2. Dunaev A.V., Dremin V.V., Zherebtsov E.A. and others. Analysis of individual variability of parameters in laser fluorescence diagnostics. Biotechnosphere Journal. 2013;26(2):39–47. Russian (Дунаев А.В., Дрёмин В.В., Жеребцов Е.А. и др. Анализ индивидуальной вариабельности параметров в лазерной флуоресцентной диагностике. Журнал Биотехносфера. 2013;26(2):39–47).

3. Tsygankova E.A., Korneva Y.S. Application of spectroscopic methods in the study of neoplasms in biological tissues. Bulletin of the Smolensk State Medical Academy. 2021;20(2):150-156. DOI: 10.37903/vsgma.2021.2.21. Russian (Цыганкова Е.А., Корнева Ю.С. Применение спектроскопических методов в исследованиях новообразований в биологических тканях. Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2021;20(2):150–156. DOI: 10.37903/vsgma.2021.2.21).

4. Dacosta R.S., Wilson B.C., Marcon N. E., Lightinduced fluorescence endoscopy of the gastrointestinal tract. Gastrointestinal endoscopy clinics of North America. 2000;10(1):37–69.

5. Zipfel W.R., Williams R.M., Webb W.W. Nonlinear magic: multiphoton microscopy in the biosciences. Nat. Biotechnol. 2003;21(11):1369–1377.

6. Bird D.K., Eliceiri K.W., Fan C.-H., White J.G. Simultaneous two-photon spectral and lifetime fluorescence microscopy. Appl. Opt. 2004;43(27):5173–5182.

7. Monici M. Cell and tissue autofluorescence research and diagnostic applications. Biotechnol. Annu. Rev. 2005;11:227–256. DOI: 10.1016/S1387-2656(05)11007-2.

8. Dremin V., Potapova E., Zherebtsov E., Kandurova K., Shupletsov V., Alekseyev A., Mamoshin A., Dunaev A. Optical percutaneous needle biopsy of the liver: a pilot animal and clinical study. Sci. Rep. 2020;10(1):14200. doi: 10.1038/s41598-020-71089-5.

9. Lakovich J. Fundamentals of fluorescence spectroscopy. Translated from English. M.: Mir, 1986. 496 p., ill. Russian (Лакович Дж. Основы флуоресцентной спектроскопии. Пер. с англ. М.: Мир, 1986. 496 с., ил.).

10. Vekshin N.L. Fluorescence spectroscopy of polymers. Pushchino: Photon-century; 2008. ISBN: 978-5-903789-07-8. Russian (Векшин Н.Л. Флуоресцентная спектроскопия полимеров. Пущино: Фотон-век; 2008. ISBN: 978-5-903789-07-8).

11. Rogatkin D.A. Physical foundations of laser clinical fluorescence spectroscopy in vivo. Medical physics. 2014;4(64):78–96. Russian (Рогаткин Д.А. Физические основы лазерной клинической флюоресцентной спектроскопии in vivo. Медицинская физика. 2014;4(64):78–96).

12. Zherebtsov E.A., Dremin V.V., Zherebtsova A.I. and others. Fluorescent diagnostics of mitochondrial function in epithelial tissues in vivo: monograph. Orel OSU named after I.S. Turgenev, 2018. 107 p. Russian (Жеребцов Е.А., Дрёмин В.В., Жеребцова А.И. и др. Флуоресцентная диагностика митохондриальной функции в эпителиальных тканях in vivo: монография. Орел: ОГУ им. И.С. Тургенева, 2018. 107 с.).

13. Ramanujam N., Mitchell M.F., Mahadevan A., Thomsen S., Silva E., Richards-Kortum R. Fluorescence spectroscopy: a diagnostic tool for cervical intraepithelial neoplasia (CIN). Gynecol. Oncol. 1994;52(1):31–38. doi: 10.1006/gyno.1994.1007. PMID: 8307499.

