Урология » Резистентность возбудителей внебольничных инфекций мочевыводящих путей: уроки российских многоцентровых микробиологических исследований. Часть II

Резистентность возбудителей внебольничных инфекций мочевыводящих путей: уроки российских многоцентровых микробиологических исследований. Часть II

DOI: https://dx.doi.org/10.18565/urology.2020.5.116-120

В.В. Рафальский, Н.О. Крюкова, Д.С. Коренев
Медицинский институт ФГАОУ ВО «Балтийский федеральный университет им. Иммануила Канта», Калининград, Россия

Выбор антимикробного препарата (АМП) для терапии инфекций мочевыводящих путей (ИМП) определяется многими факторами, однако в настоящее время в качестве одного из наиболее значимых критериев используется популяционная антибиотикорезистентность уропатогенов.
В то же время существуют случаи, когда клиническая эффективность антимикробного препарата не коррелирует с активностью in vitro, в частности, подобная дискордантность выявлена для фосфомицина трометамола. Сопоставление данных микробиологических исследований возбудителей ИМП, выполненных в разное время, представляет большой практический и научный интерес.
В то же время подобные сравнения имеют ограничения, такие как использование разных критериев интерпретации чувствительности микроорганизмов, особенности формирования исследуемой популяции пациентов, сбор штаммов на разных географических территориях. Поэтому при всей кажущейся простоте и наглядности данных по чувствительности уропатогенов их использование для обоснования рациональной антимикробной терапии связано с многочисленными нюансами, способными существенно исказить их объективную оценку. В связи с чем важным моментом является проведение не только микробиологических, но и клинических исследований для получения данных о сравнительной эффективности применяемых АМП.

Ключевые слова: антибиотикорезистентность, инфекции мочевыводящих путей, критерии интерпретации чувствительности

Полный текст статьи доступен
в "Библиотеке Врача"

Литература

1. Huttner A., Kowalczyk A., Turjeman A., Babich T., Brossier C., Eliakim-Raz N. et al. Effect of 5-day nitrofurantoin vs single-dose fosfomycin on clinical resolution of uncomplicated lower urinary tract infection in women. JAMA. 2018;319(17):1781–1789. Doi: 10.1001/jama.2018.3627.

2. Derington C.G., Benavides N., Delate T., Fish D.N. Multiple-dose oral fosfomycin for treatment of complicated urinary tract infections in the outpatient setting. Open forum infectious diseases. 2020;7(2):ofaa034. Epub 2020/03/04. Doi: 10.1093/ofid/ofaa034.

3. GOST R ISO 20776-1-2010 Clinical laboratory testing and in vitro diagnostic test systems. Susceptibility testing of infectious agents and evaluation of performance of antimicrobial susceptibility test devices. Part 1.Reference method for testing the in vitro activity of antimicrobial gents against rapidly growing aerobic bacteria involved in infectious diseases. Russian (Национальный Стандарт ГОСТ Р ИСО 20776-1-2010 Клинические лабораторные исследования и диагностические тест-системы in vitro. Исследование чувствительности инфекционных агентов и оценка функциональных характеристик изделий для исследования чувствительности к антимикробным средствам. Часть 1. Референтный метод лабораторного исследования активности антимикробных агентов против быстрорастущих аэробных бактерий, вызывающих инфекционные болезни).

4. Wijma R.A., Koch B.C.P., van Gelder T., Mouton J.W. High interindividual variability in urinary fosfomycin concentrations in healthy female volunteers. Clinical Microbiology and Infection. 2018;24(5):528–532. Doi: 10.1016/j.cmi.2017.08.023.

5. Abbott I.J., van Gorp E., Wijma R.A., Meletiadis J., Roberts J.A., Mouton J.W. et al. Oral fosfomycin efficacy with variable urinary exposures following single and multiple doses against enterobacterales: the importance of heteroresistance for growth outcome. antimicrobial agents and chemotherapy. 2020;64(3). Doi: 10.1128/aac.01982-19.

6. Peleg A.Y., Mouton J.W., Meletiadis J., Klaassen C.H.W., Raaphorst M.N.,Wijma R.A. et al. Impact of bacterial species and baseline resistance on fosfomycin efficacy in urinary tract infections. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2020;75(4):988–996. Doi: 10.1093/jac/dkz519.

7. Quek W.M., Teng C.B., Tan Y.Z., Chong K., lye D.C., Ng T.M. Outcomes of fosfomycin use in ceftriaxone-resistant enterobacteriaceae urinary tract infection in the elderly. Int J antimicrobial agents. 2019;53(2):195–196. Doi: 10.1016/j.ijantimicag.2018.10.008.

8. Grimm H. In vitro investigations with fosfomycin on mueller-hinton agar with and without glucose-6-phosphate. Infection. 1979;7(5):256–259. Doi: 10.1007/bf01648937.

