ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Изменения фенотипа эпителия нефрона обструктивной почки 
при односторонней непроходимости мочеточника 
(экспериментальное исследование)

М.А. Акименко, Т.С. Колмакова, О.В. Воронова, М.И. Коган

ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Ростов-на-Дону, Россия
Высокая распространенность заболеваний почек, вызванных обструкцией мочевыводящих путей, привела к необходимости экспериментальных исследований динамики патологических процессов при их поражении. Несмотря на то что общие закономерности развития обструктивной уропатии известны, недостаточно изученными остаются особенности повреждения почечной ткани, в частности структурные и молекулярно-биологические изменения при данном заболевании верхних мочевыводящих путей.
Цель исследования: изучить в динамике изменения фенотипа эпителиальных клеток нефрона обструктивной почки при односторонней непроходимости мочеточника на экспериментальной модели.
Материалы и методы. Экспериментальное исследование выполнено на базе ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет». Модель односторонней непроходимости мочеточника воспроизведена на взрослых кроликах. Исследования проведены на 7-й, 14 и 21-е сутки полной обструкции левого мочеточника. Выполнено иммунофенотипирование образцов ткани обструктивной почки на маркеры эпителиального фенотипа (цитокератин-7, Е-кадгерин) и мезенхимального фенотипа (виментин, α-гладкомышечный актин).
Результаты. Установлена последовательность изменений фенотипа эпителиальных клеток нефрона при обструкции мочеточника. Первые признаки эпителиально-мезенхимального перехода появляются к 7-м суткам в виде снижения визуализации маркеров эпителиального фенотипа. На 14-е сутки отмечается экспрессия как эпителиальных, так и мезенхимальных маркеров. Значительные изменения фенотипа эпителиальных клеток нефрона: потеря эпителиальных маркеров (цитокератин-7, Е-кадгерин) и приобретение мезенхимальных маркеров (виментин, α-гладкомышечный актин), отмечаются к 21-м суткам эксперимента.
Заключение. Экспериментальная модель односторонней обструкции мочеточника выявила трансформацию фенотипа клеток канальцев нефрона от эпителиального к мезенхимальному.

Ключевые слова

экспериментальная модель
односторонняя непроходимость мочеточника
обструктивная уропатия
эпителиально-мезенхимальный переход
иммунофенотипирование

Введение. Десять процентов населения мира страдают хронической болезнью почек [1], при этом нарушения проходимости мочеточника остаются одной из наиболее частых причин их развития. Широкая распространенность и рецидивирующий характер болезней почек определили основное направление научных исследований, нацеленное на понимание механизмов, лежащих в основе развития фиброзного процесса при повреждении почки [2].

В настоящее время в качестве одного из ведущих путей прогрессирования хронических болезней почек рассматривается эпителиально-мезенхимальный переход (ЭМП) как отражение морфофункциональной пластичности дифференцировки эпителия [3]. ЭМП – это уникальный биологический процесс, который включает четкое молекулярное перепрограммирование и фенотипические изменения, характеризующиеся трансформацией поляризованных эпителиальных клеток в рассеянные мезенхимальные клетки, что приводит к увеличению их подвижности [4–9]. Как известно, эпителиальные клетки тесно взаимосвязаны, что препятствует их возможной миграции из эпителиального слоя. Мезенхимальные клетки не образуют клеточных слоев или комплексов межклеточной адгезии, удлиненная форма и сквозная полярность мезенхимальных клеток способствуют их миграционной способности. В связи с этим эпителиальные клетки, подвергшиеся ЭМП, приобретают фибробластический характер и утрачивают свои функции [10].

