Биомаркеры острого гипоксически-реоксигенационного повреждения нефроцитов в условиях лапароскопической резекции ренальной паренхимы


С.В. Попов, Р.Г. Гусейнов, А.Г. Мартов, Т.М. Муратов, Н.Б. Табынбаев

СПбГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки», Санкт-Петербург, Россия; ФГБУ ГНЦ ФМБЦ им. А. И. Бурназяна ФМБА России, Москва, Россия; Акмолинская областная больница № 2, Астана, Казахстан; Национальный научный центр онкологии и трансплантологии, Астана, Казахстан
Интраоперационная окклюзия почечной артерии при лапароскопической резекции органа служит причиной тепловой ишемии и гипоксически-реоксигенационной неспецифической альтерации клеток ренальной паренхимы с преимущественным поражением эпителиоцитов проксимальных сегментов канальциевой системы нефрона. Типовой патологический процесс целлюлярного повреждения лежит в основе механизмов возникновения и развития синдрома острого почечного повреждения (ОПП), требующего как можно более раннего начала корригирующих мероприятий. В связи с этим проблема своевременной диагностики синдрома и научного поиска методов ее оптимизации остается высокоактуальной и в настоящее время. В ситуациях, ассоциированных с риском формирования ОПП, а также в случаях, когда повреждение нефроцитов уже состоялось, весьма информативна детекция в биологических жидкостях таких аналитов, как биомаркеры острого почечного поражения. В частности, при опосредованном тепловой ишемией гипоксически-реоксигенационном разрушении эпителиоцитов tt. renales качество диагностики существенно повышается, если ее стандартная программа дополнена измерениями концентрации и/или активности таких соединений, как цистатин С, интерлейкин-18, молекула почечного повреждения-I, нейтрофильный желатиназоассоциированный липокалин-2, печеночный протеин, связывающий жирные кислоты; N-ацетил-β-глюкозаминидаза, α-изоформа глютатион-S-трансферазы, γ-глутамилтранспептидаза, лактатдегидрогеназа.
В данной статье представлен обзор опубликованных научных данных о свойствах и диагностических возможностях биомаркеров острого почечного повреждения, опосредованного тепловой ишемией ренальной паренхимы.

Острое почечное повреждение (ОПП) служит синдромом, при котором возникают и быстро прогрессируют нарушения функций почек, что может приводить к выраженным гомеостатическим сдвигам, зачастую не совместимым с жизнью [1, 2]. Встречаемость синдрома ОПП чрезвычайно высока, составляет 181–288 случаев на 100 тыс. человек и имеет тенденцию к увеличению [3–5].

Выделяют преренальные, ренальные и постренальные причины ОПП. К ренальным этиологическим факторам относят заболевания почечной паренхимы различного генеза, к постренальным – патологию, нарушающую отток мочи. Преренальными причинами являются все ситуации, связанные с обескровливанием почки. Среди них гиповолемия, гипо-, изо- и гипертоническая, заболевания и синдромы, сопровождающиеся уменьшением минутного объема сердца и объема циркулирующей крови, а также различные по причинам локальные ограничения поставок крови к почке. К последним относятся интраоперационное пережатие почечной артерии, которое является вынужденным фрагментом лапароскопической резекции пораженного участка почечной паренхимы и сопровождается развитием тепловой ишемии оперируемого органа с весьма высокой вероятностью гипоксически-реоксигенационной альтерации молекулярно-клеточных структур нефрона [6].

Степень выраженности негативных последствий теплового обескровливания почки зависит от продолжительности ишемически-гипоксического воздействия. Не более чем 10-минутная окклюзия практически не влияет на структурные составляющие органа. Увеличение длительности до получаса сопровождается развитием обратимых нефроцеллюлярных изменений. Если кровоснабжение почки прекращается больше, чем на 30 мин, создаются условия для летальной альтерации почечных клеток. После пережатия почечной артерии продолжительностью 60 мин и более наблюдается необратимое повреждение митохондрий и гибель нефроцитов [7–9].

