ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Фактор некроза опухоли α в эякуляте как показатель сниженной фертильности

Соснин Д.Ю., Галькович К.Р., Кривцов А.В., Гильманов А.Ж.

1) ФГБОУ ВО «Пермский государственный медицинский университет им. академика Е. А. Вагнера» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Пермь, Россия; 2) АНО ДПО «Пермский институт повышения квалификации работников здравоохранения», Пермь, Россия; 3) ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Уфа, Россия
Введение. Провоспалительный цитокин фактор некроза опухоли α (ФНО-α) является одним из компонентов протеома семенной плазмы; его значение окончательно не раскрыто. Представляет интерес сравнительный анализ концентрации данного белка в крови и в эякуляте и изменений его уровня в сперме у мужчин с бесплодием. Цель исследования: определить уровень ФНО-α в сыворотке крови и семенной плазме здоровых мужчин и у пациентов со сниженной фертильностью. Материалы и методы. Обследованы 70 мужчин репродуктивного возраста, из них 18 с азооспермией (основная группа), 18 – c олигоастенозооспермией (группа сравнения) и 34 с нормальными показателями спермограммы (контрольная группа). Эякулят исследовали с помощью анализатора спермы SQA–V (MES, Израиль). В образцах семенной плазмы концентрацию ФНО-α определяли методом твердофазного иммуноферментного анализа с использованием тест-системы «альфа-ФНО-ИФА-БЕСТ» (А-8756, ООО «Вектор-Бест», Россия). Результаты исследования. Концентрация ФНО-α в сыворотке крови имела значительный разброс (коэффициент вариации (CV) – 85,31%) и составила 2,75±2,18 пг/мл, что в 2,55 раза ниже аналогичного показателя в семенной плазме (7,01±5,98 пг/мл; CV=126,15%, р<0,00001). При сравнении содержания ФНО-α в семенной плазме у обследованных были установлены статистически значимые различия (критерий Краскела–Уоллиса H=24,75991; р<0,00001). При попарном сравнении выявлена статистически значимая разница уровня ФНО-α в семенной плазме между группой сравнения и контрольной группой (p=0,000023), а также между основной группой и группой сравнения (p=0,000043); достоверных различий между основной и контрольной группами не выявлено (р>0,05). При определении содержания ФНО-α в сыворотке крови статически значимой разницы между группами не установлено (р>0,05). Отсутствовали корреляционные зависимости между концентрацией ФНО-α в сыворотке крови и семенной плазме (R=0,295374); между уровнем данного протеина и общим количеством сперматозоидов в эякуляте (R=-0,027945); между содержанием ФНО-α и концентрацией сперматозоидов в эякуляте (R -0,042902). Обсуждение. Маловероятно, что исследуемый цитокин проникает в семенную плазму из сыворотки крови против градиента концентрации. Есть основания предполагать, что ФНО-α продуцируется локально в органах репродуктивной системы резидентными иммунными клетками или клетками, участвующими в сперматогенезе. Повышенное содержание ФНО-α в семенной плазме у пациентов группы сравнения может указывать на наличие воспалительного процесса в органах репродуктивной системы и свидетельствовать о сниженной фертильности эякулята. Заключение. Пока остаются неясными физиологическая роль ФНО-α в сперме, источники его продукции в органах репродуктивной системы мужчин и патогенетические механизмы участия данного протеина в патологических процессах в органах мужской репродуктивной системы. Все это обосновывает необходимость дальнейшего исследования уровня ФНО-α в семенной плазме в норме и при заболеваниях органов урогенитального тракта у мужчин.

Ключевые слова

фактор некроза опухоли-α
ФНО-α
TNFα
эякулят
семенная плазма
олигоастенозооспермия
азооспермия
мужское бесплодие

Введение. Нарушение мужской репродуктивной функции вследствие воздействия физических и химических факторов, генетических нарушений, перенесенных ранее заболеваний часто сопровождается изменениями структуры сперматозоидов и/или их количества, а также протеома и метаболома семенной плазмы [1–4]. Частым фактором, отрицательно влияющим на свойства эякулята, является воспаление в органах репродуктивной системы у мужчин [5].