14. Potapov A.A., Goryainov S.A., Okhlopkov V.A., Pithelauri D.I., Kobyakov G.L., Zhukov V.Yu., Golbin D.A., Svistov D.V., Martynov B.V., Krivoshapkin A.L., Gaitan A.S., Anokhina Yu.E., Varyukhina M.D., Goldberg M.F., Kondrashov A.A., Chumakova A.P. Clinical recommendations on the use of intraoperative fluorescent diagnostics in surgery of brain tumors. Questions of neurosurgery. 2015;79(5):91–101. DOI: 10.17116/neiro201579591-101. Russian (Потапов А.А., Горяйнов С.А., Охлопков В.А., Пицхелаури Д.И., Кобяков Г.Л., Жуков В.Ю., Гольбин Д.А., Свистов Д.В., Мартынов Б.В., Кривошапкин А.Л., Гайтан А.С., Анохина Ю.Е., Варюхина М.Д., Гольдберг М.Ф., Кондрашов А.А., Чумакова А.П. Клинические рекомендации по использованию интраоперационной флуоресцентной диагностики в хирургии опухолей головного мозга. Вопросы нейрохирургии. 2015;79(5):91–101. DOI: 10.17116/neiro201579591-101).

15. Zarochintseva N.V., Filonenko E.V., Baranov I.I., Rovinskaya O.V., Trushina O.I., Novikova E.G. Fluorescent diagnostics and photodynamic therapy in gynecological and oncogynecological practice. Russian bulletin of the obstetrician-gynecologist. 2021;21(3):37–45. DOI: 10.17116rosakush20212103173. Russian (Зарочинцева Н.В., Филоненко Е.В., Баранов И.И., Ровинская О.В., Трушина О.И., Новикова Е.Г. Флуоресцентная диагностика и фотодинамическая терапия в гинекологической и онкогинекологической практике. Российский вестник акушера-гинеколога. 2021;21(3):37–45. DOI: 10.17116rosakush20212103173).

16. Yaroslavtseva-Isaeva E.V., Kaplan M.A., Kapinus V.N., Spichenkova I.S., Sokol N.I. Fluorescent diagnostics of malignant skin neoplasms with photosensitizers of the chlorin series. Biomedical photonics. 2018;7(1):13–20. Russian (Ярославцева-Исаева Е.В., Каплан М.А., Капинус В.Н., Спиченкова И.С., Сокол Н.И. Флуоресцентная диагностика злокачественных новообразований кожи с фотосенсибилизаторами хлоринового ряда. Biomedical photonics. 2018;7(1):13–20).

17. Daikhes N.A., Vinogradov V.V., Kim I.A., Reshulsky S.S., Prikuls V.F., Karneeva O.V., Khabazova A.M., Prikule D.V. Possibilities of fluorescence spectroscopy in the diagnosis of tumors of ENT organs. tumors of the head and neck. 2021;1:86-95. DOI: 10.17650/2222 1468 2021 11 1 86 95. Russian (Дайхес Н.А., Виноградов В.В., Ким И.А., Решульский С.С., Прикулс В.Ф., Карнеева О.В., Хабазова А.М., Прикуле Д.В. Возможности флуоресцентной спектроскопии в диагностике опухолей лор-органов. опухоли головы и шеи. 2021;1:86–95. DOI: 10.17650/2222 1468 2021 11 1 86 95).

18. Bădescu C., Mihălṭan F. Autofluorescence bronchoscopy and lung cancer diagnosis. Pneumologia. 2021;69(3):135–141. DOI: 10.2478/pneum-2021-0002. Russian (Bădescu C., Mihălṭan F. Autofluorescence bronchoscopy and lung cancer diagnosis. Pneumologia. 2021;69(3):135–141. DOI: 10.2478/pneum-2021-0002).

