ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Прогностическая значимость уровня противовирусных антител в развитии рецидива рака мочевого пузыря

И.В. Косова, О.Б. Лоран, Л.А. Синякова, Л.В. Гундорова, В.А. Косов, И.Е. Погодина, Д.Н. Колбасов

ˡ Кафедра урологии и хирургической андрологии РМАНПО (зав. каф. – академик РАН, д.м.н., проф. О. Б. Лоран), Москва, Россия; 2 урологическое отделение и 3 патологоанатомическое отделение ГБУЗ «ГКБ им. В. П. Демихова» ДЗМ (гл. врач – д.м.н., проф. О. Б. Переходов), Москва, Россия; 4 Коми республиканский онкологический диспансер (гл. врач – А. Н. Соколов), Сыктывкар, Россия; 5 Вологодская областная клиническая больница № 2 (гл. врач – д.м.н. А. Г. Пулин) г. Череповец, Россия
Введение: Серологическая диагностика вирус-ассоциированных опухолей привлекает внимание многих специалистов. Доказано изменение уровня противовирусных антител при опухолях различных локализаций. В ряде случаев авторы предлагают использовать эти данные с целью как скрининга возникновения неоплазм, так и контроля излеченности.
Цель: оценить прогностическую значимость уровня противовирусных антител в развитии рецидива рака мочевого пузыря.
Материалы и методы. Проведено пилотное исследование определения уровня противовирусных антител (IgG, M) к вирусу Эпштейна–Барр (ВЭБ), вирусу простого герпеса (ВПГ) 1-го и 2-го типов, цитомегаловирусу (ЦМВ) у 100 пациентов, страдавших раком мочевого пузыря (72 мужчины и 28 женщин) в возрасте от 38 до 90 лет (средний возраст – 65±10 лет). Выполнен многофакторный анализ, статистический анализ с построением дерева классификаций. В качестве зависимой переменной был взят показатель наличия рецидива опухолевого процесса.
Результаты. У пациентов с рецидивным характером опухоли имело место повышение уровня анти-ЦМВ IgG (616,5±501,46 ЕД/мл против 339,06±306,61; p=0,0017) и анти-ВЭБ IgG-EBNA (246,7±207 ЕД/мл против 141,5±163,7; p=0,0118). В результате построения дерева классификаций были отобраны показатели анти-ЦМВ IgG, анти-ВЭБ IgG-EBNA, стадия процесса и наличие ДНК ЦМВ в опухолевой ткани, при которых были правильно классифицированы 20 из 24 с рецидивом, 58 из 72 без рецидива. Наиболее значимыми показателями оказались уровни анти-ЦМВ IgG (100%), анти-ВЭБ IgG-EBNA (78%) и стадия процесса (50%). Чувствительность метода составила 83,33%, специфичность – 80,56%, положительное прогностическое значение (вероятность обнаружения болезни у лиц с положительным результатом теста) – 58,82%, отрицательное прогностическое значение (вероятность отсутствия болезни у лиц с отрицательным результатом теста) – 93,55%, точность – 81,25%. Проведен многофакторный анализ (бинарная логистическая регрессия) и получена достоверная модель (χ2=22,438, p=0,00043), в которую вошли следующие параметры: анти-ЦМВ IgG более 670 ЕД/мл, анти-ВЭБ IgG-EBNA более 130, степень анаплазии, наличие ДНК ЦМВ и ВЭБ в опухолевой ткани. На основании полученного регрессионного уравнения проведена проверка точности прогнозирования рецидива опухолевого процесса, в результате которой получены достаточно высокие предсказательные результаты: специфичность – 95,2%, чувствительность – 33,3%.
Заключение. Уровень анти-ЦМВ IgG более 670 ЕД/мл, анти-ВЭБ IgG-EBNA. И более 130 ЕД/мл служат достоверным прогностическим критерием развития рецидива рака мочевого пузыря.

Ключевые слова

рак мочевого пузыря
вирус Эпштейна–Барр (ВЭБ)
цитомегаловирус (ЦМВ)
анти-ЦМВ IgG
анти-ВЭБ IgG-EBNA

