Белок, связывающий жирные кислоты, в сыворотке крови и сперме


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/urology.2019.3.95-100

Д.Ю. Соснин, К.Р. Галькович, Н.А. Зубарева, А.В. Кривцов, Н.В. Поздин

1 Кафедра клинической лабораторной диагностики ФГБОУ ВО «Пермский государственный медицинский университет им. академика Е. А. Вагнера» МЗ РФ, Пермь, Россия; 2 ООО «МедГарант», Пермь, Россия; 3 ФБУН «Федеральный научный центр медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Пермь, Россия; 4 ФГБОУ ВО «Пермский национальный исследовательский политехнический университет» РФ, Пермь, Россия
Введение. Состав семенной плазмы отражает процессы в органах репродуктивной системы, которые участвуют в продукции эякулята.
Цель исследования: изучить концентрацию белка, связывающего жирные кислоты (БСЖК), в сыворотке крови и образцах эякулята с нормальными и измененными характеристиками.
Материалы и методы: в исследование включены 82 мужчины, средний возраст которых составил 33,1±4,7 года, проходивших обследование с целью уточнения причины бесплодного брака. Основную группу (n=21) составили мужчины с олигозооастеноспермией. Контрольная группа (n=33) была представлена обследованными с нормальными показателями эякулята. В группу сравнения (n=28) были включены мужчины с синдром вискозипатии эякулята. Ни у кого из обследованных не было выявлено изменений в общем и биохимическом анализах крови и анализе мочи. Содержание БСЖК определяли в сыворотке крови и семенной плазме.
Результаты: среднее содержание БСЖК в семенной плазме составило 1,347±0,26 нг/мл и превышало концентрацию этого соединения в сыворотке крови (p<0,000001), которая составила 0,305±0,193 нг/мл. Концентрация БСЖК в семенной плазме не зависела от его сывороточной концентрации (R=0,068194), а также от объема и вязкости эякулята, но коррелировала с концентрацией сперматозоидов (R=0,66387). Семенная плазма мужчин контрольной группы характеризовалась наибольшей концентрацией БСЖК (1,47±0,33 нг/мл), превышавшей аналогичный показатель основной группы (1,22±0,09 нг/мл; p=0,000057) и группы сравнения (1,29±0,19 нг/мл; p=0,010822). При сравнении результатов сывороточной концентрации БСЖК различия между группами отсутствовали (p=0,9814).
Выводы. Полученные данные позволяют предположить, что сниженный уровень БСЖК в семенной плазме можно рассматривать как неблагоприятный признак, свидетельствующий о пониженной фертильности эякулята.
Ключевые слова: олигозооастеноспермия, семенная плазма, эякулят, сперма, связывающий жирные кислоты, белок
Полный текст статьи доступен
в "Библиотеке Врача"

Литература

1. Dolgov V.V., Lugovskaya S.A., Fanchenko N.D., Mironova I.I., Nazarova E.K., Rakova N.G., Rakov S.S., Selivanov T.O., Shchelochkov A.M. Laboratory diagnosis of male infertility. M.: Tver’: OOO «Izdatel’stvo «Triada», 2006. 125 s. Russian (Долгов В.В.,Луговская С.А., Фанченко Н.Д., Миронова И.И.,Назарова Е.К., Ракова Н.Г., Раков С.С., Селиванов Т.О.,Щелочков А.М. Лабораторная диагностика мужского бесплодия. М.: Тверь: ООО «Издательство «Триада», 2006. 125 с.).

2. WHO laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction. 4th ed. 1999 2-я ссылка активна на 20.10.2017.

3. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. - 5th ed. 2010 http://www.who.int/reproductivehealth/publications/infertility/9789241547789/en/

4. Gal’kovich K.R., Sosnin D.Yu. Immunochemical determination of the concentration of organ-specific proteins ejaculate in the differential diagnosis of chronic inflammatory diseases of the male reproductive system. Urologiia. 1997;(5):40–44. Russian (Галькович К.Р., Соснин Д.Ю. Иммунохимическое определение концентрации органоспецифических белков эякулята в дифференциальной диагностике хронических воспалительных заболеваний мужской репродуктивной системы. Урология. 1997;(5):40–44).