19. Dolgikh A.I., Stelmaschuk O.A., Zherebtsov E.A. Registration of fluorescence lifetime parameters for assessing the pathological state of cells in neurodegenerative diseases. Fundamental and applied problems of engineering and technology. 2022;№3(353):127–134. DOI: 10.33979/2073-7408-2022-353-3-127-134. Russian (Долгих А.И., Стельмащук О.А., Жеребцов Е.А. Регистрация параметров времени жизни флуоресценции для оценки патологического состояния клеток при нейродегенеративных заболеваниях. Фундаментальные и прикладные проблемы техники и технологии. 2022;№3(353):127–134. DOI: 10.33979/2073-7408-2022-353-3-127-134).

20. Krutitsky S.S., Tsapko L.P., Yevtushenko A.V., Yevtushenko V.V., Boschenko A.A., Grigoriev E.V. Optical biopsy for onlain monitoring of the functional state of the myocardium during cardiac surgery (experimental study). Anesthesiology and intensive care. 2020;4:48–53. Russian (Крутицкий С.С., Цапко Л.П., Евтушенко А.В., Евтушенко В.В., Бощенко А.А., Григорьев Е.В. Оптическая биопсия для onlain-мониторинга функционального состояния миокарда при кардиохирургических операциях (экспериментальное исследование). Анестезиология и реаниматология. 2020;4:48–53).

21. Potapova E., Zherebtsov E., Shupletsov V., Dremin V., Kandurova K., Mamoshin A., Abramov A., Dunaev A. Detection of NADH and NADPH levels in vivo identifies shift of glucose metabolism in cancer to energy production. FEBS J. 2024;291(12):2674–2682. doi: 10.1111/febs.17067.

22. Anidjar M., Ettori D., Cussenot O., Meria P., Desgrandchamps F., Cortesse A., Teillac P., Le Duc A., Avrillier S. Laser induced autofluorescence diagnosis of bladder tumors: dependence on the excitation wavelength. J. Urol. 1996;156(5):1590–1596. PMID: 8863545.

23. Koenig F., McGovern F.J., Althausen A.F., Deutsch T.F., Schomacker K.T. Laser induced autofluorescence diagnosis of bladder cancer. J. Urol. 1996;156(5):1597–1601. PMID: 8863546.

24. Rafailov I.E., Dremin V.V., Litvinova K.S., Dunaev A.V., Sokolovski S.G., Rafailov E.U. Computational model of bladder tissue based on its measured optical properties. Journal of Biomedical Optics. 2016;21(2):025006. https://doi.org/10.1117/1.JBO.21.2.025006.

25. Zheng W., Lau W., Cheng C. et al. Optimal excitation–emission wavelengths for autofluorescence diagnosis of bladder tumors. Int. J. Cancer. 2003;104:477–481. doi.org/10.1002/ijc.10959.

26. Schäfauer C., Ettori D., Rouprêt M. et al. Detection of bladder urothelial carcinoma using in vivo noncontact, ultraviolet excited autofluorescence measurements converted into simple color coded images: a feasibility study. J. Urol. 2013;190:271–277. doi.org/10.1016/j.juro.2013.01.100.

27. Rusakov I.G., Sokolov V.V., Bulgakova N.N. and others. Fluorescent diagnostic methods and superficial bladder cancer: the current state of the problem. Urologiia. 2008;3:67–71. Russian (Русаков И.Г., Соколов В.В., Булгакова Н.Н. и др. Флуоресцентные методы диагностики и поверхностный рак мочевого пузыря: современное состояние проблемы. Урология. 2008;3:67–71).

28. Zaak D., Stepp H., Baumgartner R., Schneede P., Waidelich R., Frimberger D., Hartmann A., Künchel R., Hofstetter A., Hohla A. Ultraviolet-excited (308 nm) autofluorescence for bladder cancer detection. Urology. 2002;60(6):1029–1033. doi: 10.1016/s0090-4295(02)01999-4.

29. Aboumarzouk O., Valentine R., Buist R., Ahmad S., Nabi G., Eljamel S., Moseley H., Kata S.G. Laser-induced autofluorescence spectroscopy: can it be of importance in detection of bladder lesions? Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2015;12(1):76–83. doi: 10.1016/j.pdpdt.2014.12.003.