Введение. Семейство герпесвирусов (Herpesviridae) объединяет пантропность к органам и тканям, пожизненная персистентность и способность вызывать многообразные манифестные формы заболевания. После внедрения вирусы герпеса персистируют в организме человека пожизненно в виде латентной инфекции и могут под влиянием ослабляющих факторов (грипп, СПИД и др.) реактивироваться с образованием новых вирусов, вызывая клинически выраженные формы болезни с развитием вторичной иммунологической недостаточности [1]. В процессе репликации вируса Эпштейна–Барр (ВЭБ) или вируса герпеса 4-го типа экспрессируется свыше 70 различных вирусспецифических белков, при этом к настоящему времени выделены группы иммуногенных белков, определение антител к которым дает возможность дифференцировать стадию инфекции: EA (еarly antigen) – ранний антиген, включает белки p54, p138; EBNA-1 (Epstein–Barr nuclear antigen) – ядерный антиген, белок p72; VCA (Viral capsid antigen) – капсидный антиген, включает комплекс белков p150, p18, p23; к настоящему времени показано, что иммунодоминантными белками в этом комплексе являются p18 и p23; LMP (Latent membrane protein) – латентный мембранный белок gp 125 [2–4]. Серологическая диагностика вирус-ассоциированных опухолей привлекает внимание многих специалистов [5–7]. Изначально первичная причинно-следственная связь между вирусом Эпштейна–Барр (ВЭБ) и лимфомой Беркитта подтверждена именно повышенным уровнем антител к антигенам ВЭБ, присутствующим у пациентов с лимфомой Беркитта [7]. Возможность ранней диагностики онкологических заболеваний, способность прогнозирования риска прогрессирования и рецидива опухолевого процесса, а также контроля излеченности по уровню противовирусных антител открывают перспективы использования неинвазивных и экономически выгодных методов как диагностики, так и контроля лечения вирус-ассоциированных неоплазм. Ранее в наших работах мы уже говорили о повышении уровня противовирусных антител у больных раком мочевого пузыря [9–11].

Цель исследования: оценить прогностическую значимость уровня противовирусных антител в развитии рецидива рака мочевого пузыря.

Материалы и методы. В пилотном исследовании проведено обследование и лечение 100 больных, страдающих раком мочевого пузыря (72 мужчины и 28 женщин) в возрасте от 38 до 90 лет (средний возраст – 65±10 лет). Интраоперационно выполнен забор ткани опухоли мочевого пузыря с целью выявления вирусов ВПГ 1-го и 2-го типов, вируса папилломы человека (ВПЧ) высокого онкогенного риска, цитомегалловируса (ЦМВ), ВЭБ. Определение вирусных ДНК осуществлено методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени. Исследование проведено полуавтоматическим способом с использованием ПЦР-детекторов CFX-96, Bio-Rad (США) и реактивов Вектор-Бест (Россия), верхний предел определения (с разведением) – 100 копий в пробе. Следует отметить, что из всех проанализированных в работе вирусов только ВПЧ высокого онкогенного риска и ВЭБ онкогенные. У всех пациентов определен уровень противовирусных антител иммуноферментным методом к ВПГ 1-го и 2-го типов, ЦМВ, ВЭБ. Материалом для иммуногистохимического исследования послужил биопсийный и операционный материалы от 32 пациентов с верифицированной опухолью мочевого пузыря. Из них у 21 больного выявлено наличие вирусных ДНК (ЦМВ, ВЭБ, ВПГ 1-го и 2-го типов, ВПЧ высокого онкогенного риска) в опухолевой ткани, в 11 случаях вирусных ДНК выявлено не было.

Операционный материал фиксировали в 1%-ном растворе нейтрального формалина и заливали в парафин. Срезы толщиной 5 мкм, окрашенные гематоксилином и эозином, были подвергнуты обзорному морфологическому анализу, при котором стадию рака определяли в соответствии с классификацией TNM, степень дифференцировки опухолевых клеток оценивали в соответствии с рекомендациями ВОЗ от 1973 г. Микроскопическое изучение препаратов проведено с применением бинокулярного микроскопа с фотоприставкой Axio Zeis при 400-кратном увеличении. Иммуногистохимическое исследование выполнено на серийных парафиновых срезах 5 мкм путем стрептавидинбиотинового метода. В качестве детекционной системы использовано 6 маркеров. Определены следующие показатели: маркер пролиферативной активности Ki67 (sp6), маркер супрессора опухолевого роста Bcl-2 (D07), p53 (124), маркер ангиогенеза CD31 (sp164), маркер адгезии CD44 (spm521), ростовой фактор EGFR (sp84) (Spring Bioscience).