Важную роль в формировании воспалительного иммунного ответа играют цитокины [6]. Провоспалительные цитокины (интерферон-γ, интерлейкины-1, -2, -6, -8) отвечают за формирование воспалительного ответа, индукцию лихорадки, активацию мононуклеарных фагоцитов, стимуляцию синтеза белков острой фазы – это обеспечивает уничтожение и элиминацию патогена. Противовоспалительные цитокины (интерлейкины-4, -10) регулируют активность воспалительного процесса.

К провоспалительным цитокинам относится также фактор некроза опухоли-α (ФНО-α, англ. TNFα) [6–8], который вырабатывается различными клетками – активированными макрофагами, В-лимфоцитами, Т-лимфоцитами, NK-клетками, полиморфно-ядерными лейкоцитами, тучными клетками, базофилами, фибробластами, клетками эндотелия сосудов и др. ФНО-α экспрессируется как трансмембранный белок с молекулярной массой 26 кДа, включающий остатки 233 аминокислот. Под действием специфического TNF-конвертирующего фермента ADAM17 (A Disintegrin And Metalloprotease 17, CD156b) фрагмент, связанный с мембраной, отщепляется и формируется растворимый ФНО-α (17 кДа, 157 аминокислотных остатков) [6–10].

Физиологическая функция ФНО-α разнообразна и включает регуляцию пролиферации, дифференцировки, апоптоза, формирования структуры органов и тканей, участие в ремиелинизации нейронов, ремоделировании миокарда, регенерации хрящевой ткани, десенсибилизации макрофагов, подавлении онкогенеза [7–13]. ФНО-α определяется как в сыворотке крови, так и в других биологических жидкостях организма – в моче, слюне [14], ликворе [15], синовиальной жидкости [16]. Установлено присутствие данного белка в органах мужской репродуктивной системы – яичках и их придатках [17], а также в содержимом кист придатка яичка [18].

В доступной литературе обнаружено небольшое количество публикаций, посвященных изучению ФНО-α в сперме [5,19–21, 24–26]. В связи с этим представляется актуальным сравнительный анализ концентрации данного протеина в крови и в эякуляте, изучение возможных изменений его концентрации в сперме у больных с нарушением фертильности.

Цель исследования: определить содержание ФНО-α в сыворотке крови и в семенной плазме здоровых мужчин и у пациентов со сниженной фертильностью.

Материалы и методы. В исследование включены 70 мужчин репродуктивного возраста (средний возраст – 38,38±9,86 года), проходивших обследование с целью уточнения причины бесплодного брака. У всех обследованных отсутствовали изменения в общем и биохимическом анализах крови, общем анализе мочи. Исследование выполнено с соблюдением этических принципов проведения медицинских исследований с участием людей в качестве субъектов, изложенных в Хельсинкской декларации ВОЗ.

В работе использовали остаточные образцы биологических материалов (сыворотки крови и спермы) мужчин, проходивших обследование с целью оценки фертильности. Образцы эякулята собирали после 2–4 дней полового воздержания и оценивали в соответствии с рекомендациями ВОЗ [22]. Кровь брали методом венепункции кубитальной вены перед сбором эякулята. После выполнения всех назначений остатки проб обезличивали. Сыворотку крови и семенную плазму отделяли путем центрифугирования при 2000 g в течение 20 мин на центрифуге СМ-6М (ELMI, Латвия). Аликвоты супернатантов биологического материала в пробирках типа Эппендорф хранили до исследования при температуре -40°С. Для подсчета концентрации и общего количества сперматозоидов, а также оценки их подвижности использовали анализатор спермы SQA-V (MES, Израиль) [23].

Концентрацию ФНО-α определяли методом твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА) с использованием тест-системы «альфа-ФНО-ИФА-БЕСТ» (A-8756) («Вектор-Бест», Россия). Оптическую плотность проб регистрировали на вертикальном фотометре StatFax 3200 (Awareness Technology, США).

В зависимости от результатов лабораторного анализа спермы обследованные были разделены на три группы. Основную группу составили 18 пациентов с отсутствием сперматозоидов в эякуляте (азооспермия). Группа сравнения включила 18 пациентов с олигоастенозооспермией, критерием включения являлась концентрация сперматозоидов ниже 15 млн/мл или общее содержание сперматозоидов в эякуляте ниже 40 млн. Контрольная группа была представлена образцами спермы 34 здоровых мужчин, характеризовавшимися нормальными параметрами спермы и сыворотки крови [22]. Группы были сопоставимыми по возрасту. Характеристика групп обследованных и проб эякулята представлена в табл. 1.