30. Szygula M., Wojciechowski B., Adamek M., Pietrusa A., Kawczyk-Krupka A., Cebula W. et al. Fluorescent diagnosis of urinary bladder cancer-a comparison of two diagnostic modalities. Photodiagn. Photodyn. Ther. 2004;1(1):23–26. doi.org/10.1016/S1572-1000(04)00006-7.

31. Bochynekab K., Aebisherc D., Gasiorekd M., Cieślara G., Kawczyk-Krupkaa A. Evaluation of autofluorescence and photodynamic diagnosis in assessment of bladder lesions. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2020;30. Article 101719. doi.org/10.1016/j.pdpdt.2020.101719.

32. Чиссов В.И., Соколов В.В., Булгакова Н.Н. и др. // Исследование лазер-индуцированной аутофлуоресценции нормального и неоплазированного уротелия in vivo. Российский онкологический журнал. 2007;6:18–24.

33. Penq Q., Berg K., Moan J., Kongshaug M., Nesland J.M. 5-Aminolevulinic acid-based photodynamic therapy: Principles and experimental research. Photochem. Photobiol. 1997;65:235–251.

34. Datta S.F., Loh C.S., MacRobert A.J. et al. Quantitative studies of the kinetics of 5- aminolaevulinic acid-induced fluorescence in bladder transitional cell carcinoma. Br. J. Cancer. 1998;78:1113–1118.

35. Stepp H., Wagner M., Zaak D., Knuchelclarke R. Fluorescence diagnosis of bladder tumours using 5-ALA – fundamentals and results. Munich, 1999.

36. Kriegmair M., Baumgartner R., Knüchel R., Stepp H., Hofstädter F., Hofstetter A. Detection of early bladder cancer by 5-aminolevulinic acid induced porphyrin fluorescence. J. Urol. 1996;155(1):105–109, discussion 109-110. PMID: 7490803.

37. Sokolov V.V., Rusakov I.G., Bulgakova N.N., Ulyanov R.V., Teplov A.A. Fluorescent methods in the diagnosis of superficial bladder cancer (literature review). Siberian Journal of Oncology. 2007;4(24):117–126. Russian (Соколов В.В., Русаков И.Г., Булгакова Н.Н., Ульянов Р.В., Теплов А.А. Флуоресцентные методы в диагностике поверхностного рака мочевого пузыря (обзор литературы). Сибирский онкологический журнал. 2007;4(24):117–126).

38. It’s Severin.S. Biochemistry. Well.S. Severina. Moscow: G ASBOTAR-media, 2014. 768 P. ISBN 978-5-9704-2786-6. Russian (Северин Е.С. Биохимия / под ред. Е.С. Северина. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2014. 768 с. ISBN 978-5-9704-2786-6).

39. Yang L.P. Hexaminolevulinate blue light cystoscopy: a review of its use in the diagnosis of bladder cancer. Mol. Diagn. Ther. 2014;18:105–116.

40. Auler H., Banzer G. Untersuchung uber die Rolle der Porphyrine bei geschwulstkranken Menschen und Tieren. Z. Krebsforsch. 1942;53:65–68.

41. Rubino G.F., Rasetti L. Porphyrin metabolism in human neoplastic tissues. Panminerva Med. 1966;8(7):290–292.

42. Meng J.W., Wang X.-J., Lin T., Ren X.G., Pang H.F., Zhou C.N. The study of protoporphyrin IX metabolism in cell proliferation using photoluminescence method. J. Lumin. 1999;83-84:271–273.