Интенсивность реакций с антигенами, локализованными на мембранах клеток и внутриклеточных мембранах (CD44, CD31, EFGR и Bcl-2), оценена полуколичественным способом по балльной шкале от 0 до 3 с учетом выраженности реакции и ее локализации: 0 – отсутствие реакции, 1 – слабая реакция, 2 – умеренная реакция, 3 – сильная реакция. Результаты реакции с антигенами, имевшими ядерную локализацию (Кi67, р63), оценивали по системе подсчета histochemical score, включающей интенсивность иммуногистохимической окраски по 3-балльной шкале и долю (%) окрашенных клеток и представляющей сумму произведений процентов, отражающих долю клеток с различной интенсивностью окраски на балл, соответствующий интенсивности реакции. Интенсивность окраски: 0 – нет окрашивания, 1 – слабое окрашивание, 2 – умеренное окрашивание, 3 – сильное окрашивание.

С целью определения прогностической значимости уровня противовирусных антител в развитии рецидива рака мочевого пузыря в качестве статистического анализа использованы деревья классификации (дерево решений – CHAID). Этот метод позволяет предсказывать принадлежность наблюдений или объектов к тому или иному классу категориальной зависимой переменной в зависимости от соответствующих значений одной или нескольких предикторных переменных. Деревья решений – мощное средство для классификации и прогнозирования. Преимуществом деревьев решений является то, что они могут быть выведены графически, что делает их удобными для восприятия. Цель построения деревьев классификации заключается в предсказании (или объяснении) значений категориальной зависимой переменной.

Для исследования влияния нескольких независимых переменных на одну зависимую переменную использовали одномерный дискриминантный анализ – метод бинарного логистического регресса. При этом независимые переменные могут иметь любой вид шкалы (количественные, порядковые, дихотомические). Для оценки характера и степени влияния различных факторов на риск возникновения рецидивов у пациентов был использован метод бинарной логистической регрессии. Вероятность наступления события для некоторого случая рассчитывается по формуле z= b0+ b1 ∙ X1 + b2 ∙ Х2 + ... + bn ∙ Xn, где X – значения независимых переменных; bi – коэффициенты, расчет которых является задачей бинарной логистической регрессии; b0 – некоторая константа.

В качестве зависимой переменной (переменной отклика) был взят показатель наличия рецидивов. В ходе построения математической модели проведен многофакторный анализ возможного влияния на зависимую переменную следующих факторов: возраста пациентов, пола, стадии заболевания, степени анаплазии, характера поражения; наличие рецидивов, уровня противовирусных антител, наличия вирусных ДНК в опухолевой ткани. При построении математической модели проведен поэтапный анализ влияния вышеперечисленных показателей на наличие рецидивов. В результате данного анализа в модели остались только независимые факторы, достоверно влияющие на возникновение рецидива (p<0,05). Группе пациентов с наличием рецидива присвоена кодировка 1, без рецидива – 0. С помощью полученных коэффициентов уравнения бинарной логистической регрессии для каждого пациента рассчитывается вероятность принадлежности к той или иной группе. Принадлежность к группе с негативным прогнозом приняли при р>0,5, к группе с положительным прогнозом – при р<0,5.

С помощью метода ранговой корреляции Спирмена определены параметры, влияющие на возникновение рецидивов. Для исключения зависимых между собой факторов проведен корреляционный анализ Пирсона или Спирмена в зависимости от вида исследуемых показателей.

Результаты. У пациентов с рецидивным характером опухолевого роста имело место статистически значимое повышение средних показателей уровня анти-ЦМВ IgG – 616,5±501,46 ЕД/мл против 339,06±306,61 (p=0,0017; рис. 1, 2).

При этом уровень анти-ЦМВ IgG у пациентов с наличием вирусных ДНК в опухолевой ткани был значительно выше, чем при их отсутствии (см. рис. 1).

Статистически значимые результаты мы получили и для уровня нуклеарных антител к ВЭБ: 141,5±163,7 ЕД/мл у пациентов с первичной опухолью против 246,7±207 у пациентов с наличием рецидива (р<0,05) (рис. 2).

В связи с этим с целью прогнозирования рецидива опухоли мочевого пузыря нами использован метод построения деревьев классификации с использованием опции CART (Classification And Regression Trees), которая при построении дерева осуществляет полный перебор всех возможных вариантов одномерного ветвления. Матрица классификаций для тестовой выборки показывает число случаев, классифицированных верно, и тех, которые были классифицированы неправильно, т.е. отнесены к другой категории.

Выделено два класса: наличие (n=24) и отсутствие (n=72) рецидива. В результате анализа получена модель с пятью условиями разделения (split) на ветви и 6 узлами (node), т.е. последним делением (красные квадратики, рис. 3).

В результате анализа отобраны показатели анти-ЦМВ IgG, анти-ВЭБ IgG-EBNA, стадия процесса и наличие ДНК ЦМВ в опухолевой ткани, при которых были правильно классифицированы 20 из 24 с рецидивом, 58 из 72 без рецидива. Данные по чувствительности и специфичности метода представлены в табл. 1.