81-1.jpg (85 KB)

Статистическую обработку полученных результатов проводили с помощью пакета программ STATISTICA v.7 (StatSoft Inc., США). Для каждого массива данных рассчитывали параметры описательной статистики: среднюю арифметическую (М), стандартное отклонение (SD), медиану (Me) и нижний и верхний квартили (Q1; Q3), а также минимальное (min) и максимальное (max) значения. Полученные результаты оценивали с использованием критерия Шапиро–Уилка. Эти данные позволили отвергнуть нулевую гипотезу о нормальном характере распределения данных и послужили основанием для использования непараметрических критериев при выполнении дальнейшего статистического анализа.

Для сравнения двух зависимых выборок использовали Т-критерий Вилкоксона, для сравнения нескольких независимых выборок – H-критерий Краскела–Уоллиса. Количественную оценку линейной связи между двумя случайными величинами определяли с использованием коэффициента ранговой корреляции (R) Спирмена. За максимально приемлемую вероятность ошибки первого рода (р) принимали величину уровня статистической значимости, равную или меньшую 0,05.

Результаты исследования. Фактор некроза опухоли-α был обнаружен во всех исследованных пробах эякулята (табл. 2), что совпадает с данными других исследователей [5, 19–21, 24–26]. Средняя концентрация ФНО-α в семенной плазме составила 7,01±5,98 пг/мл, медиана и интерквартильный диапазон – 4,93 (4,08; 7,11) пг/мл (рис. 1). Отмечен значительный разброс данных (коэффициент вариации [CV] – 85,31%); минимальное и максимальное значения составили 2,48 и 35,77 пг/мл и различались в 14,42 раза.

82-1.jpg (30 KB)

Фактор некроза опухоли-α был также выявлен во всех образцах сыворотки крови: его содержание составило 2,75±2,18 пг/мл, медиана и интерквартильный размах – 2,35 (1,50; 3,30) пг/мл. Как и в семенной плазме, наблюдался большой разброс концентрации аналита (CV=126,15%) – от неопределяемого значения до 12,80 пг/мл (см. рис. 1). Среднее значение концентрации ФНО-α в сыворотке крови было статистически значимо ниже аналогичного показателя в семенной плазме в 2,55 раза, медиана – в 1,79 раза (критерий Вилкоксона Т=117,00; р<0,00001). Выявленная закономерность имела место во всех исследованных группах (табл. 2).

82-2.jpg (78 KB)

При сравнении значений ФНО-α в семенной плазме у пациентов с азооспермией, олигозооспермией и у здоровых лиц были установлены статистически значимые различия (р<0,0001) (см. табл. 2). При попарном сравнении выявлена статистически значимая разница между группой сравнения и контрольной группой, а также между основной группой и группой сравнения (см. табл. 2). При попарном сравнении концентрации ФНО-α в семенной плазме обследованных основной и контрольной групп статистически значимых различий не обнаружено. Сравнение результатов исследования ФНО-α в сыворотке крови и попарное сравнение уровня аналита в сыворотке крови в разных исследуемых группах статически значимой разницы не выявило) (см. табл. 2).

Анализ корреляционных взаимосвязей между концентрацией ФНО-α в сыворотке крови и в семенной плазме также не выявил достоверных различий. Коэффициент корреляции Спирмена для суммарных массивов данных во всех группах (R) составил 0,295374; в основной группе (R1) – 0,007235; в группе сравнения (R2) – 0,222739; в контрольной группе (R3) – 0,393601.

83-1.jpg (66 KB)

Зависимость уровня ФНО-α в семенной плазме от его концентрации в сыворотке крови описывается уравнением линейной регрессии (рис. 2 А):

концентрация ФНО-α в спермоплазме (пг/мл)=4,8054+0,802×x,

где x – концентрация ФНО-α в сыворотке крови (пг/мл).

Не выявлено статистических значимых закономерностей при анализе корреляционных взаимосвязей между концентрацией ФНО-α в семенной плазме и показателями фертильности эякулята – концентрацией и общим количеством сперматозоидов. Коэффициент корреляции между уровнем ФНО-α и количеством сперматозоидов в эякуляте составил R=-0,027945 (R2=0,345896; R3=0,130119 соответственно); между концентрацией ФНО-α и концентрацией сперматозоидов в эякуляте R=-0,042902 (R2=0,513430; R3=0,130119).