9. Crespo E., Roca de Viñals J.A. Evolution of bacterial sensitivity to fosfomycin in the ciudad sanitaria ‘Francisco Franco’ in Barcelona. Chemotherapy. 1977;23(1):112–116. Doi: 10.1159/000222036.

10. Detter G.A., Knothe H., Schönenbach B., Plage G. Comparative study of fosfomycin activity in Mueller-Hinton media and in tissues. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1983;11(6):517–524. Doi: 10.1093/jac/11.6.517.

11. Andrews J.M., Baquero F., Beltran J.M., Canton E., Crokaert F., Gobernado M. et al. International collaborative study on standardization of bacterial sensitivity to fosfomycin. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1983;12(4):357D361. Doi: 10.1093/jac/12.4.357.

12. Abbott I.J., van Gorp E., Wijma R.A., Meletiadis J., Mouton J.W.,Peleg A.Y. Evaluation of pooled human urine and synthetic alternatives in a dynamic bladder infection in vitro model simulating oral fosfomycin therapy. Journal of Microbiological Methods. 2020;171:105861. Doi: 10.1016/j.mimet.2020.105861.

13. Seroy J.T., Grim S.A., Reid G.E., Wellington T., Clark N.M. Treatment of MDR urinary tract infections with oral fosfomycin: a retrospective analysis. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2016;71(9):2563–2568. Doi: 10.1093/jac/dkw178.

14. EUCAST. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 10.0, 2020.

15. Bonkat G., Pickard R., Bartoletti R., Cai T., Bruyère F., Geerlings S.E. et al. Urological Infections. In: EAU Guidelines. Edn. presented at the EAU Annual Congress Amsterdam the Netherlands 2020. ISBN 978-94-92671-07-3.2020. 415 p.

16. Rafal’skii V.V., Strachunskii L.S., Kogan M.I., Petrov S.B., Grinev A.V., Shevelev A.N. Antibacterial therapy of complicated urinary infections in outpatients. Urologiia. 2004(5):25–31. Russian (Рафальский В.В.,Страчунский Л.С., Коган М.И., Петров С.Б., Гринев А.В.,Шевелев А.Н. Антибактериальная терапия осложненных инфекций мочевыводящих путей у амбулаторных пациентов. Урология. 2004(5):25–31).

17. Smyth D.S., Sugianli A.K., Ginting F., Kusumawati R.L., Parwati I., de Jong M.D. et al. Laboratory-based versus population-based surveillance of antimicrobial resistance to inform empirical treatment for suspected urinary tract infection in Indonesia. Plos One. 2020;15(3):e0230489. Doi: 10.1371/journal.pone.0230489.

18. Palagin I.S., Sukhorukova M.V., Dekhnich A.V., Edelstein M.V. Antibiotic resistance of pathogens of community-acquired urinary tract infections in Russia: results of a multicenter study «DARMIS-2018». Klinicheskaja mikrobiologija i antimikrobnaja himioterapija. 2019;21(2):134–146. Russian (Палагин И.С., Сухорукова М.В., Дехнич А.В., Эйдельштейн М.В. Антибиотикорезистентность возбудителей внебольничных инфекций мочевых путей в россии: результаты многоцентрового исследования «ДАРМИС-2018». Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2019;21(2):134–146).

19. Rafalskiy V.V., Dovgan E.V.. Resistance of urinary tract pathogens and the choice of antimicrobial therapy: deceptive simplicity. Urologiia. 2017(3):104–110. Russian (Рафальский В.В., Довгань Е.В. Резистентность возбудителей инфекций мочевыводящих путей и выбор антимикробной терапии: обманчивая простота. Урология. 2017(3):104–110).

20. Perepanova T.S., Siniakova L.A., Lokshin K.L. Bacterial cystitis in adults. Clinical recommendations. The Russian society of urology: Moscow. Ministry Of Health Of The Russian Federation. 2019; 32 p. Russian (Перепанова Т.С., Синякова Л.А., Локшин К.Л. Цистит бактериальный у взрослых. Клинические рекомендации. Российское общество урологов: Москва. Министерство Здравоохранения Российской Федерации. 2019; 32 с.)

21. EUCAST. Organism-agent combinations for which good clinical data supporting the breakpoints are not available 2014

22. Sumi C.D., Heffernan A.J., Lipman J., Roberts J.A., Sime F.B. What antibiotic exposures are required to suppress the emergence of resistance for gram-negative bacteria? A systematic review. Clinical Pharmacokinetics. 2019;58(11):1407–1443. Doi: 10.1007/s40262-019-00791-z.

23. Gobernado M., Santos M., Diosdado N., Pérez F. The evolution of the sensitivity to fosfomycin over the past two years. Chemotherapy. 1977;23(1):99–103. Doi: 10.1159/000222034.

Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: В. В. Рафальский – д.м.н., профессор, директор Центра клинических исследований, зав. курсом клинической фармакологии Медицинского института ФГАОУ ВО «Балтийский федеральный университет им. Иммануила Канта», Калининград, Россия; e-mail: v.rafalskiy@mail.ru

К содержанию номера