На основании дерева классификаций в табл. 2 представлены прогностические критерии развития рецидива рака мочевого пузыря: уровни анти-ЦМВ IgG, анти-ВЭБ IgG- EBNA, наличие ДНК ЦМВ в опухолевой ткани и стадия процесса. Наиболее прогностически значимыми показателями в отношении риска рецидива опухоли мочевого пузыря все-таки являются уровни анти-ЦМВ IgG (100%) и анти-ВЭБ IgG-EBNA (78%).

Нами был проведен многофакторный анализ (бинарная логистическая регрессия) и получена достоверная модель (χ2=22,438, p=0,00043), в которую вошли следующие факторы, влияющие на развитие рецидива опухоли мочевого пузыря (табл. 2).

На основании полученного регрессионного уравнения проведена проверка, в результате которой получены достаточно высокие предсказательные результаты: специфичность – 95,2%, чувствительность – 33,3% (табл. 3, 4)

В целом, если рассматривать группы пациентов с наличием или отсутствием вирусных ДНК в опухолевой ткани, то, как продемонстрировано в табл. 5, в ряде случаев уровень противовирусных антител статистически значимо выше в первой группе, нежели во второй. В частности, на рис. 4 представлено соотношение уровня нуклеарных антител в зависимости от степени анаплазии у больных с наличием и отсутствием ДНК ЦМВ в опухолевой ткани.

В ходе анализа коррелятивных связей уровня противовирусных антител и факторов апоптоза, неоангиогенеза, пролиферативной активности опухоли, факторов роста, выявлено, что уровень антител к ЦМВ не коррелирует с пролиферативной активностью опухоли (рис. 5) и степенью апоптоза, а также имеет обратную зависимость.

В то же время уровень нуклеарных антител к ВЭБ (рис. 6) с высокой степенью соотносится с метастатическим потенциалом опухоли у пациентов как с наличием вирусных ДНК в опухолевой ткани, так и в общей группе. Следует отметить наличие положительных высоких, статистически достоверных коррелятивных связей между уровнем капсидных антител к ВЭБ и факторами роста (EGFR), а также пролиферативной активностью опухоли. Сводные данные представлены в табл. 6 у пациентов как с наличием вирусных ДНК в опухолевой ткани, так и в общей группе.

Следует отметить, что высокие коррелятивные связи мы получили между уровнем капсидных антител к ВЭБ и факторами роста как у пациентов с наличием вирусных ДНК в опухолевой ткани, так и в группе в целом. Такая же ситуация наблюдается и при повышении уровня нуклеарных антител и маркера адгезии CD44. Однако уровень корреляционных взаимоотношений выше именно при наличии вирусного агента в опухолевой ткани. Что касается факторов ангиогенеза, то статистически значимые коррелятивные связи получены только от пациентов с наличием вирусных ДНК в опухолевой ткани. Отдельно хотелось отметить обратные коррелятивные связи между уровнями пролиферации и нуклеарных антител. На наш взгляд, это связано с тем, что у ряда пациентов с хронической герпес-вирусной инфекцией или иммуносупрессивных больных нуклеарные антитела могут не определяться или сохраняться на низком уровне [12, 13]. После реактивации персистирующей ВЭБ-инфекции определяются повышенные титры анти-ВЭБ IgG-VCA, тогда как уровень нуклеарных антител может снижаться [13, 14].

Ранее в наших работах мы указывали, что у 6 пациентов с инцидентальным раком предстательной железы имело место повышение уровня анти-ВЭБ IgG-VCA (612,5±214,5 ЕД/мл против 372,8±218,1; p=0,03) и уровня анти-ВЭБ IgG-ЕA (38,7±54,9 ЕД/мл против 11,4±23; p=0,0008) при сравнимых уровнях ПСА (4,9 и 4,4 нг/мл) и объеме простаты (69,3 и 77,4 мл) по сравнению с уровнем антител у пациентов с ДГПЖ [15]. Повышение значений противовирусных антител свидетельствует о реактивации ВЭБ-инфекции.

Рецептор эпидермального фактора роста EGFR (HER1) играет важную роль в пролиферации эпителиальных клеток. Белок EGFR имеет тирозинкиназную активность, необходимую для передачи сигнала при его активации. Активация механизмов с участием EGFR приводит к усилению пролиферативной активности опухолевых клеток, неоангиогенезу, замедлению апоптоза, более раннему появлению метастазов [16]. С учетом высоких коррелятивных связей уровня капсидного антигена и факторов роста у пациентов с наличием новобразований мочевого пузыря вполне возможно, что именно реактивация герпес-вирусной инфекции приводит к развитию вторичной иммунологической недостаточности и опухолевого процесса при сопоставимых показателях ПСА за счет активации ростовых факторов у пациентов, страдающих раком предстательной железы.