Зависимость концентрации ФНО-α в семенной плазме от концентрации сперматозоидов в эякуляте может быть выражена уравнением линейной регрессии (рис. 2 Б):

концентрация ФНО-α в спермоплазме (пг/мл)=8,1536–0,0253×x,

где х – концентрация сперматозоидов в эякуляте (млн/мл).

Обсуждение. В большинстве источников приводятся результаты определения ФНО-α в сыворотке крови [11–13]. Меньшее число публикаций отражает содержание данного белка в других биологических жидкостях: моче, слюне, ликворе [14–16]. Исследованию ФНО-α в таких биологических жидкостях, как эякулят и семенная плазма, посвящено лишь небольшое число работ [5, 19–21, 24–26]. Еще реже приводятся результаты определения исследуемого цитокина в сперме и сыворотке крови у одних и тех же мужчин [27–29]. Наше исследование также было посвящено изучению концентрации ФНО-α у одних и тех же лиц в эякуляте и сыворотке крови. Полученные нами результаты позволили подтвердить наличие ФНО-α в семенной плазме и показать, что его содержание статистически значимо выше, чем в сыворотке крови (р<0,05).

В работе E.M. Eldamnhoury и соавт. [25] была обнаружена взаимосвязь между содержанием ФНО-α, общим количеством сперматозоидов (p=0,023) и их концентрацией (p=0,001). У бесплодных мужчин со сниженной фертильностью и воспалением органов репродуктивной системы, одним из признаков которого являлась лейкоцитоспермия, отмечалось статистически значимое повышение уровня ИЛ-6 (p=0,001) и ФНО-α (p=0,003) в семенной плазме по сравнению со здоровыми лицами [25]. В нашем исследовании вероятной причиной снижения концентрации сперматозоидов у пациентов группы сравнения в числе прочего может быть воспалительный процесс в органах мужской репродуктивной системы. Полученные нами результаты, как и данные E. M. Eldamnhoury и соавт. [25], подтверждают наличие достоверных различий концентрации ФНО-α в семенной плазме между пациентами с олигоастенозооспермией и здоровыми мужчинами (p=0,000023).

Нами не выявлено статистически значимой корреляционной зависимости между содержанием ФНО-α в семенной плазме и концентрацией/количеством сперматозоидов в эякуляте. Полученные результаты совпадают с данными W. Eggert-Kruse и соавт. [20], которые также не обнаружили связи между концентрацией ФНО-α в семенной плазме и качественными показателями спермы и показателями функциональной активности сперматозоидов. Однако в других работах [19] показано влияние повышенного уровня ФНО-α на подвижность сперматозиодов, как находящихся в урогенитальном тракте мужчин, так и попадающих в организм женщин. Возможно, повышение содержания ФНО-α в семенной плазме является одним из проявлений воспалительного процесса, результатом которого может быть ухудшение показателей спермограммы.

Окончательно не решен вопрос о происхождении ФНО-α в составе эякулята. С учетом более высокого уровня данного белка в семенной плазме по сравнению с сывороткой крови более вероятно, что ФНО-α секретируется в эякулят органами репродуктивной системы мужчины. В пользу данного предположения свидетельствуют результаты исследования R. Payan-Carreira и совт. [17], в котором иммуногистохимичеcкими методами показана экспрессия ФНО-α в тканях яичка, придатка яичка и в самих сперматозоидах.

В настоящее время продолжаются исследования, направленные на изучение белкового состава семенной плазмы, выявление взаимосвязи ее компонентов с показателями фертильности сперматозоидов [3–5, 26, 27]. Если рассматривать гипотезу о том, что ФНО-α продуцируется яичками и их придатками, а также попадает в эякулят с секретами других желез, то логично предположить, что уровни этого цитокина в семенной плазме пациентов со сниженной фертильностью и здоровых мужчин могут быть различными вследствие возможного патологического процесса в железах (воспаление, нарушения в микрососудистом русле и др.). В пользу этого предположения свидетельствует статистически значимая разница концентрации ФНО-α в эякуляте больных олигоастенозооспермией и здоровых лиц (р<0,05). В то же время в нашем исследовании не выявлено статистически значимых различий между содержанием ФНО-α в эякуляте у здоровых лиц и пациентов основной группы (р=0,99), у которых отсутствовали сперматозоиды и признаки воспаления (по результатам анализа эякулята).