43. Loran O.B., Seregin A.V., Dadashev E.O., Babaev A.B., Loshenov V.B. Photodynamic diagnostics of domestic fluorescent video system of noninvasive bladder cancer. Consilium Medicum. 2018;20(7):37–40. DOI: 10.26442/2075-1753_2018.7.37-40. Russian (Лоран О.Б., Серегин А.В., Дадашев Э.О., Бабаев А.Б., Лощенов В.Б. Фотодинамическая диагностика отечественной флуоресцентной видеосистемой неинвазивного рака мочевого пузыря. Consilium Medicum. 2018;20(7):37–40. DOI: 10.26442/2075-1753_2018.7.37-40).

44. Kriegmair M., Baumgartner R., Knuechel R. et al. Fluorescence photodetection of neoplastic urothelial lesions following intravesical instillation of 5-aminolevulinic acid. Urology. 1994;44:836–841.

45. Riedl C.R., Daniltchenko D., Koenig F. et al. Fluorescence endoscopy with 5-aminolevulinic acid reduces early recurrence rate in superficial bladder cancer. J. Urol. 2001;165:121–123.

46. Zaak D., Stepp H., Baumgartner R., Schneede P., Waidelich R., Frimberger D., Hartmann A., Künchel R., Hofstetter A., Hohla A. Ultraviolet-excited (308 nm) autofluorescence for bladder cancer detection. Urology. 2002;60(6):1029–1033. doi: 10.1016/s0090-4295(02)01999-4.

47. Zaak D., Frimberger D., Stepp H., Wagner S., Baumgartner R., Schneede P., Siebels M., Knüchel R., Kriegmair M., Hofstetter A. Quantification of 5-aminolevulinic acid induced fluorescence improves the specificity of bladder cancer detection. J. Urol. 2001;166(5):1665–1668, discussion 1668-1669. PMID: 11586198.

48. Rusakov I.G., Sokolov V.V., Bulgakova N.N., Teplov A.A., Ulyanov R.V. Photodynamic diagnostics and fluorescence spectroscopy in superficial bladder cancer. Oncourology. 2009;4:41–46. Russian (Русаков И.Г., Соколов В.В.,

Булгакова Н.Н., Теплов А.А., Ульянов Р.В. Фотодинамическая диагностика и флуоресцентная спектроскопия при поверхностном раке мочевого пузыря. Онкоурология. 2009;4:41–46).

49. Chernyshev I.V., Khanakaev R.A. Analysis of intrinsic and induced fluorescence of malignant neoplasms and intact kidney tissues. Experimental and clinical urology. 2014;4:32–37. Russian (Чернышев И.В., Ханакаев Р.А. Анализ собственной и индуцированной флуоресценции злокачественных новообразований и интактных тканей почек. Экспериментальная и клиническая урология. 2014;4:32–37).

50. Popov S.V., Huseynov R.G., Scriabin O.I., Sivak K.V. Thermal ischemia of the kidney. Moscow: GEOTAR-Media, 2021. 272 p.: ill. ISBN 978-5-9704-6024-5. Russian (Попов С.В., Гусейнов Р.Г., Скрябин О.И., Сивак К.В. Тепловая ишемия почки. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2021. 272 с.: ил. ISBN 978-5-9704-6024-5).

51. Бабкина А.С. Лазер-индуцированная флуоресцентная спектроскопия в диагностике тканевой гипоксии (обзор). Общая реаниматология. 2019;6:50–61.

52. Krstic M., Gubarev K.K., Zulkarnaev A.B., Fedyunin A.A. Reperfusion-ischemic kidney graft injury and possible ways to overcome it. Clinical nephrology. 2013;6:46–49. Russian (Крстич М., Губарев К.К., Зулькарнаев А.Б., Федюнин А.А. Реперфузионно-ишемическое повреждение почечного трансплантата и возможные пути его преодоления. Клиническая нефрология. 2013;6:46–49).

53. Vatazin A.V., Nesterenko I.V., Zulkarnaev A.B., Shakhov N.L. Modern methods of treatment of ischemic/reperfusion injury of the renal allograft. Clinical nephrology. 2014;4:26–33. Russian (Ватазин А.В., Нестеренко И.В., Зулькарнаев А.Б., Шахов Н.Л. Современные методы лечения ишемического/реперфузионного повреждения почечного аллотрансплантата. Клиническая нефрология. 2014;4:26–33).