Гипоксически-реоксигенационное повреждение нефроцитов является типовым патологическим процессом, включает стандартный набор патологических и защитно-приспособительных реакций, проявляется в виде комплекса неспецифических морфологических, метаболических и функциональных нарушений. Излюбленным объектом такой альтерации становятся клетки эпителиального монослоя стенок проксимальных канальцев нефрона. Успешность корректирующих мероприятий находится в прямой зависимости от своевременности выявления этих нарушений. Все технологии лабораторной диагностики острого почечного повреждения базируются на измерении концентрации и/или активности биологических маркеров острой альтерации почек [10]. Оценка функционального потенциала ренальной ткани традиционно проводится на основе результатов количественной и качественной детекции креатинина (C4H7N3O) и мочевины (CH4N2O) в крови и в моче. Однако в настоящее время очевидно, что данные тесты не обладают достаточной чувствительностью и не состоятельны для оценки острых нарушений [11]. Например, диагностически значимые изменения уровня креатинина могут регистрироваться спустя 2–3 суток от момента активации патогенетической цепочки, что делает невозможным раннюю диагностику ОПП [12]. В настоящее время разработаны новые методики, более чувствительные, реактогенные и надежные, позволяющие в динамике оценить особенности развития клубочково-канальциевой дисфункции и применить эти сведения при планировании стратегии и тактики лечебных мероприятий [13].

Соединения, уровни содержания которых в крови и в моче диагностически и прогностически важны при ведении больных с несостоятельностью функций ренальной ткани, получили общее название биомаркеров ОПП. Их рациональная лабораторная идентификация предполагает использование унифицированных технологий, доступных в каждом лечебном учреждении. Исследования, проведенные в конце XX – начале XXI вв. позволили составить некий перечень потенциальных биомаркеров ОПП [14], классифицировать эти вещества и определить их полюс информативности. Последнее подразумевает выявление объекта альтерации (канальцы или клубочки), причины биосинтеза маркера (конституциональные или индуцибельные) и т.д. [15].

Все соединения, используемые в качестве лабораторных биомаркеров ОПП, должны в полном объеме соответствовать определенным требованиям [16]. Прежде всего биологические жидкости должны быть легкодоступными, а получение проб – неинвазивно и атравматично. Кроме того, обязательна унификация применяемых лабораторных технологий. Измеряемые аналиты должны быть высокоспецифичными и чувствительными идентификаторами следующих показателей: локализации очага поражения (клубочки, сегменты канальцев, сосуды), действительных этиологических факторов и продолжительности повреждения, особенностей патогенеза ОПП, степени тяжести процесса, необходимости диализа, вариантов исхода (выздоровление, хронизация, смерть), адекватности проводимых лечебных мероприятий [17]. В настоящее время доказано полное соответствие перечисленным требованиям ряда биомаркеров ОПП [18, 19]. Тем не менее проблема научного поиска новых представителей этого класса аналитов не теряет своей актуальности [20–22].

В основу разработанных классификаций биологических маркеров острого почечного повреждения положены следующие признаки: топический, патофизиологический, клинический и рабочий [23].

Согласно топической классификации, выделяют пять групп биомаркеров. Индикаторами повреждения гломерулярного аппарата служат альбумин, s-цистатин С, α1-микроглобулин, β2-микроглобулин. На альтерацию проксимальных канальцев указывают гиперконцентрации NGAL (нейтрофильного желатиназоассоциированного липокалина-2), IKM-1 (Kidney Injury Molecule-1 – молекулы почечного повреждения-I), L-FABP (БСЖК – печеночного протеина, связывающего жирные кислоты), цистатина С, ИЛ-18 (интерлейкина-18), α-GST (α-глютатион-S-трансферазы) и др. Поражение дистальных канальцев подтверждается повышенными уровнями π-GST (π-глютатион-S-трансферазы) и NGAL в биологических жидкостях. Калибиндин D28 является детектором повреждения собирательных трубочек, остеопонтин и NHE-3 (натрийводородный обменник-3) – петли Генле [24].

Патофизиологическая классификация делит биомаркеры по их способности идентифицировать реализацию того или другого фрагмента патогенеза ОПП. Таким образом, выявляются нарушения функций почек (креатинин, сывороточный цистатин С), пероксидация липидов (8-А2α-изопростан, 4-ОН-2-ноненал), повреждения нефроцитов и межклеточной среды (NGAL, IKM-1, L-FABP), задействование иммунного ответа (показатели иммунограммы) и апоптоза (аннексин-5) [25].

Существует также клиническая классификация, в которой рассматриваются возможности применения данных соединений для скриннинг-диагностики ОПП, оценки факторов риска, уточнения особенностей этиопатогенеза, контроля эффективности терапии и др. [26].

