English
Морфологический анализ структуры парасвищевых тканей у пациенток с пузырно-влагалищными свищами при местном внутритканевом применении аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами
DOI: https://dx.doi.org/10.18565/urology.2021.1.21-26
В.Л. Медведев, А.М. Опольский, Н.А. Горбань, М.И. Коган
1) ФГБОУ ВО «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Краснодар, Россия; 2) ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Ростов-на-Дону, Россия; 3) ГБУЗ «Научно-исследовательский институт – Краевая клиническая больница № 1 им. профессора С. В. Очаповского» Министерства здравоохранения Краснодарского края, Краснодар, Россия; 4) ФГБУ «Центральная клиническая больница с поликлиникой» Управления делами президента Российской Федерации, ул. Маршала Тимошенко, Москва, Россия
Цель исследования: провести сравнительную оценку морфологических параметров парасвищевых тканей до и после местного внутритканевого применения АПОТ.
Материалы и методы. В исследование включены 52 пациентки, которым была выполнена фистулопластика. В I группу вошли 30 женщин, излеченные по стандартной методике. Во II группу включены 22 пациентки, которым до операции проводилась АПОТ-терапия. Всем пациенткам выполняли щипковую биопсию краев ПВС. После выполнения щипковой биопсии больным II группы производили 9–10 парафистульных инъекций активированной АПОТ с периодичностью введения
1 раз в 7 дней в течение 5 нед. перед фистулопластикой. Повторную биопсию краев ПВС выполняли пациенткам II группы непосредственно перед фистулопластикой. Для гистологического исследования срезы ткани окрашивали гематоксилином и эозином по стандартной технологии.
Результаты. При первичной биопсии у 8 (37%) пациенток II группы выявлены нарушения кератинизации, после АПОТ-терапии – у 4 (18%) пациенток (p>0,05). У всех пациенток II группы после АПОТ-терапии эпителиальный слой имел нормальное гистологическое строение (p<0,05). У 14 (64%) пациенток II группы исходно установлено эрозивно-язвенное поражение покровного эпителия. При контрольной биопсии эрозий выявлено не было (p<0,05). Толщина фиброзной ткани во II группе до терапии составила 886,3±113,5 µМ, после – 830,1±119,9 µМ (р=0,66). Лимфоидная инфильтрация исходно присутствовала у 20 пациенток II группы, у 8 из них (40%) после терапии она уменьшилась (p<0,05). Клеточная плотность уменьшилась после АПОТ-терапии 11 (50%) пациенток, однако у 4 (18%) больных увеличилась с низкой до умеренной (p<0,05). Микрососудистая плотность до терапии составила 29±3,3, после терапии 19,9±1,9. Различие имеет статистическую достоверность на уровне тенденции (p=0,078).
Заключение. С учетом статистически значимого снижения активности воспалительного процесса, полного купирования эрозивно-язвенного поражения, уменьшения толщины фиброза в стромальном слое в тканях свища применение АПОТ-терапии при хирургическом лечении ПВС следует считать целесообразным и обоснованным.
Литература
1. Armenakas N.A., Pareek G., Fracchia J.A. Iatrogenic bladder perforations: Long term follow up of 65 patients. J Am. Coll. Surg. 2004;198:78–82. Doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2003.08.022. 2. Ghoniem G.M., Langford C.F. Continence: Current Concepts and Treatment Strategies; J.M.C.H., Eds.; Springer: London, UK, 2010;453–459. 3. Medvedev V.L., Opolskiy A.M. Optimization of surgical treatment vesicovaginal fistulas. Herald Urology. 2017;5(2):12–19. Doi:10.21886/2306-6424-2017-5-2-12-19. Russian (Медведев В.Л.,Опольский А.М. Оптимизация хирургического лечения мочепузырно-влагалищных свищей. Вестник урологии. 2017;5(3):79–86. Doi: 10.21886/2308-6424-2017-5-3-79-86). 4. De Bernis L. Obstetric fistula: Guiding principles for clinical management and programme development, a new WHO guideline. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2007;99:117–121. 