Полученные результаты легли в основу способа прогнозирования инфертильности эякулята у мужчин (патент на изобретение № 2785487) [30]. Предложено определение содержания ФНО-α в семенной плазме как маркера прогнозируемого снижения фертильности эякулята вследствие воспалительной реакции в органах мужской репродуктивной системы. Предложенный способ позволяет выявлять снижение фертильности эякулята на доклинических стадиях, в ранние сроки ставить таких пациентов на учет и проводить им своевременную адекватную терапию с целью профилактики бесплодия в супружеской паре.

Заключение. В настоящем исследовании установлена роль увеличения концентрации ФНО-α в сперме как одного из маркеров снижения фертильности эякулята. Однако физиологическая роль ФНО-α в сперме, патогенетические механизмы участия данного протеина в патологических процессах в органах мужской репродуктивной системы окончательно не выяснены. Необходимы дальнейшие исследования концентрации ФНО-α в норме и при заболеваниях органов урогенитального тракта у мужчин, в том числе у пациентов с различными причинами олигозооастеноспермии.

Список литературы

1. Taitson P.F., Mourthé A. Filho, Rodrigues L.M.F. Treating male infertility. JBRA Assist Reprod. 2022;17(6):351352. Doi: 10.5935/1518-0557.20130079

2. Tomaiuolo G., Fellico F., Preziosi V., Guido S. Semen rheology and its relation to male infertility. Interface Focus. 2022;12(6):20220048. Doi: 10.1098/rsfs.2022.0048

3. Galimov Sh.N., Gromenko Yu.Y., Galimov K.Sh., Galimova E.F., Bodrova E.S., Bulygin K.V., Litvitsky P.F. Molecular mechanisms of male infertility: the main directions of scientific search. Urologiia. 2022;4:114–117. Russian (Галимов Ш.Н., Громенко Ю.Ю., Галимов К.Ш., Галимова Э.Ф., Бодрова Е.С., Булыгин К.В., Литвицкий П.Ф. Молекулярные механизмы мужского бесплодия: основные направления научного поиска. Урология. 2022;4:114–117). Doi: 10.18565/urology.2022.4.114-117/

4. Sosnin D.Yu., Gal’kovich K.R., Khovaeva Ya.B., Gil’manov A.Zh. Comparative content of neuron-specific enolase in blood serum and seminal plasma of men. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2022;173(3);285-288. Russian (Соснин Д.Ю., Галькович К.Р., Ховаева Я.Б., Гильманов А.Ж. Сравнительное содержание нейрон-специфической енолазы в сыворотке крови и семенной плазме мужчин. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2022;173(3);285–288). Doi:10.47056/0365-9615-2022-173-3-285-288.

5. Bukharin O.V., Kuzmin M.D., Perunova N.B., Ivanova E.V., Bekpergenova A.V., Bondarenko T.A. Characterization of the microbiota and cytokine profile of sperm plasma in men with chronic bacterial prostatitis. Urologiia. 2020;5:67–72. Russian (Бухарин О.В., Кузьмин М.Д., Перунова Н.Б., Иванова Е.В., Бекпергенова А.В., Бондаренко Т.А. Характеристика микробиоты и цитокинового профиля спермоплазмы у больных хроническим бактериальным простатитом. Урология. 2020;5:67–72). Doi: 10.18565/urology.2020.5.67-72.

6. Rossi J.F., Lu Z.Y., Massart C., Levon K. Dynamic immune inflammation precision medicine: the good and the bad inflammation in infection and cancer. Front Immunol. 2021;12:595722. Doi: 10.3389/fimmu.2021.595722

7. Yamazaki M, Iwai Y, Noda K, Matsui S, Kato A, Takai H, Nakayama Y, Ogata Y. Tumor necrosis factor-α stimulates human amelotin gene transcription in gingival epithelial cells. Inflamm Res. 2018;67(4):351–361. Doi: 10.1007/s00011-017-1126-3.