Обсуждение. В настоящее время появляется все больше работ, посвященных серологической диагностике ВЭБ-ассоциированных неоплазм [5–8]. При этом предлагается использовать уровень противовирусных антител в качестве как скрининга в общей популяции, так и контроля излеченности [17, 18]. У пациентов с наличием ВЭБ-ассоциированной назофарингеальной карциномы выявлено повышение уровня определенных ВЭБ-антител. С учетом эндемичности поражения назофаринегальной карциномой (Южный Китай) выделяют как генетически обусловленные факторы, так и факторы окружающей среды, выступающие как ко-факторы развития вирусиндуцированного рака, такие как соленая рыба, растительные медикаментозные препараты, курение, злоупотребление алкоголем и др., влияющие на исход ВЭБ-инфекции [19]. R. Shinkura et al. [20] в своей работе, посвященной изучению противовирусных антител у больных назофаренгиальной карциномой, указывают на реактивацию ВЭБ-инфекции при наличии ДНК ВЭБ в опухолевой ткани. A. Tamada et al. [21] говорят: после излечения карциномы титр антител снижается до нормальных показателей через 6–18 мес., тогда как у пациентов, рефрактерных к комбинированной терапии (лучевой, химиотерапии, хирургическому лечению), титр антител остается высоким. В мета-анализе [22], посвященном диагностической ценности определения уровня анти-ВЭБ IgA-VCA, указано на целесообразность определения не только этого маркера, но и других серологических маркеров ВЭБ-инфекции у больных назофаренгиальной карциномой. Аналогичного мнения придерживаются Cui Xia et al. [17]. Авторы говорят о комплексном диагностическом подходе использования серологических маркеров (SA, Rta-IgG, EA-IgA, VCA-IgA) ВЭБ-инфекции не только в качестве скрининга общей популяции, но и с целью мониторинга прогрессирования опухолевого процесса. Y. Li et al. [18] предлагают определение уровня VCA-IgA, Rta-IgA, EA-IgA, и ДНК ВЭБ в качестве комбинированного метода диагностики назофарингеальной карциномы.

При обследовании пациентов с ларингеальными опухолями (n=28) выявлено повышение уровней анти-ВЭБ IgG-VCA и анти-ВЭБ IgG-EBNA, однако разница с уровнем вышеуказанных антител у пациентов контрольной группы (n=18) была статистически не значимой. Ни в одном случае повышения уровня белков острой фазы выявлено не было. При этом у пациентов с N0 уровни антител были значительно выше, чем у пациентов с N1–N3. Авторы делают вывод о возможном влиянии ВЭБ на канцерогенез рака носоглотки [23].

María G. Cárdenas-Mondragón et al. указывают на высокие корреляционные связи между повышенными титрами анти-ВЭБ IgG-VCA и риском развития рака желудка (интестинального типа) у взрослых и развития выраженных гастритов у детей [24, 25]. Кроме того, у пациентов с высокими титрами антител к ВЭБ и H. pylori имело место повышение уровня клеточной иммунной инфильтрации и риска развития системной воспалительной реакции, что в свою очередь подчеркивает ко-факторную роль ВЭБ как триггера развития воспаления слизистой желудка. Авторами выявлен высокий уровень IFN-γ у пациентов, страдающих раком желудка, с повышенным уровнем анти-ВЭБ IgG-VCA [26].

Другие авторы выявили наличие вирусного генома ВЭБ у 43% женщин, страдавших раком молочной железы, при этом имело место повышение титров анти-ВЭБ IgG VCA+IgG EBNA1 в 87% случаев. В этом исследовании установлена зависимость между ВЭБ-инфекцией и развитием инфильтративной протоковой карциномы (infiltrating ductal carcinomas (IDC) [27].

Как и при неоплазмах других локализаций, мы выявили повышенные уровни капсидных и нуклеарных антител к ВЭБ у больных раком мочевого пузыря (особенно при наличии вирусных ДНК в опухолевой ткани), повышение уровня анти-ЦМВ IgG у пациентов с рецидивным характером опухолевого процесса.

По данным статистического анализа, с высокой степенью достоверности можно говорить о прогностической ценности повышения уровня анти-ЦМВ IgG и анти-ВЭБ IgG-EBNA в развитии рецидива рака мочевого пузыря.