Понимание происхождения миофибробластов в почках представляет большой интерес, так как эти клетки ответственны за образование рубцов при фиброзе почечной ткани [11–12]. В физиологических условиях масса миофибробластов накапливается в местах продолжающегося воспаления и репарации. В таких условиях миофибробласты действуют как репаративные клетки, производят, организуют внеклеточный матрикс и восстанавливают целостность тканей после повреждения [13]. Однако при патологическом рубцевании активированные фибробласты создают богатый коллагеном жесткий рубец, который нарушает структуру тканей, изменяет биохимическое и биофизическое микроокружение, что приводит к дисфункции ткани [14]. Есть данные, согласно которым одним из путей появления активированных фибробластов из эпителиальных клеток служит ЭМП [15]. Механизмы, лежащие в основе регенеративной способности почек, также служат предметом дискуссий, и в качестве одного из таких механизмов рассматривается ЭМП [16–18]. В связи с этим актуальность приобретают исследования динамики изменений эпителия отделов нефрона при обструктивной уропатии как наиболее часто встречаемой из заболеваний верхних мочевыводящих путей. Модель с односторонней непроходимостью мочеточника (ОНМ) позволяет быстро добиваться терминальной стадии процесса [19].

Цель нашего исследования – изучить в динамике изменения фенотипа эпителиальных клеток нефрона обструктивной почки при односторонней непроходимости мочеточника на экспериментальной модели.

Материалы и методы. Содержание, питание, уход за животными и выведение из эксперимента осуществляли в соответствии с нормативными документами по работе с лабораторными животными в ЦНИЛ РостГМУ. Исследования были разрешены локальным независимым этическим комитетом (протокол № 21/15 от 10.12.2015). Экспериментальная модель ОНМ на 24 взрослых кроликах (самцы в возрасте 3,5 мес. весом 2,4–2,75 кг) воспроизведена по методике E. Giamarellors-Bourbalis et al. [20]. Животные были разделены на 4 группы по 6 животных в каждой: одна контрольная и три экспериментальные в зависимости от сроков механической обструкции (7-е, 14-е и 21-е сутки). Образцы ткани почек для световой микроскопии и иммуногистохимического исследования фиксировали 10%-ным забуференным нейтральным формалином и заключали в парафин по классической методике [21].

Иммунофенотипирование образцов ткани почки, полученных в эксперименте, проводили на маркеры эпителиального фенотипа (цитокератин-7 [СК7] и Е-кадгерин) и мезенхимального фенотипа (виментин [Vim], гладкомышечный актин [α-SMA]). Использовали первичные моноклональные мышиные антитела: Anti-Cytoceratin-7 (Abcam 9021, USA, разведение 1:200), Anti-Е-cadgerin (Abcam 233766, USA, разведение 1:150), Vimentin antibody (Biorbyt 317381, United Kingdom, разведение 1:200), Smooth Muscle Actin antibody (Biorbyt 334169, United Kingdom, разведение 1:250). Для визуализации образовавшихся комплексов антиген-антитело применяли систему детекции EnVision FLEX (Dako, Дания).

Микроскопию и фотосьемку образцов осуществляли на автоматической системе со светодиодной подсветкой Leica DM4000 B LED (Германия). Результаты ИГХ-реакций оценивали по интенсивности окрашивания каждого из маркеров.

Результаты. С 7-х по 21-е сутки происходило прогрессивное снижение цитоплазматического окрашивания СК7 эпителиальных клеток проксимальных, дистальных канальцев и собирательных трубочек. Таким образом, первые признаки изменения фенотипа эпителиальных клеток нефрона имели место уже на седьмые сутки полной ОНМ. К 14-м суткам ОНМ определялось увеличение просвета собирательных трубочек и канальцев нефрона. К 21-м суткам большая часть просвета канальцев была значительно эктазирована, выстлана резко уплощенным эпителием, слабоокрашенным СК7.

Визуализация E-кадгерина, который относится к кальций-зависимым белкам клеточной адгезии и вовлечен в механизмы регулировки межклеточной адгезии, клеточной подвижности и пролиферации эпителиальных клеток, также снижалась в ходе эксперимента, однако экспрессия маркера была более выраженной в эпителии дистальных извитых канальцев и собирательных трубочек и слабо выражена в эпителии проксимальных извитых канальцев (рис. 1). Уменьшение количества белка Е-кадгерина в эпителии канальцев нефрона по ходу эксперимента привело к диссоциации эпителиальных клеток за счет ослабления межклеточных контактов.

48-1.jpg (240 KB)

Исследование маркера ранних этапов ЭМП – виментина, который обеспечивает прочность клеток и их устойчивость к механическому стрессу [23], установило, что с увеличением срока ОНМ регистрировалось значительное возрастание числа виментин-позитивных клеток, что подтверждает прогрессирование фиброза интерстиция почки.