5. Milardi D., Grande G., Vincenzoni F., Castagnola M., Marana R. Proteomics of human seminal plasma: identification of biomarker candidates for fertility and infertility and the evolution of technology. Molecular reproduction and development. 2013; 80(5): 350–357. Doi: 10.1002/mrd.22178.

6. Evdokimov V.V., Erasova V.I., Orlova E.V. Protein markers of fertility. Andrologiya I genital’naya khirurgiya. 2004. 2004;(4):30–32. Russian (Евдокимов В.В., Ерасова В.И., Орлова Е.В. Белковые маркеры фертильности. Андрология и генитальная хирургия. 2004;(4):30–32).

7. Sosnin D.Yu., Zubareva N.A., Nenasheva O.Yu., Krivtsov A.V., Karimova N.V.,Pozdin N.V. The concentration of procalcitonin in the ejaculate and serum of healthy men and men with oligozoasthenospermia. Urologiia. 2017; (1): 61–65. Russian. (Соснин Д.Ю., Зубарева Н. А., Ненашева О.Ю.,Кривцов А.В., Каримова Н.В., Поздин Н.В. Кронцентрация прокальцитонина в эякуляте и сыворотке крови здоровых мужчин и мужчин с олигозооастеноспермией. Урология. 2017;(1):61-65. Doi: 10.18565/urol.2017.1.61–65.

8. Lutskii D.L., Makhmudov R.M. Lutskaya A.M. A study of the ejaculate and its components in the diagnosis of inflammatory diseases of the male reproductive system: proteins, sperm antibodies. Part 2 (Review). Problemy reproduktsii. 2011;(2):84–88. Russian (Луцкий Д.Л.,Махмудов Р.М. Луцкая А.М. Исследование эякулята и его компонентов в диагностике воспалительных заболеваний мужской репродуктивной системы: белки, антиспермальные антитела. Ч. 2. (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2011;(2):84–88).

9. Andrei P.D., Keith J., Eleftherios P. D. Verification of male infertility biomarkers inseminal plasma by multiplex selected reaction monitoring assay. Molecular & Cellular Proteomics. 2011;(10):1–13. Doi:10.1074/mcp.M110.004127-1.

10. Davalieva K., Kiprijanovska S., Noveski P., Plaseski T., Kocevska B., Plaseska-Karanfilska D. Human seminal plasma proteome study: a search for male infertility biomarkers. BJMG, Suppl. 2012;(15):35–38. Doi: 10.2478/v10034-012-0016-9

11. Milardi D., Grande G., Vincenzoni F., Castagnola M., Marana R. Proteomics of human seminal plasma: identification of biomarker candidates for fertility and infertility and the evolution of technology. Molecular reproduction and development. 2013;80(5):350–357. Doi: 10.1002/mrd.22178.

12. Pelsers M.M., Glatz J.F. Detection of brain injury by fatty acid-binding proteins. Clin Chem Lab Med. 2005;43(8):802–809. Doi: 10.1515/CCLM.2005.135.

13. Liu R.Z., Li X., Godbout R. A novel fatty acid-binding protein (FABP) gene resulting from tandem gene duplication in mammals: transcription in rat retina and testis. Genomics. 2008;92(6):436–45. Doi: 10.1016/j.ygeno.2008.08.003.

14. Martynov A.I., Voevoda M.I., Arutyunov G.P., Kokorin V.A., Spasskiy A.A. Clinical efficacy of early diagnosis of acute myocardial infarction with a protein that binds fatty acids. Rossiyskiy kardiologicheskiy zhurnal. 2012;17(3):7–11. Russian (Мартынов А.И., Воевода М.И., Арутюнов Г.П., Кокорин В.А., Спасский А.А. Клиническая эффективность ранней диагностики острого инфаркта миокарда с помощью белка, связывающего жирные кислоты. Российский кардиологический журнал. 2012;17(3):7–11).