К сожалению, в литературе мы не нашли работ, касающихся коррелятивных связей между повышением уровня антител к ЦМВ и рецидивным характером неоплазм других локализаций. Присутствует указание на онкомодулирующий эффект ЦМВ-инфекции, в частности, при глиобластомах [28]. Последние публикации, касающиеся сочетанной вирусной инфекции при раке желудка, свидетельствуют о частой ко-инфекции ВЭБ и ЦМВ [29, 30], при этом при наличии ЦМВ-инфекции рак желудка статистически значимо развивался на 14 лет раньше, чем у не инфицированных ЦМВ больных [29]. В наших предыдущих работах мы также указывали на возможный онкомодулирующий эффект ЦМВ при раке мочевого пузыря [11] и указывали точки «cut-off» для уровней противовирусных антител в зависимости от стадии процесса, степени анаплазии и рецидивного характера опухоли мочевого пузыря [31].

Что касается иммуногистохимических показателей, то мы получили достоверные высокие коррелятивные связи между уровнем анти-ВЭБ IgG-VCA и экспрессией EGFR, анти-ВЭБ IgG-EBNA и экспрессией CD44 и отрицательные коррелятивные связи между уровнем анти-ЦМВ IgG и маркерами пролиферации. Таким образом, уровень антител к ЦМВ, по всей видимости, не влияет на пролиферативную активность опухоли и степень апоптоза. Тогда как уровень нуклеарных и капсидных антител к ВЭБ с высокой степенью достоверности свидетельствует о повышении метастатического потенциала опухоли у пациентов как с наличием, так и с отсутствием вирусных ДНК в опухолевой ткани.

Таким образом, уровень противовирусных антител отражает риск развития рецидива опухолевого процесса, метастатического потенциала опухоли и при наличии вирусных ДНК в опухолевой ткани – ангиогенеза.

Заключение. В результате проведенной работы установлено: уровни анти-ЦМВ IgG более 670 ЕД/мл, анти-ВЭБ IgG-EBNA более 130 ЕД/мл служат достоверными прогностическими критериями развития рецидива рака мочевого пузыря.

Список литературы

1. Isakov V.A., Arhipova E.I., Isakov D.V. Human herpesviruses. A guide for clinicians. SpB:. Spetslit, 2013. 2-nd edition, revised and enlarged. 670 p.: il. Russian (Исаков В.А., Архипова Е.И., Исаков Д.В. Герпесвирусные инфекции человека. Руководство для врачей. СПб.: СпецЛит, 2013. 2-е изд., перераб. и доп. 670 c.: ил.).

2. Isakov V.A., Arhipova E.I., Isakov D.V. Human herpesviruses. A guide for clinicians. SpB:. Spetslit, 2006. 303 c. Russian (Исаков В.А., Архипова Е.И.,Исаков Д.В. Герпесвирусные инфекции человека. Руководство для врачей. СПб.: СпецЛит, 2006. 303 c.).

3. Osipova L.S. The features of clinical manifestations and treatment of Epstein-Barr virus. Novosti medicini i farmacii. 2011. N 18(387). Russian (Осипова Л.С. Особенности течения и лечения инфекции, вызванной вирусом Эпштейна–Барр. Новости медицины и фармации. 2011.№ 18(387)).

4. Simoviyan E.N., Deniskova V.B., Bovtalo L.F., Grigoryan A.V. Epstein-Barr virus in childrens: the current approaches for the diagnosis and treatmen. Lechashchyi vrach. 2007;7:36–41. Russian (Симовьян Э.Н., Денискова В.Б., Бовтало Л.Ф., Григорян А.В. Эпштейна–Барр вирусная инфекция у детей: современные подходы к диагностике и лечению. Лечащий врач. 2007;7:36–41).

5. Coghill A.E., Hildesheim A. Epstein-Barr virus antibodies and the risk of associated malignancies: review of the literature. American Journal of Epidemiology. 2014;180:687–695. Doi: 10.1093/aje/kwu176.

6. Coghill A.E., Hsu W.L., Pfeiffer R.M. et al. Epstein-Barr virus serology as a potential screening marker for nasopharyngeal carcinoma among high-risk individuals from multiplex families in Taiwan. Cancer Epidemiology, Biomarkers & Prevention. 2014;23:1213–1219. Doi: 10.1158/1055-9965.EPI-13-1262.

7. Cárdenas-Mondragón M.G., Torres J., Flores-Luna L. et al. Case–control study of Epstein–Barr virus and Helicobacter pylori serology in Latin American patients with gastric disease. Br J Cancer. 2015;112:1866–1873. Doi: 10.1038/bjc.2015.175.