В рабочей классификации биомаркеры, представленные как средство прогнозирования, разделены на 4 разновидности. Первую группу составляют протеины, синтез и высвобождение которых существенно повышаются при острой альтерации почек. Среди них: NGAL, L-FABP, KIM-I, ИЛ-18. Во вторую группу входят индикаторы функциональной недостаточности нефрона, например цистатин С сыворотки крови. К третьей группе относятся некоторые уринозные белки с низкой молекулярной массой – цистатин С, α1- и β2-микроглобулины. Четвертая группа представлена интрацеллюлярными энзимами, такими как NAG (N-ацетил-D-глюкозамидаз), α- и π-GST (α- и π-глютатион-S-трансферазы), ГГТП (γ-глутамилтранспептидаза), ЩФ (щелочная фосфатаза), ЛДГ (лактатдегидрогеназа).

Таким образом, наиболее вероятными биомаркерами интраоперационного острого ишемического повреждения ренальной ткани в условиях лапароскопической резекции почки являются креатинин, цистатин-С, ИЛ-18, IKM-1, NGAL, L-FABP, NAG, α-GST, ГГТП, ЛДГ.

Креатинин

Креатинин используется для лабораторной диагностики клубочково-канальциевой дисфункции уже несколько десятилетий. Данное соединение образуется в мышечной ткани из креатинфосфата, затем поступает в общий кровоток, откуда фильтруется в мочу и выводится при мочеиспускании. Креатинин не подвергается канальциевой реабсорбции и по его концентрации в плазме или сыворотке крови можно судить о состоянии клубочковой фильтрации. Референсные диапазоны уровня креатинина различны для мужчин (44–150 мкмоль/л) и женщин (44–97 мкмоль/л) и прямо пропорциональны мышечной массе человека. Полученное при проведении реакции Яффе значение показателя используется для расчета скорости клубочковой фильтрации (СКФ). К недостаткам данного метода оценки функций почечного фильтра относятся, во-первых, возможность ложного завышения СКФ в связи с тем, что определенный объем креатинина выводится из крови в мочу путем канальцевой секреции; во-вторых, несостоятельность показателя при острых поражениях ренальной ткани, когда изменения уровня креатинина в крови появляются не ранее чем через 24–72 ч после повреждения; в-третьих, невозможность диагностически значимого мониторинга СКФ в случаях, когда последняя равна или превышает 50–60 мл/мин [27].

Цистатин С

Цистатин С – белок, главной биологической функцией которого является ингибирование цистеиновых протеиназ. Молекулярная масса соединения равна 13,4 кДа, его продуцируют все ядросодержащие клетки организма. Цистатин С может быть определен в любых тканях и жидкостях внутренней среды, физиологически оптимальное количество в сыворотке составляет у женщин 0,57–1,12, у мужчин – 0,60–1,11 мг/л. Данный биомаркер в почечных клубочках фильтруется из крови в мочу не реабсорбируется и не секретируется в канальцах. Повышение уровня цистатина С в крови наблюдается во всех ситуациях, связанных с появлением во внутренней среде поврежденных клеток и активацией цистеиновых протеиназ. Внезапное поражение нефроцитов разного генеза сопровождается увеличением содержания содержания цистатина в моче. Определение концентраций s- и u-цистатина С чрезвычайно ценно для ранней диагностики острого повреждения почки, что объясняется высокой чувствительностью и специфичностью тестов. Также результат измерений уровня этого белка в сыворотке крови используется для расчета СКФ по специальным формулам. Многие исследователи указывают на то, что такой способ оценки объема ультрафильтрации более совершенен и точен, чем основанный на количестве креатинина [28].

Интерлейкин-18

Лабораторная детекция уровня ИЛ-18 в моче с большой точностью и надежностью позволяет осуществить раннее выявление ОПП, в том числе ишемически-реперфузионного. При появлении в ренальной паренхиме очага поражения, содержащего летально поврежденные клетки, немедленно развиваются ответные реакции иммунокомпетентной системы с активацией антигенпрезентирующих, хелперных и эффекторных клеток, продуцирующих различные цитокины. Высокая концентрация ИЛ-18 в моче формируется на 24–72 ч раньше таковой для креатинина. Однако повышенное содержание ИЛ-18 в плазме может свидетельствовать не только об острой почечной патологии, но и о других заболеваниях, сопровождающихся деструкцией клеток и молекул. Кроме того, повышенная концентрация ИЛ-18 в крови и моче может наблюдаться при сепсисе независимо от наличия или отсутствия поражений ренальной паренхимы [23, 24].