54. Goryainov V.A., Kaabak M.M., Babenko N.N., Morozova M.M., Aganesov A.G., Platova E.N., Dymova O.V., Panin V.V., Gramotnev A.K. Pharmacotherapy of ischemic reperfusion injury of transplanted kidneys in children: a comparative study. Pediatric pharmacology. 2017;14 (4):305–308. Russian (Горяйнов В.А., Каабак М.М., Бабенко Н.Н., Морозова М.М., Аганесов А.Г., Платова Е.Н., Дымова О.В., Панин В.В., Грамотнев А.К. Фармакотерапия ишемического реперфузионного повреждения пересаженных почек у детей: сравнительное исследование. Педиатрическая фармакология. 2017;14 (4):305–308).

55. Artyomov D.V., Zulkarnaev A.B. Modern understanding of the pathogenesis and approaches to the prevention and treatment of ischemic and reperfusion injury of a kidney transplant. Bulletin of Modern Clinical Medicine. 2019;12(2):66–71. Russian (Артемов Д.В., Зулькарнаев А.Б. Современное представление о патогенезе и подходы к профилактике и лечению ишемического и реперфузионного повреждения почечного трансплантанта. Вестник современной клинической медицины. 2019;12(2):66–71).

56. Parker M.D., Chambers P.A., Lodge J.P., Pratt J.R. Ischemia- reperfusion injury and its influence on the epigenetic modification of the donor kidney genome. Transplantation. 2008;86(12):1818–1823. doi: 10.1097/TP.0b013e31818fe8f9.

57. Coremans J.M., van Aken M., Bruining H.A., Puppels G.J. NADH fluorimetry to predict ischemic injury in transplant kidneys. Adv. Exp. Med. Biol. 1999;471:335–343. doi: 10.1007/978-1-4615-4717-4_40.

58. Coremans J.M., Van Aken M., Naus D.C., Van Velthuysen M.L., Bruining H.A., Puppels G.J. Pretransplantation assessment of renal viability with NADH fluorimetry. Kidney Int. 2000;57(2):671–683. doi: 10.1046/j.1523-1755.2000.00889.x. PMID: 10652046.

59. Stein G.I. Handbook of confocal microscopy. St. Petersburg: INC RAS, 2007. 77 p.; ill. Russian (Штейн Г.И. Руководство по конфокальной микроскопии. СПб: ИНЦ РАН, 2007. 77 с.; ил.).

60. Robertson D., Savage K., Reis-Filho J.S., Isacke C.M. Multiple immunofluorescence labelling of formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) tissue. BMC Cell Biology. 2008;9:13.

61. Inoue S. Foundations of confocal scanned imaging in light microscopy // Handbook of Biological Confocal Microscopy. 3-rd ed. / J. B. Pawley ed. New York: Springer Science + Business Media, 2006. P. 1–19.

62. Durnova A.O., Krylova Y.S., Panteleev L.N., Musikhin S.F. Confocal laser scanning microscopy – application in pathomorphological studies. Biotechnosphere. 2014;5(35):30–35. Russian (Дурнова А.О., Крылова Ю.С., Пантелеев Л.Н., Мусихин С.Ф. Конфокальная лазерная сканирующая микроскопия – применение в патоморфологических исследованиях. Биотехносфера. 2014;5(35):30–35).

63. Sonn G.A., Jones S.-N.E., Tarin T.V., et al. Optical biopsy of human bladder neoplasia with in vivo confocal laser endomicroscopy. J. Urol. 2009;182:1299–1305. doi.org/10.1016/j.juro.2009.06.039.