8. Bornkamm G.W. Epstein-Barr virus and its role in the pathogenesis of Burkitt’s lymphoma: an unresolved issue. Semin Cancer Biol. 2009;19:351–365.

9. Loran O.B., Sinyakova L.A., Gundorova L.V., Kosov V.A., Kosova I.V., Kolbasov D.N. Viruses: from asymptomatic carrier to oncologic diseases. Uchenie zapiski Orlovskogo gosudarstvennogo universiteta. 2015;4(67). Russian (Лоран О.Б., Синякова Л.А., Гундорова Л.В., Косов В.А., Косова И.В., Колбасов Д.Н. Вирусы: от бессимптомного носительства до онкологических заболеваний. Ученые записки Орловского государственного университета. 2015;4(67)).

10. Loran O.B., Sinyakova L.A., Gundorova L.V., Kosov V.A., Kosova I.V., Kolbasov D.N., Goncharov A.A., Zernov V.O., Candinova Yu.V. The level of antiviral antibodies against Epstein-Barr virus in patients with bladder cancer. Eksperimental’naya i klinicheskaya urologiia. 2015;2:48–51. Russian (Лоран О.Б., Синякова Л.А., Гундорова Л.В., Косов В.А., Косова И.В.,Колбасов Д.Н., Гончаров А.А, Зернов В.О., Кандинова Ю.В.Уровень противовирусных антител к вирусу Эпштейна–Барр у больных раком мочевого пузыря. Экспериментальная и клиническая урология. 2015;2:48–51).

11. Loran O.B., Sinyakova L.A., Gundorova L.V., Kosov V.A., Kosova I.V., Kolbasov D.N., Pogodina I.E. Oncomodulating effect in bladder cancer: myth or reality. Farmateka. 2017;3:53–60. Russian (Лоран О.Б., Синякова Л.А., Гундорова Л.В., Косов В.А., Косова И.В., Колбасов Д.Н.,Погодина И.Е. Онкомодулрующий эффект при раке мочевого пузыря: миф или реальность. Фарматека. 2017;3:53–60).

12. De Paschale M., Clerici P. Serological diagnosis of Epstein-Barr virus infection: Problems and solutions. World J Virol. 2012;1(1):31–43. Doi: 10.5501/wjv.v1.i1.31.

13. Miller G., Grogan E., Rowe D., Rooney C., Heston L., Eastman R., Andiman W., Niederman J., Lenoir G.., Henle W. Selective lack of antibody to a component of EB nuclear antigen in patients with chronic active Epstein-Barr virus infection. J Infect Dis. 1987;156:26–35.

14. Luderer R., Kok M.., Niesters H.G., Schuurman R., de Weerdt O.,Thijsen S.F. Real-time Epstein-Barr virus PCR for the diagnosis of primary EBV infections and EBV reactivation. Mol Diagn. 2005;9:195–200.

15. Loran O.B., Sinyakova L.A., Gundorova L.V., Kosov V.A., Kosova I.V., Kolbasov D.N., Korostelkin P.P. The viruses in carcinogenesis of bladder cancer. Materiali XI Kongressa Rossiiskogo obshchestva onkourologov. 29–30 sentyabrya 2016 g. P. 75–76. Russian (Лоран О.Б., Синякова Л.А.,Гундорова Л.В., Косов В.А., Косова И.В., Колбасов Д.Н., Коростелкин П.П. Вирусы в канцерогенезе рака мочевого пузыря. Материалы XI Конгресса Российского общества онкоурологов. 29–30 сентября 2016 г. С. 75–76).

16. Woodburn J.R. The epidermal growth factor receptor and its inhibition in cancer therapy. Pharmacol Ther. 1999;82:241–250.

17. Cui Xia, Kang Zhu, Guoxi Zheng. Expression of EBV antibody EA-IgA, Rta-IgG and VCA-IgA and SA in serum and the implication of combined assay in nasopharyngeal carcinoma diagnosis Int J Clin Exp Pathol. 2015;8(12):16104–16110.

18. Li Y., Wang K., Yin S.K., Zheng H.L., Min D.L. Expression of Epstein-Barr virus antibodies EA-IgG, Rta-IgG, and VCA-IgA in nasopharyngeal carcinoma and their use in a combined diagnostic assay. Genet Mol Res. 2016;15(1). Doi: 10.4238/gmr.15017368.

19. Ronit Sarid, Shou-Jiang Gao. Viruses and Human Cancer: From Detection to Causality. Cancer Lett. 2011;305(2):218–227.