Молекула почечного повреждения-I

Наличие в образцах мочи гликопротеина KIM-1 (молекулярная масса – 90 кДа) является диагностически значимым ранним лабораторным признаком острого поражения проксимальных отделов канальциевого аппарата нефрона в условиях ишемии или на фоне разнообразных токсических воздействий. Анализ уровня KIM-1 позволяет не только выявлять повреждение, но и оценивать вероятность присоединения осложнений, возможность благоприятного или неблагоприятного исхода. Также KIM-1 присутствует в моче у лиц с хроническим течением почечной патологии. Если повреждения проксимальных канальцев отсутствуют, данный гликопротеин не индексируется ни в моче, ни в почечной ткани [29].

Нейтрофильный желатиназоассоциированный липокалин-2

Нейтрофильный желатиназный липокалин-2 (NGAL), протеин с молекулярной массой 25 кДа) – синтез данного соединения осуществляется клетками всех органов и тканей, в том числе ренальной. В связи с этим в контексте диагностики почечной патологии целесообразно различать липокалин-2 в крови и то же соединение, но образованное в паренхиме почек.

Липокалин-2 из крови поступает в первичную мочу в процессе клубочковой фильтрации и затем подвергается почти полному обратному всасыванию в проксимальных канальцах, эпителиоциты которых полностью разрушают данное соединение. Таким образом, появление NGAL в дефинитивной моче может быть обусловлено, во-первых, поражением tt. proximales с выпадением их реабсорбционной функции, во-вторых, интенсивным биосинтезом NGAL в самой почке в ответ на ее повреждение. Определение концентрации NGAL в крови и в моче – чувствительный и надежный метод идентификации и прогнозирования при преренальной и ренальной острой почечной недостаточности [30], в том числе ее субклиническом варианте [31], хронической болезни почек (ХБН) и хронической почечной недостаточности (ХПН) [32], различных нефропатий и воспалительных заболеваний мочевыводящих путей [33].

Печеночный протеин, связывающий жирные кислоты

Печеночный протеин, связывающий жирные кислоты (L-FABP), в норме осуществляет интрацеллюлярные трансмембранные поставки жирных кислот в хондриосомы. Этот белок относится к тем соединениям, которые надежно изолированы в интактной клетке. При альтерации последней за счет повышения проницаемости поврежденных биологических мембран L-FABP поступает в интерстиций, а затем в общий кровоток и мочу. В самых ранних публикациях, посвященных использованию L-FABP в качестве лабораторного критерия острых ишемически-гипоксических поражений почек, описывались результаты мониторинга L-FABP в моче подопытных животных с экспериментальной моделью острой почечной недостаточности [34]. В настоящее время детекция в моче L-FABP является надежным и высокоинформативным методом лабораторной диагностики острых и хронических заболеваний почек, в основе патогенеза которых лежит повреждение клеточных структур с нарушением целостности их биологических мембран [35].

N-ацетил-β-глюкозаминидаза

N-ацетил-β-глюкозаминидаза (NAG) является активным интрацеллюлярным ферментом и входит в состав лизосомальных гидролаз. При повреждении клетки, когда проницаемость мембраны общеклеточной и лизосомальной увеличивается, NAG высвобождается сначала в цитоплазму, затем во внеклеточное пространство. В клубочковом аппарате нефрона молекулы NAG не способны преодолеть почечный фильтр, что связано с их весьма крупными размерами и высокой массой, равной примерно 140 кДа. Следовательно, появление NAG в моче возможно только в условиях альтерации тубулярных эпителиоцитов, когда фермент поступает в мочу сразу после нарушения целостности цитолеммы эпителиальных клеток. Наиболее высокую активность N-ацетил-β-глюкозаминидаза проявляет в проксимальных отделах канальциевой системы, поэтому измерение ее активности в моче может служить высокоспецифичным, чувствительным и надежным лабораторным тестом ранней диагностики острого повреждения tt. proximales [36, 37] как преренального, так и ренального происхождения [38, 39]. Однако в ряде ситуаций возможно некорректное измерение активности уринарного NAG, что ограничивает применение теста. Это связано с тем, что, во-первых, мочевина является ингибитором данного фермента [40], во-вторых, при определенной патологии (системные заболевания соединительной ткани, гиперфункция паращитовидных желез, диабетическая нефропатия) активность NAG в моче повышается независимо от состояния ренальной паренхимы [41–43].

Глютатион-S-трансферазы

Глютатион-S-трансферазы (GST) – семейство энзимов, катализирующих обезвреживающее конъюгирование экзо- и эндогенных токсинов с глютатионом. В составе семейства 8 изоформ фермента: α, κ, μ, ω, π, σ, θ, ζ [44]. Ренальные GST локализованы в канальциевой части нефрона: α-изоформа – в проксимальных сегментах, π-изоформа – в дистальных. Вне повреждения активность этих энзимов в моче не определяется, ее увеличение связано с повреждением почечной ткани, появлением объектов катализа и высвобождением ферментов из разрушенных эпителиоцитов [45].