5. Loran O.B., Godunov B.N., Al-Haiyat N. The indications for a transvesical approach in the surgical treatment of vesicovaginal fistulae. Urol Nefrol. 1995;(5):44–47. Russian (Лоран, О.Б., Годунов, Б.Н., Аль-Хайят Насер. Показания к трансвезикальному доступу при оперативном лечении пузырно-влагалищных свищей. Урология и нефрология. 1995;5:44–47). 6. Medvedev V.L., Opolskiy A.M., Kogan M.I. Clinical effectiveness of complex treatment vesicovaginal fistula using of the platelet-rich plasma compared to standard approach to fistuloplasty. Experimental and clinical urology. 2019;(2):158–163. Doi: 10.29188/2222-8543-2019-11-2-158-162. Russian (Медведев В.Л., Опольский А.М., Коган М.И. Сравнение клинической эффективности комплексного лечения пузырно-влагалищных свищей с применением аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами и стандартного подхода к фистулопластике. Экспериментальная и клиническая урология. 2019(2):158–163. Doi: 10.29188/2222-8543-2019-11-2-158-162). 7. Mancini M., Righetto M., Modonutti D., Morlacco A., Dal Moro F., Zattoni F. Successful Treatment of Vesicovaginal Fistulas via an Abdominal Transvesical Approach: A Single-center 50-yr Experience. European Urology Focus. 2020;S2405-4569(20)30183-8. Doi: 10.1016/j.euf.2020.06.017. 8. Turner‐Warwick R., Chapple C. Functional Reconstruction of the Urinary Tract and Gynaeco‐Urology. Oxford: Blackwell Science, 2002. 9. Shirvan M.K., Alamdari D.H., Ghoreifi A. A novel method for iatrogenic vesicovaginal fistula treatment: Autologous platelet rich plasma injection and platelet rich fibrin glue interposition. J. Urol. 2013;189:2125–2129. Doi: 10.1016/j.juro.2012.12.064 10. Man D., Winland-Brown J.E. The use of autologous platelet-rich plasma (platelet gel) and autologous platelet poor plasma (fibrin glue) in cosmetic surgery. Plast Reconstr. Surg. 2001;107:229–237. Doi: 10.1097/00006534-200101000-00037 11. John P.S., Jeffrey O.H. The biology of platelet-rich plasma. Journal of Oral and maxillofacial Surgery. 2001;59:1119–1120. 12. Haynesworth S.E., Kadiyala S., Liang L.N., et al. Platelet rich plasma stimulates stem cell chemotaxis, proliferation and potentiates osteogenic differentiation. The Spine Journal. 2002;2(5):68. Doi: 10.1016/s1529-9430(02)00313-3. 13. Mannaioni P.F., Di Bello G.M., Masini E. Platelets and inflammation: role of platelet-derived growth factor, adhesion molecules and histamine. Inflamm. Res. 1997;46:4–18. Doi: 10.1007/PL00000158 14. Dawood A.S., Salem H.A. Current clinical applications of platelet-rich plasma in various gynecological disorders: An appraisal of theory and practice. Clin. Exp. Reprod. Med. 2018;45(2):67–74. Doi: 10.5653/cerm.2018.45.2.67. 15. Marx R.E. Platelet-rich plasma (PRP): What is PRP and what is not PRP? Implant Dent. 2001;10(4):225–228. Doi: 10.1097/00008505-200110000-00002. 16. Welp T., Bauer O., Diedrich K. Use of fibrin glue in vesico-vaginal fistulas after gynecologic treatment. Zentralbl. Gynakol. 1996;118(7):430–432. 17. McKay E., Watts K., Abraham N. Abdominal Approach to Vesicovaginal Fistula. Urol. Clin. N. Am. 2019;46(1):135–146. Doi: 10.1016/j.ucl.2018.08.011. 18. Sampson S., Gerhardt M., Mandelbaum B. Platelet rich plasma injection grafts for musculoskeletal injuries: a review. Curr Rev Musculoskelet Med. 2008;1(3-4):165–174. Doi: 10.1007/s12178-008-9032-5. 19. Krijgsveld J., Zaat S.A., Meeldijk J., van Veelen P.A., Fang G., Poolman B., et al. Thrombocidins, microbicidal proteins from human blood platelets, are C-terminal deletion products of CXC chemokines. J Biol Chem. 2000;275(27):20374–20381. Doi: 10.1074/jbc.275.27.20374.
Об авторах / Для корреспонденции
А в т о р д л я с в я з и: А. М. Опольский – врач уролог, ГБУЗ «Научно-исследовательский институт, Краевая клиническая больница № 1 имени профессора С. В. Очаповского МЗ Краснодарского края; урологическое отделение № 2, Краснодар, Россия; e-mail: opolartem@gmail.com
Похожие статьи