64. Wu K., Liu J.J., Adams W., Sonn G.A., Mach K.E., Pan Y., Beck A.H., Jensen K.C., Liao J.C. Dynamic real-time microscopy of the urinary tract using confocal laser endomicroscopy. Urology. 2011;78(1):225–231. DOI: 10.1016/j.urology.2011.02.057

65. Liu J.J., Droller M., Liao J.C. New optical imaging technologies in bladder cancer: Considerations and perspectives. J. Urol. 2012;188:361–368.

66. Liem E.I.M.L., Freund J.E., Savci-Heijink C.D., de la Rosette J.J.M.C.H., Kamphuis G.M., Baard J., Liao J.C., van Leeuwen T.G., de Reijke T.M., de Bruin D.M. Validation of Confocal Laser Endomicroscopy Features of Bladder Cancer: The Next Step Towards Real-time Histologic Grading. Eurol Focus. 2018;6(1):81–87. doi: 10.1016/ j.euf.2018.07.012.

67. Naya Y., Takaha N., Okubo T., Shiota K., Hayashi I., Mori M., Date S., Miki T., Ukimura O. Probe-Based Confocal Laser Endomicroscopy Using Acrinol as a Novel Dye Can Be Used to Observe Cancer Nuclei of Bladder Carcinoma In Situ. J. Endourol. Case Rep. 2018;4(1):25–27. doi: 10.1089/cren.2017.0114.

68. Bui D., Mach K.E., Zlatev D.V., Rouse R.V., Leppert J.T., Liao J.C. A Pilot Study of in Vivo Confocal Laser Endomicroscopy of Upper Tract Urothelial Carcinoma. J. Endourol. 2015;29(12):1418–1423. doi: 10.1089/end.2015.0523.

69. Villa L., Cloutier J., Cotè J.F., Salonia A., Montorsi F., Traxer O. Confocal Laser Endomicroscopy in the Management of Endoscopically Treated Upper Urinary Tract Transitional Cell Carcinoma: Preliminary Data. J. Endourol. 2016;30(2):237–242. doi: 10.1089/end.2015.0644.

70. Breda A., Territo A., Guttilla A., Sanguedolce F., Manfredi M., Quaresima L., Gaya J.M., Algaba F., Palou J., Villavicencio H. Correlation Between Confocal Laser Endomicroscopy (Cellvizio®) and Histological Grading of Upper Tract Urothelial Carcinoma: A Step Forward for a Better Selection of Patients Suitable for Conservative Management. Eur. Urol. Focus. 2018;4(6):954–959. doi: 10.1016/j.euf.2017.05.008.

71. Zakharova M.A., Kuroedov A.V. Optical coherence tomography: a technology that has become a reality.. Clinical ophthalmology. 2015;4:204–211. Russian (Захарова М.А., Куроедов А.В. Оптическая когерентная томография: технология, ставшая реальностью. РМЖ. Клиническая офтальмология. 2015;4:204–211).

72. Panteleeva O.G., Kuznetsova I.A., Kachalina O.V., Eliseeva D.D., Grebenkina E.V., Gamayunov S.V., Kuznetsov S.S., Yunusova E.E., Gubarkova E.V., Kirillin M.Yu., Shakhova N.M. Optical coherence tomography as a tool of reproductive gynecology. Modern technologies in medicine. 2015;1:89–96. Russian (Пантелеева О.Г., Кузнецова И.А., Качалина О.В., Елисеева Д.Д., Гребенкина Е.В., Гамаюнов С.В., Кузнецов С.С., Юнусова Е.Э., Губарькова Е.В., Кириллин М.Ю., Шахова Н.М. Оптическая когерентная томография как инструмент репродуктивной гинекологии. Современные технологии в медицине. 2015;1:89–96).

73. Zagaynova E.V., Streltsova O.S., Gladkova N.D. et al. Optical coherence tomography in diagnostics of precancer and cancer of human bladder. Lasers in Surgery: Advanced Characterization, Therapeutics, and Systems XIV, 2004. doi: 10.1117/12.530316.

74. Manyak M.J., Gladkova N.D., Makari J.H. et al. Evaluation of superficial bladder transitional-cell carcinoma by optical coherence tomography. J. Endourol. Endourol. Soc. 2005;19:570–574.

