/ncpuro1228.

32. Boumelhem B.B., Fraser S.T., Assinder S.J. Differentiation of Urothelium from Mouse Embryonic Stem Cells in Chemically Defined Conditions. Methods Mol Biol. 2019;2029:103–115. Doi: 10.1007/978-1-4939-9631-5_9.

33. Wang X. Stem cells in tissues, organoids, and cancers. Cell Mol Life Sci. 2019;76(20):4043–4070. doi: 10.1007/s00018-019-03199-x.

34. Li Y., Wen Y., Wang Z., Wei Y., Wani P., Green M., Swaminathan G., Ramamurthi A., Pera R.R., Chen B. Smooth Muscle Progenitor Cells Derived From Human Pluripotent Stem Cells Induce Histologic Changes in Injured Urethral Sphincter. Stem Cells Transl Med. 2016;5(12):1719–1729. Doi: 10.5966/sctm.2016-0035.

35. Zhuang G., Wen Y., Briggs M., Shao Q., Tran D., Wang H., Chen B. Secretomes of human pluripotent stem cell-derived smooth muscle cell progenitors upregulate extracellular matrix metabolism in the lower urinary tract and vagina. Stem Cell Res Ther. 2021;12(1):228. Doi: 10.1186/s13287-021-02292-y.

36. Osborn S.L., Thangappan R., Luria A., Lee J.H., Nolta J., Kurzrock E.A. Induction of human embryonic and induced pluripotent stem cells into urothelium. Stem Cells Transl Med. 2014;3(5):610–619. Doi: 10.5966/sctm.2013-0131.

37. Svistunov A.A., Butnaru D.V., Timashev P.S., etc. A method for obtaining multipotent mesenchymal stromal cells from the umbilical cord of a newborn. Patent RU2744301C1. Russian (Свистунов А.А., Бутнару Д.В., Тимашев П.С. и др. Способ получения мультипотентных мезенхимных стромальных клеток из пупочного канатика новорожденного. Патент RU2744301C1).

38. Suman S., Domingues A., Ratajczak J., Ratajczak M.Z. Potential Clinical Applications of Stem Cells in Regenerative Medicine. Adv Exp Med Biol. 2019;1201:1–22. Doi: 10.1007/978-3-030-31206-0_1.

39. Hatina J., Schulz W.A. Stem cells in the biology of normal urothelium and urothelial carcinoma. Neoplasma. 2012;59(6):728–736. Doi: 10.4149/neo_2012_089.

40. Polymeri A., Giannobile W.V., Kaigler D. Bone Marrow Stromal Stem Cells in Tissue Engineering and Regenerative Medicine. Horm Metab Res. 2016;48(11):700–713. Doi: 10.1055/s-0042-118458.

41. Andia I., Maffulli N., Burgos-Alonso N. Stromal vascular fraction technologies and clinical applications. Expert Opin Biol Ther. 2019;19(12):1289–1305. Doi: 10.1080/14712598.2019.1671970.

42. Kotov S.V., Semenov M.K. Iatrogenic urethral strictures in men: prevalence and main etiological factors. Experimental and clinical urology. 2019;11(3):152–157. Russian (Котов С.В., Семенов М.К. Ятрогенные стриктуры уретры у мужчин: распространенность и основные этиологические факторы. Экспериментальная и клиническая урология. 2019;11(3):152–15)7.

43. Bi H., Li H., Zhang C., Mao Y., Nie F., Xing Y., Sha W., Wang X., Irwin D.M., Tan H. Stromal vascular fraction promotes migration of fibroblasts and angiogenesis through regulation of extracellular matrix in the skin wound healing process. Stem Cell Res Ther. 2019;10(1):302. Doi: 10.1186/s13287-019-1415-6.

44. Boissier R, Magalon J, Sabatier F, Veran J, Giraudo L, Giusiano S, Garcia S, Dignat-George F, Arnaud L, Magalon G, Lechevallier E, Berdah S, Karsenty G. Histological and Urodynamic Effects of Autologous Stromal Vascular Fraction Extracted from Fat Tissue with Minimal Ex Vivo Manipulation in a Porcine Model of Intrinsic Sphincter Deficiency. J Urol. 2016;196(3):934–942. Doi: 10.1016/j.juro.2016.04.099.

45. Almeida F.G., Nobre Y.T., Leite K.R., Bruschini H. Autologous transplantation of adult adipose derived stem cells into rabbit urethral wall. Int Urogynecol J. 2010;21(6):743–748. Doi: 10.1007/s00192-009-1090-8.

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: Р. А. Казихинуров – к.м.н., доцент кафедры урологии с курсом ИДПО ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Уфа, Россия; e-mail: royuro@mail.ru

Также по теме