8. Chu W.M. Tumor necrosis factor. Cancer Lett. 2013;328(2):222–225. Doi: 10.1016/j.canlet.2012.10.014.

9. Voronina E.V., Lobanova N.V., Yakhin I.R., Romanova N.A., Seregin Yu.A. Role of tumor necrosis factor alpha in immune pathogenesis of different diseases and its significance for evolving anticytokine therapy with monoclonal antibodies. Medical Immunology (Russia) / Meditsinskaya Immunologiya. 2018;20(6):797–806. Russian (Воронина Е.В., Лобанова Н.В., Яхин И.Р., Романова Н.А., Серегин Ю.А. Роль фактора некроза опухоли-альфа в иммунопатогенезе заболеваний различной этиологии и его значимость в развитии антицитокиновой терапии моноклональными антителами. Медицинская иммунология. 2018;20(6):797–806). Doi: 10.15789/1563-0625-2018-6-797-806.

10. Bateneva A.V., Simakova O.V., Gamaley S.G., Volosnikova E.A., Lebedev L.R., Danilenko E.D. Pharmacokinetics of recombinant human tumor necrosis factor alpha in the delivery system. Biopreparations. Prevention, diagnosis, treatment. 2019;19(3):169–177. Russian (Батенева А.В., Симакова О.В., Гамалей С.Г., Волосникова Е.А., Лебедев Л.Р., Даниленко Е.Д. Фармакокинетика рекомбинантного человеческого фактора некроза опухоли альфа в составе средства доставки. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2019;19(3):169-177). Doi:10.30895/2221-996X-2019-19-3-169-177.

11. Crorkin P., Hao S., Ferreri N.R. Responses to Ang II (Angiotensin II), Salt Intake, and Lipopolysaccharide Reveal the Diverse Actions of TNF-α (Tumor Necrosis Factor-α) on Blood Pressure and Renal Function. Hypertension. 2022;79(12):2656–2670. Doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.122.19464.

12. Soltani Khaboushan A., Yazdanpanah N., Rezaei N. Neuroinflammation and proinflammatory cytokines in epileptogenesis. Mol Neurobiol. 2022;59(3):1724–1743. Doi: 10.1007/s12035-022-02725-6.

13. Zeng S., Tan L., Sun Q., Chen L., Zhao H., Liu M., Yang H., Ren S., Ming T., Tang S., Tao Q., Meng X., Xu H. Suppression of colitis-associated colorectal cancer by scutellarin through inhibiting Hedgehog signaling pathway activity Phytomedicine. 2022;98:153972. Doi: 10.1016/j.phymed.2022.153972.

14. Ruacho G., Lira-Junior R., Gunnarsson I., Svenungsson E., Boström E.A. Inflammatory markers in saliva and urine reflect disease activity in patients with systemic lupus erythematosus. Lupus Sci Med. 2022;9(1):e000607. Doi: 10.1136/lupus-2021-000607.

15. Grzegorski T., Iwanowski P., Kozubski W., Losy J. The alterations of cerebrospinal fluid TNF-alpha and TGF-beta2 levels in early relapsing-remitting multiple sclerosis. Immunol Res. 2022;70(5):708–713. Doi: 10.1007/s12026-022-09303-x.

16. Ulmner M., Sugars R., Naimi-Akbar A., Alstergren P., Lund B. Cytokines in temporomandibular joint synovial fluid and tissue in relation to inflammation. J Oral Rehabil. 2022;49(6):599-607. Doi: 10.1111/joor.13321

17. Payan-Carreira R., Santana I., Pires M.A., Holst B.S., Rodriguez-Martinez H. Localization of tumor necrosis factor in the canine testis, epididymis and spermatozoa. Theriogenology. 2012;77(8):1540–1548. Doi: 10.1016/ j.theriogenology. 2011.11.021.

18. Usupbaev A.Ch., Kutbolsunuulu U., Kuzebaev R.E. Determinations of tumor necrosis factor alpha, interleukin-4 and interleukin-6 in a cystose liquid of the epididymis. Experimental and Clinical Urology, 2021;14(4):102–106. Russian (Усупбаев А.Ч., Кутболсунуулу У., Кузебаев Р.Е. Определение фактора некроза опухоли альфа, интерлейкина-6 иинтерлейкина-4 в содержимом кист придатка яичка. Экспериментальная и клиническая урология. 2021;14(4):102–106). Doi:10.29188/2222-8543-2021-14-4-102-106.