20. Shinkura R., Yamamoto N., Koriyama C., Shinmura Y., Eizuru Y., Tokunaga M.Epstein-Barr virus-specific antibodies in Epstein-Barr virus-positive and -negative gastric carcinoma cases in Japan. J Med Virol. 2000;60:411–416.

21. Tamada A., Makimoto K., Yamabe H., Imai J., Hinuma Y., Oyagi A., Araki T. Titers of Epstein-Barr virus-related antibodies in nasopharyngeal carcinoma in Japan. Cancer. 1984;53(3):430–40.

22. Chen Y., Xin X., Cui Z., Zheng Y., Guo J., Chen Y., Lin Y., Su G. Diagnostic Value of Serum Epstein-Barr Virus Capsid Antigen-IgA for Nasopharyngeal Carcinoma: a Meta-Analysis Based on 21 Studies. Clin Lab. 2016;62(6):1155–1166.

23. Morshed K., Polz-Dacewicz M., Szymański M., Ziaja M., Gołabek W. Epstein-Barr virus antibodies in blood serum of patients with laryngeal cancer. Otolaryngol Pol. 2002;56(1):45–48.

24. Cárdenas-Mondragón M.G., Carreón-Talavera R., Camorlinga-Ponce M., Gomez-Delgado A., Torres J., Fuentes-Pananá E. M. Epstein Barr virus and Helicobacter pylori co-infection are positively associated with severe gastritis in pediatric patients. PLoS One. 2013;8, article e62850 Doi: 10.1371/annotation/865eaad7-8547-49ac-a42d-47e9d0755bb3.

25. Cárdenas-Mondragón M.G., Torres J., Flores-Luna L. et al. Case–control study of Epstein–Barr virus and Helicobacter pylori serology in Latin American patients with gastric disease. British Journal of Cancer. 2015; 112:1866–1873. Doi: 10.1038/bjc.2015.175.

26. María G. Cárdenas-Mondragón, Javier Torres, Norma Sánchez-Zauco, Alejandro Gómez-Delgado, Margarita Camorlinga-Ponce, Carmen Maldonado-Bernal, and Ezequiel M. Fuentes-Pananácorresponding. Elevated Levels of Interferon-γ Are Associated with High Levels of Epstein-Barr Virus Reactivation in Patients with the Intestinal Type of Gastric Cancer. J Immunol Res. 2017;2017:7069242.

27. Yahia R., Zaoui C., Derbale W., Boudi H., Chebloune Y., Sahraoui, Elkebir F.Z.Epstein Barr virus and invasive mammary carcinomas: EBNA, EBERs and molecular profile in a population of West Algeria. Ann Biol Clin (Paris). 2018;76(1):75–80. Doi: 10.1684/abc.2017.1312.

28. Michaelis M., Doerr H.W., Cinatl J. Jr. The story of Human Cytomegalovirus and Cancer Increasing Evidence and Open Questions. Neoplasia. 2009;11(1):1–9.

29. Fattahi S., Nikbakhsh N., Taheri H., Ghadami E., Kosari-Monfared M., Amirbozorgi G., Asouri M., Pilehchian-Langroudi M., Ranaee M., Samadani A.A., Paryan M., Akhavan-Niaki H. Prevalence of multiple infections and the risk of gastric adenocarcinoma development at earlier age. Diagn Microbiol Infect Dis. 2018 May 11. pii: S0732-8893(18)30142-1.

30. Leila Z., Arabzadeh S.A., Afshar R.M., Afshar A.A., Mollaei H.R. Detection of Epstein-Barr Virus and Cytomegalovirus in Gastric Cancers in Kerman, Iran. Asian Pac J Cancer Prev. 2016;17(5):2423–28.

31. Loran O.B., Sinyakova L.A., Gundorova L.V., Kosov V.A., Kosova I.V., Kolbasov D.N., Pogodina I.E. Correlation of antiviral antibodies and morphological changes in bladder cancer patients. Consilium Medicum. 2017;19(7):28–34. Russian (Лоран О.Б., Синякова Л.А., Гундорова Л.В., Косов В.А., Косова И.В., Колбасов Д.Н, Погодина И.Е. Корреляция данных противовирусных антител и морфологических изменений при раке мочевого пузыря. Consilium Medicum. 2017;19(7):28–34).

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: И. В. Косова – к.м.н., врач-уролог, урологическое отделение ГБУЗ «ГКБ им. В.П. Демихова»
ДЗМ, Москва, Россия; е-mail: kosovainga@mail.ru

Также по теме