Начиная с 7-х суток ОНМ в дистальных извитых канальцах и капсуле клубочка регистрировалось появление актинового белка α-SMA, который является маркером мезенхимального фенотипа (рис. 2 А). С увеличением срока обструкции наблюдалось увеличение количества α-SMA-позитивных клеток, что свидетельствует об усилении синтеза цитоскелетных белков и дисфункции эпителиальных клеток (рис. 2 Б).

49-2.jpg (233 KB)

Таким образом, уже к 14-м суткам ОНМ имел место еще один признак ЭМП: переход от цитокератиновых промежуточных филаментов к виментиновым. Одновременное наличие маркеров как эпителиального, так и мезенхимального фенотипов в нефронах обструктивной почки указывает на возможность обратимости процессов при устранении повреждающего фактора. Но к 21-м суткам ОНМ регистрировались грубые структурные изменения в нефронах пораженной почки: эктазия просвета канальцев, уплощение эпителия, в дистальных канальцах – кистозная или псевдокистозная трансформация с резкой атрофией эпителиоцитов. В интерстиции, в зонах развития крупных участков межуточного фиброза, преобладали клетки, экспрессирующие Vim и α-SMA.

Обсуждение. Физиологическая адаптация нефрона для поддержания гомеостаза при ОНМ выражается в изменении размеров отделов нефрона, ограничении эффективной площади поверхности для реабсорбции и в изменении длины канальцев, создающих сопротивление потоку образующейся мочи. Есть данные об изменениях в проксимальных канальцах при остром повреждении почек и прогрессировании болезни почек [25]. Переход гипертрофированных нефронов к атрофии и фиброзу уже неадаптивный, если рассматривать его как отклонение от оптимального гомеостатического ответа [26]. Изучение вариаций гено- и фенотипа нефронов при ОНМ дает новое понимание восприимчивости их к нагрузкам на протяжении периода заболевания.

Хроническая обструктивная уропатия, вызванная длительной ОНМ у кролика, морфологически характеризуется интерстициальным фиброзом и эктазией канальцев. Повреждение эпителия приводит к нарушению межклеточных связей как между самими клетками, так и с базальной мембраной, что ведет к нарушению межклеточного взаимодействия, межклеточного транспорта и незащищенности клеток от механического напряжения.

По результатам нашего исследования, первые признаки ЭМП проявились к 7-м суткам в виде снижения визуализации маркеров эпителиального фенотипа с сохранением функций нефрона. К 14-м суткам имела место полномасштабная перестройка морфофункциональных свойств эпителиальных клеток нефрона обструктивной почки. К этому сроку в почечных канальцах отмечалась визуализация маркеров как эпителиального (СК7, Е-кадгерин), так и мезенхимального (α-SMA и Vim) типа, что говорит об активной конверсии эпителиальных клеток почечных канальцев в виде ЭМП, которые становятся значительным источником миофибробластов при фиброзных изменениях в почках. Прогрессирующий характер перехода эпителиоцитов в клетки мезенхимы определялся к 21-м суткам, что подтверждалось практически полной потерей эпителиальных маркеров и приобретением мезенхимальных маркеров.

С учетом полученных нами результатов исследования можно говорить о том, что длительная ОНМ провоцирует активацию апоптоза и атрофию эпителия или приводит к ЭМП с изменением фенотипа не только клеток нефрона, но и интерстиция. При иммунофенотипировании ткани обструктивной почки имеют место следующие молекулярно-биологические изменения, подтверждающие активное ремоделирование эпителия: 1) снижение визуализации молекул и структур, определяющих эпителиальный фенотип – Е-кадгерина (белка межклеточной адгезии) и СК7 (белка цитоскелета); 2) появление и визуализацию структур, определяющих мезенхимальный фенотип, – белков цитоскелета (Vim, α-SMA). Визуализация в зонах фиброза α-SMA и Vim указывает на повышение количества мезенхимальных клеток (фибробластов) в ходе эксперимента, что в итоге заканчивается дисфункцией почечной ткани.