19. Papadimas J., Goulis D.G., Sotiriades A., Daniilidis M., Fleva A., Bontis J.N., Tourkantonis A. Interleukin-1 beta and tumor necrosis factor-alpha in normal/infertile men Arch Androl. 2002;48(2):107–113. Doi: 10.1080/014850102317267418.

20. Eggert-Kruse W., Kiefer I., Beck C., Demirakca T., Strowitzki T. Role for tumor necrosis factor alpha (TNF-alpha) and interleukin 1-beta (IL-1beta) determination in seminal plasma during infertility investigation. FertilSteril. 2007;87(4):810–823. Doi:10.1016/j.fertnstert.2006.08.103.

21. Azimi A.S., Soleimani Mehranjani M., Shariatzadeh S.M.A., Noshad Kamran A., Ghafarizadeh A.A. Evaluating the therapeutic effect and toxicity of theophylline in infertile men with asthenoteratozoospermia: a double-blind, randomized clinical trial study. Drug Chem Toxicol. 2022;45(6):2786–2793. Doi: 10.1080/01480545.2021.1991755.

22. World Health Organization. 6th ed. World Health Organization; Geneva: 2021. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen; p. 276.

23. Kubarev O.G., NenashevaO.Yu., Gal’kovich K.R.Using an automatic analyzer to study the ejaculate. Laboratornaya sluzhba.2018;7(3):183. Russian (Кубарев О.Г., Ненашева О.Ю., Галькович К.Р. Использование автоматического анализатора для исследования эякулята. Лабораторная служба. 2018; 7(3):183).

24. Moretti E., Collodel G., Mazzi L., Campagna M., Iacoponi F., Figura N. Resistin, interleukin-6, tumor necrosis factor-alpha, and human semen parameters in the presence of leukocytospermia, smoking habit, and varicocele. FertilSteril. 2014;102(2):354–360. Doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.04.017.

25. Eldamnhoury E.M., Elatrash G.A., Rashwan H.M., El-Sakka A.I. Association between leukocytospermia and semen interleukin-6 and tumor necrosis factor-alpha in infertile men. Andrology. 2018;6(5):775–780. Doi: 10.1111/andr.12513

26. Morselli S., Sebastianelli A., Liaci A., Zaccaro C., Pecoraro A., Nicoletti R., Manera A., Bisegna C., Campi R., Pollini S., Antonelli A., Lagi F., Coppi M., Baldi E., Marchiani S., Nicolò S., Torcia M., Annunziato F., Maggi M., Vignozzi L., Bartoloni A., Rossolini G.M., Serni S., Gacci M. Male reproductive system inflammation after healing from coronavirus disease 2019. Andrology. 2022;10(6):1030-1037. Doi: 10.1111/andr.13138.

27. Havrylyuk A., Chopyak V., Boyko Y., Kril I., Kurpisz M. Cytokines in the blood and semen of infertile patients.Cent Eur J Immunol. 2015;40(3):337–344. Doi: 10.5114/ceji.2015.54596.

28. Johnson M.L., Dasgupta T., Gopichandran N., Field S.L., Orsi N.M.A Bayesian view of murine seminal cytokine networks. PLoS One. 2017;12(11):e0188897. Doi: 10.1371/journal.pone.0188897.

29. Pilatz A., Hudemann C., Wolf J., Halefeld I., Paradowska-Dogan A., Schuppe H.C., Hossain H., Jiang Q., Schultheiss D., Renz H., Weidner W., Wagenlehner F., Linn T. Metabolic syndrome and the seminal cytokine network in morbidly obese males. Andrology. 2017;5(1):23–30. Doi: 10.1111/andr.12296.

30. Sosnin D.Yu., Gal’kovich K.R., Krivtsov A.V. Method for predicting ejaculate infertility in men.Patent for the invention 2785487C1, 08.12.2022. Russian (Соснин Д.Ю., Галькович К.Р., Кривцов А.В. Способ прогнозирования инфертильности эякулята у мужчин. Патент на изобретение 2785487C1, 08.12.2022).

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: Д. Ю. Соснин – д.м.н., профессор кафедры факультетской терапии № 2, профессиональной патологии и клинической лабораторной диагностики ФГБОУ ВО «Пермский государственный медицинский университет им. академика Е. А. Вагнера» Минздрава России, Пермь, Россия; e-mail: sosnin_dm@mail.ru

Также по теме