75. Hermes B., Spoler F., Naami A. et al. Visualization of the basement membrane zone of the bladder by optical coherence tomography: feasibility of noninvasive evaluation of tumor invasion. Urology. 2008;72:677–681.

76. Lee H-C., Zhou C., Cohen D.W. et al. Integrated optical coherence tomography and optical coherence microscopy imaging of ex vivo human renal tissues. J. Urol. 2012;187:691–699.

77. Bus M.T., Muller B.G., de Bruin D.M., Faber D.J., Kamphuis G.M., van Leeuwen T.G., de Reijke T.M., de la Rosette J.J. Volumetric in vivo visualization of upper urinary tract tumors using optical coherence tomography: a pilot study. J. Urol. 2013;190(6):2236–2242. doi: 10.1016/j.juro.2013.08.006.

78. Bus M.T., de Bruin D.M., Faber D.J., Kamphuis G.M., Zondervan P.J., Laguna-Pes M.P., van Leeuwen T.G., de Reijke T.M., de la Rosette J.J. Optical Coherence Tomography as a Tool for in Vivo Staging and Grading of Upper Urinary Tract Urothelial Carcinoma: A Study of Diagnostic Accuracy. J. Urol. 2016;196(6):1749–1755. doi: 10.1016/j.juro.2016.04.117.

79. Li Q., Onozato M.L., Andrews P.M. et al. Automated quantification of microstructural dimensions of the human kidney using optical coherence tomography (OCT). Opt. Express. 2009;17:16000–16016.

80. Barwari K., de Bruin D.M., Faber D.J. et al. Differentiation between normal renal tissue and renal tumours using functional optical coherence tomography: a phase I in vivo human study: in-vivo differentiation of normal and tumoural renal tissue by OCT. BJU Int. 2012;110:E415–E420.

81. Ledyaev D.S., Zagainova E.V., Shkalova L.V., Atduev V.A. Possibilities of cross-polarization optical coherence tomography in visualization and differentiation of elements of the neurovascular bundle of the prostate gland. Experimental and clinical urology. 2013;4:34–39. Russian (Ледяев Д.С., Загайнова Е.В., Шкалова Л.В., Атдуев В.А. Возможности кросс-поляризационной оптической когерентной томографии в визуализации и дифференцировке элементов сосудисто-нервного пучка предстательной железы. Экспериментальная и клиническая урология. 2013;4:34–39).

82. Boppart S.A., Herrmann J.M., Pitris C. et al (2001) Real-time optical coherence tomography for minimally invasive imaging of prostate ablation. Comput. Aided Surg. 2001;6(2):94–103. doi: 10.1002/igs.1013.

83. Aron M., Kaouk J.H., Hegarty N.J. et al. Preliminary experience with NIRIS optical coherence tomography system during laparoscopic and robotic prostatectomy. J. Endourol. 2007;21(8):814–818.

84. Fried N.M., Rais-Bahrami S., Lagoda G.A. et al. Identification and imaging of the nerves responsible for erectile function in rat prostate, in vivo, using optical nerve stimulation and optical coherence tomography. IEEE J. Sel. Top Quantum Electron. 2007;13:1641–1645.

85. Fried N.M., Rais-Bahrami S., Lagoda G.A. et al. Imaging the cavernous nerves in the rat prostate using optical coherence tomography. Lasers Surg. Med. 2007;39:36–41.

86. Rais-Bahrami S., Levinson A.W., Fried N.M. et al. Optical coherence tomography of cavernous nerves: a step toward real-time intraoperative imaging during nerve-sparing radical prostatectomy. Urology. 2008;72:198–204.

87. Hsua M., Guptab M., Sub L.-M., Liaoa J.C. Intraoperative optical imaging and tissue interrogation during urologic surgery. Curr. Opin. Urol. 2014;24(1):66–74. doi: 10.1097/MOU.0000000000000010.