Заключение. Таким образом, экспериментальная модель односторонней обструкции мочеточника выявила трансформацию фенотипа клеток канальцев нефрона от эпителиального к мезенхимальному.

Несмотря на массу работ о роли перехода от эпителия к мезенхиме в патогенезе заболеваний почек, в последнее десятилетие произошла революция в нашем понимании о пластичности клеток почки. Однако вопрос о роли и степени участия ЭМП в фиброзе почек на сегодня остается до конца неясным. Понимание данного механизма может пролить свет еще на одно звено в патогенезе этого процесса. Изучение ранних молекулярно-биологических маркеров ЭМП открывает перспективы для развития таргетной терапии фиброза почки.

Список литературы

1. Chronic kidney disease surveillance system website. Centers for Disease Control and Prevention. Accessed March 9, 2017 http://www.cdc.gov/ckd

2. Tomilina N.A. Mechanisms of nephrosclerosis and pharmacological inhibition of the intrarenal renin-angiotensin system as the basis of a nephroprotective strategy in chronic diseases of native kidneys and kidney transplant. Nephrology and dialysis. 2004;6(3):226–234. Russian. (Томилина Н.А. Механизмы нефросклероза и фармакологическая ингибиция внутрипочечной ренин-ангиотензиновой системы как основа нефропротективной стратегии при хронических заболеваниях нативных почек и почечного трансплантата. Нефрология и диализ. 2004;6(3):226–234).

3. Kramann R., Kusaba T., Humphreys B.D. Who regenerates the kidney tubule? Nephrol. Dial. Transplant. 2015; 30: 903–910. Doi: 10.1093/ndt/gfu281.

4. Burns W.C., Kantharidis P., Thomas M.C. The role of tubular epithelial-mesenchymal transition in progressive kidney disease. Cells Tissues Organs. 2007;185:222–231. Doi: 10.1159/000101323.

5. Chiara L., Crean J. Emerging Transcriptional Mechanisms in the Regulation of Epithelial to Mesenchymal Transition and Cellular Plasticity in the Kidney. J Clin Med. 2016;12:51–64. Doi: 10.3390/jcm5010006.

6. Hertig A., Anglicheau D., Verine J., Pallet N., Touzot M., Ancel P., Mesnard L., Brousse N., Baugey E., Glotz D., Legendre C., Rondeau E., Xu-Dubois Y. Early epithelial phenotypic changes predict graft fibrosis. J Am. Soc. Nephrol. 2008;19:1584–1591. Doi: 10.1681/ASN.2007101160.

7. Lee K., Nelson C.M. New insights into the regulation of epithelial-mesenchymal transition and tissue fibrosis. Int. Rev. Cell Mol. Biol. 2012; 294: 171– 221. Doi: 10.1016/B978-0-12-394305-7.00004-5.

8. Teng Y., Zeisberg M., Kalluri R. Transcriptional regulation of epithelial-mesenchymal transition. J Clin. Invest.2007;117:304–306. Doi: 10.1172/JCI31200.

9. Zeisberg M., Kalluri R. Cellular mechanisms of tissue fibrosis. 1. Common and organ-specivic mechanisms associated with tissue fibrosis. Am J Physiol Cell Physiol. 2013;304:216–225. Doi: 10.1152/ajpcell.00328.2012.

10. Srivastava S.P., Koya D., Kanasaki K. MicroRNAs in kidney fibrosis and diabetic nephropathy: roles on EMT and EndMT. Biomed Res Int. 2013;12:54–69. Doi: 10.1155/2013/125469

11. Barnes J.L., Glass W.F. Renal interstitial fibrosis: a critical evaluation of the origin of myofibroblasts. Contrib Nephrol. 2011;169:73–93. Doi: 10.1159/000313946.

12. Grgic I., Duffield J.S., Humphreys B.D. The origin of interstitial myofibroblasts in chronic kidney disease. Pediatr Nephrol. 2012;27(2):183–193. Doi: 10.1007/s00467-011-1772-6.

13. Gabbiani G. The myofibroblast in wound healing and fibrocontractive diseases J. Pathol. 2003;200:500–503.

14. Hinz B. Tissue stiffness, latent TGF-beta1 activation, and mechanical signal transduction: implications for the pathogenesis and treatment of fibrosis. Curr. Rheumatol. Rep. 2009;11:120–126. Doi: 10.1007/s00467-011-1772-6.