15. Chung-Yu Ku, Yu-Huei Liu, Hsuan-Yuan Lin, Shao-Chun Lu, Jung-Yaw Lin Liver fatty acid-binding protein (L-FABP) promotes cellular angiogenesis and migration in hepatocellular carcinoma Oncotarget. 2016;7(14):18229–18246. Doi: 10.18632/oncotarget.7571.

16. Khatir D.S., Bendtsen M.D., Birn H., Nørregaard R., Ivarsen P., Jespersen B.,Buus N.H. Urine liver fatty acid binding protein and chronic kidney disease progression. Scand J Clin Lab Invest. 2017;77(7):549–554. Doi: 10.1080/00365513.2017.1355561.

17. Titov V.N. Diagnostic value of the blood plasma content of troponin and the protein of cardiomyocytes binding fatty acids in acute coronary syndrome. Klinicheskaya meditsina. 2017;95(3):207–215. Doi: 10.18821/0023-2149-2017-95-3-207-215. Russian (Диагностическое значение содержания в плазме крови тропонина и белка кардиомиоцитов, связывающего жирные кислоты, при остром коронарном синдроме. Клиническая медицина. 2017;95(3):207–215).

18. Leaver K., Poston K.L. Do CSF Biomarkers Predict Progression to Cognitive Impairment in Parkinson’s disease patients? A Systematic Review. Neuropsychol Rev. 2015;25(4):411–23. Doi: 10.1007/s11065-015-9307-8.

19. Kamijo-Ikemori A., Sugaya T., Ichikawa D., Hoshino S., Matsui K., Yokoyama T., Yasuda T., Hirata K., Kimura K. Urinary liver type fatty acid binding protein in diabetic nephropathy. Clin Chim Acta. 2013;424:104–108. Doi: 10.1016/j.cca.2013.05.020.

20. Tsuji S., Sugiura M., Tsutsumi S., Yamada H. Sex differences in the excretion levels of traditional and novel urinary biomarkers of nephrotoxicity in rats. J Toxicol Sci. 2017;42(5):615–627. Doi: 10.2131/jts.42.615.

21. Jamshidi J., Pouresmaeili F., Darvish H., Omrani D., Azargashb E., Sadeghi M.R., Lakpour N. FABP9 Mutations Are Not Detected in Cases of Infertility due to Sperm Morphological Defects in Iranian Men. Int J Fertil Steril. 2014;7(4):275–280.

22. Glatz J.F. Lipids and lipid binding proteins: a perfect match. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2015;93:45–49. Doi: 10.1016/j.plefa.2014.07.011.

23. Adeva-Andany M.M., Carneiro-Freire N., Seco-Filgueira M., Fernández-Fernández C., Mouriño-Bayolo D. Mitochondrial β-oxidation of saturated fatty acids in humans. Mitochondrion. 2018 Mar 15. pii: S1567-7249(17)30289-1. Doi: 10.1016/j.mito.2018.02.009.

24. Ploskonos M.V., Nikolaev A.A. What is «abortive» sperm apoptosis share in the ejaculate of fertile men? Problemy reproduktsii. 2014;(6):70–75. Russian (Плосконос М.В., Николаев А.А. «Абортивный» апоптоз сперматозоидов: какова его доля в эякуляте фертильного мужчины? Проблемы репродукции. 2014;(6): 70–75). Doi: 10.17116/repro201420670-75.


Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: Д. Ю. Соснин – д.м.н., профессор кафедры клинической лабораторной диагностики факультета дополнительного профессионального образования ФГБОУ ВО «Пермский государственный медицинский университет
им. академика Е. А. Вагнера» Минздрава России, Пермь, Россия; e-mail: sosnin_dm@mail.ru


Похожие статьи

К содержанию номера

Бионика Медиа