English
Функциональная активность лейкоцитов в семенной жидкости при патоспермии
DOI: https://dx.doi.org/10.18565/urology.2019.6.78-82
Е.В. Проскурнина, Н.А. Мельников, В.Б. Черных, С.Ю. Чистякова, Д.А. Охоботов, А.А. Камалов
1) ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. академика Н. П. Бочкова», Москва, Россия; 2) факультет фундаментальной медицины Московского государственного университета им. М. В. Ломоносова, Москва, Россия; 3) Медицинский научно-образовательный центр МГУ им. М. В. Ломоносова, Москва, Россия
Материалы и методы. Исследованы образцы нативного эякулята от 95 мужчин репродуктивного возраста, обратившихся для спермиологического обследования. Продукцию активных форм кислорода (АФК) в лейкоцитах семенной жидкости определяли по оригинальной методике, основанной на методе кинетической хемилюминесценции, адаптированной к исследованию эякулята.
Результаты. Выявлены статистически значимые (p<0,05) различия по продукции АФК лейкоцитами по амплитуде как базального, так и стимулированного ответа между группами «нормозооспермия», «патозооспермия» и «патозооспермия+лейкоспермия»: медиана уровня базальной хемилюминесценции, нормированного на число лейкоцитов, составила 0,13; 0,71 и 1,78 соответственно; медиана уровня стимулированной хемилюминесценции, нормированного на число лейкоцитов, – 0,62; 2,14; 5,94 соответственно. При нормозооспермии уровень стимулированного ответа не превышал 0,5 усл. ед., в группах c патозооспермией примерно по трети случаев характеризовались низким, умеренным и высоким уровнями стимулированного ответа соответственно.
Выводы. Уровень базальной продукции АФК лейкоцитами в группах «патозооспермия», «патозооспермия+лейкоспермия» был примерно в 5 и 15 раз выше, чем в группе «нормозооспермия», уровень стимулированной продукции АФК – в 3,5 и 9,5 раз соответственно. Это свидетельствует об активации процессов окислительного стресса в семенной жидкости пациентов с патозооспермией за счет повышенной активности лейкоцитов даже при нормальной их концентрации.
Литература
1. Agarwal A., Durairajanayagam D., Halabi J., Peng J., Vazquez-Levin M. Proteomics, oxidative stress and male infertility. Reprod Biomed Online. 2014;29(1):32–58. 2. Sukhikh G.T., Bozhedomov V.A. Male infertility. Moscow: Eksmo; 2009. Russian (Сухих Г.Т., Божедомов В.А.. Мужское бесплодие. М.: Эксмо; 2009). 3. Aitken R.J., Smith T.B., Jobling M.S., Baker M.A., De Iuliis G.N. Oxidative stress and male reproductive health. Asian J Androl. 2014;16(1):31–38. 4. Sharma R.K., Thompson A., Kothari S., Agarwal A. Oxidative stress in male reproduction. In: Pantopoulos K, Schipper HM, editors. Principles of Free Radical Biomedicine: Nova Science Publisher, Inc.; 2012. Р. 305–327. 5. Aitken R.J., Baker M.A., Nixon B. Are sperm capacitation and apoptosis the opposite ends of a continuum driven by oxidative stress? Asian J Androl. 2015;17(4):633–639. 6. Sabeti P., Pourmasumi S., Rahiminia T., Akyash F., Talebi A.R. Etiologies of sperm oxidative stress. Int J Reprod Biomed. 2016;14(4):231–240. 7. Ishii T., Yasuda K., Miyazawa M., Mitsushita J., Johnson T.E., Hartman P.S. Infertility and recurrent miscarriage with complex II deficiency-dependent mitochondrial oxidative stress in animal models. Mech Ageing Dev. 2016;155:22–35. 8. Kulabukhov V.V., Ryabov G.A. Modern methods for assessing the body’s oxygen status and the possibility of metabolic monitoring of critical conditions. Kremlin medicine. Klinicheskij vestnik. 1996;2:43–46. Russian (Кулабухов В.В., Рябов Г.А. Современные методы оценки кислородного статуса организма и возможности метаболического мониторинга критических состояний. Кремлевская медицина. Клинический вестник. 1996;2:43–46). 9. World Health Organization. WHO Laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th edition; 2010. 287 pp. 10. Aitken R.J., Buckingham D.W., West K.M. Reactive oxygen species and human spermatozoa: analysis of the cellular mechanisms involved in luminol- and lucigenin-dependent chemiluminescence. J Cell Physiol. 1992;151(3):466–477. 11. McKinney K.A., Lewis S.E., Thompson W. Reactive oxygen species generation in human sperm: luminol and lucigenin chemiluminescence probes. Arch Androl. 1996;36(2):119–125. 12. Obraztsov I.V., Godkov M.A., Polimova A.M., Dyomin E.M., Proskurnina E.V., Vladimirov Yu.A. Assessment of functional activity of neutrophils in blood with two-step stimulation: a new approach to chemiluminescent analysis. Russian Rossijskij immunologicheskij zhurnal. 2015;9(18)(4):418–425. Russian (Образцов И.В., Годков М.А., Полимова А.М., Дёмин Е.М.,Проскурнина Е.В., Владимиров Ю.А. Оценка функциональной активности нейтрофилов цельной крови методом двухстадийной стимуляции: новый подход к хемилюминесцентному анализу. Российский иммунологический журнал. 2015;9 (18)(4):418–425). 13. Aitken R.J., West K.M. Analysis of the relationship between reactive oxygen species production and leucocyte infiltration in fractions of human semen separated on Percoll gradients. Int J Androl. 1990;13(6):433–451.
Об авторах / Для корреспонденции
А в т о р д л я с в я з и: Е. В. Проскурнина – д.м.н., главный научный сотрудник ФГБНУ «Медико-генетический
научный центр им. академика Н. П. Бочкова», Москва, Россия; e-mail: proskurnina@gmail.com
Похожие статьи