15. Srivastava S.P., Hedayat A.F., Kanasaki K., Goodwin J. microRNA Crosstalk Influences Epithelial-to-Mesenchymal, Endothelial-to-Mesenchymal, and Macrophage-to-Mesenchymal Transitions in the Kidney. Front Pharmacol. 2019;10:1–14. Doi: 10.3389/fphar.2019.00904.

16. Zambon J.P., Magalhaes R.S., Ko I., Ross C.L., Orlando G., Peloso A., Atala A., Yoo J.J.. Kidney regeneration: Where we are and future perspectives. World J. Nephrol. 2014;3:24–30. Doi: 10.5527/wjn.v3.i3.24.

17. Kramann R., Kusaba T., Humphreys B.D. Who regenerates the kidney tubule? Nephrol. Dial. Transplant. 2015;30:903–910.

18. Sergio M., Galarreta C.I., Thornhill B.A., Forbes M.S., Chevalier R.L. The Fate of Nephrons in Congenital Obstructive Nephropathy: Adult Recovery is Limited by Nephron Number Despite Early Release of Obstruction. J Urol. 2015;194:1463–1472. Doi: 10.1016/j.juro.2015.04.078.

19. Schmiedt C.W., Brainard B.M., Hinson W., Brown S.A., Brown C.A. Unilateral Renal Ischemia as a Model of Acute Kidney Injury and Renal Fibrosis in Cats. Vet Pathol. 2016;53:87–101. Doi: 10.1177/0300985815600500.

20. Giamarellos-Bourboulis E.J., Adamis T., Laoutaris G., Sabracos L., Koussoulas V., Mouktaroudi M., Perrea D., Karayannacos P.E., Giamarellou H. Immunomodulatory clarithromycin treatment of experimental sepsis and acute pyelonephritis caused by multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2004;48:93–99. Doi: 10.1128/aac.48.1.93-99.2004.

21. Petrov S.V., Raikhlin N.T. Guidance on immunohistochemical diagnosis of human tumors. Kazan. 2004; 456 p. Russian. (Петров С.В., Райхлин Н.Т. Руководство по иммуногистохимической диагностике опухолей человека. Казань. 2004;456).

22. Galishon P., Gertig A., Trofimenko I.I. Epithelial-mesenchymal transformation as a biomarker of renal fibrosis: are we ready to apply theoretical knowledge in practice? Nephrology. 2013;17(4):9–16. Doi: 10.24884/1561-6274-2013-17-4-9-16. Russian. (Галишон П., Гертиг А., Трофименко И. И. Эпителиально-мезенхимальная трансформация как биомаркер почечного фиброза: готовы ли мы применить теоретические знания на практике? Нефрология. 2013;17(4):9–16. Doi: 10.24884/1561-6274-2013-17-4-9-16).

23. Chiara L., Crean J. Emerging Transcriptional Mechanisms in the Regulation of Epithelial to Mesenchymal Transition and Cellular Plasticity in the Kidney. J Clin Med. 2016;12:51–64. Doi: 10.3390/jcm5010006.

24. Korzhevsky D.E., Kirik O.V. Intermediate filament proteins nestin and vimentin in rat kidney cells. Morphology. 2008;58:50–55. Russian. (Коржевский Д.Э., Кирик О.В. Белки промежуточных филаментов нестин и виментин в клетках почки крысы. Морфология. 2008;58:50–55).

25. Chevalier R.L. The proximal tubule is the primary target of injury and progression of kidney disease: role of the glomerulotubular junction. Am J Physiol Renal Physiol. 2016;311:145–161. Doi:10.1152/ajprenal.00164.2016.

26. Chevalier R.L. Evolution, Kidney Development, and Chronic Kidney Disease. Semin Cell Dev Biol. 2019;91:119–131. Doi: 10.1016/j.semcdb.2018.05.024.

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: М. А. Акименко – аспирант кафедры медицинской биологии и генетики ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет», Ростов-на-Дону, Россия; e-mail: akimenkoma@yandex.ru

Также по теме