Уровень активности α- и π-глютатион-S-трансферазы находится в прямой зависимости от степени и характера нефротоксического воздействия и в обратной – от интенсивности выведения конечных продуктов метаболизма протеинов [46, 47], что позволяет считать α- и π-изоформы GST потенциальными биомаркерами острого повреждения проксимальных и дистальных канальцев, индикаторами механизмов и степени токсического поражения, параметрами прогностической оценки, а также одними из критериев адекватности проводимой терапии [48].

γ-глутамилтранспептидаза, лактатдегидрогеназа

Локализованные в неповрежденной щеточной кайме проксимальных ферментов γ-глутамил транспептидаза (ГГТП) и лактатдегидрогеназа (ЛДГ) присутствуют в моче в небольшом количестве. Если при острой почечной альтерации основной мишенью являются ближайшие к клубочку сегменты тубулярной системы нефрона, то концентрация и активность данных энзимов в пробах возрастает, что обусловлено гиперпроницаемостью мембран поврежденных клеток эпителия проксимальных канальцев и переходом в мочу содержимого их цитоплазмы и органелл, в том числе ГГТП и ЛДГ. Следовательно, по уровням ГГТП и ЛДГ в моче можно оценивать целостность эпителиоцитарного монослоя проксимальных канальцев [49–51]. Корректность результатов измерения количества и активности данных ферментов зависит от качества проведения преаналитического этапа лабораторной диагностики [52]. К наиболее важным требованиям относятся, во-первых, ограниченное время хранения образцов из-за высокой вероятности инактивации энзимов (не более 4 ч с момента взятия пробы); во-вторых, использование консервантов и стабилизаторов; в-третьих, обязательная очистка биологической жидкости, в том числе мочи, от примесей [53].

Заключение. Одной из преренальных причин острой гипоксически-реоксигенационной альтерации почки является окклюзия почечной артерии, выполняемая в процессе лапароскопической резекции пораженного органа. Вероятность развития синдрома ОПП возрастает с увеличением продолжительности обескровливания. В основе патогенеза ОПП лежит неспецифическое повреждение нефроцитов, обратимое или летальное, с увеличением проницаемости или полным разрушением биологических мембран. В первую очередь поражаются клетки эпителиального слоя проксимальных канальцев. Для эффективной коррекции возникающих расстройств необходимо своевременное их выявление. Перспективным направлением лабораторной детекции нарушений является измерение количества или активности биомаркеров ОПП. О гипоксически-реоксигенационной альтерации, поражении tt. proximales и развитии связанной с этим функциональной несостоятельности гломерулярно-тубулярного аппарата свидетельствуют соответствующие изменения концентрации креатинина, цистатина С, ИЛ-18, KIM-1, липокалина-2, печеночного протеина, связывающих жирные кислоты, а также ферментов N-ацетил-β-глюкозаминидазы, α-глютатион-S-трансферазы, γ-глутамилтранспептидазы, лактатдегидрогеназы. Результаты качественного и количественного определения этих аналитов существенно расширяют и углубляют представления об этиопатогенезе нарушений, позволяют более точно оценить тяжесть расстройств, улучшают качество прогнозирования, обеспечивают своевременность коррекции лечебных мероприятий.


Литература


1. Kwon O., Phillips C.L., Molitoris B.A. Ischemia induces alteratioms in actin filaments in renal vascular smooth muscle cell. Am. J. Physiology. Renal Physiology. 2002;282:1012–1019.

2. Hack C.E., Zeerleder S. The endothelium in sepsis: Sours of and a target for inflammation. Crit. Care Med. 2001;29:21–27.

3. Wang H.E., Muntner P., Chertow G.M., Warnock D.G. Acute Kidney Injury and Mortality in Hospitalized Patients. Am. J. Nephrol. 2012;35:349–355.

4. Thakar C.V., Christianson A., Freyberg R., Almenoff P., Render M.L. Incidence and outcomes of acute kidney injury in intensive care units: a Veterans Administration study. Crit. Care Med. 2009;37:2552–2558.

5. Ali T., Khan I., Simpson W., Prescott G., Townend J., Smith W., Macleod A. Incidence and outcomes in acute kidney injury: a comprehensive population-bazed study. Am. J. Soc. Nephrol. 2007;18:1292–1298.

6. Ivanov D.D. Acute Kidney Injury. The Emergency Medicine. 2012;3(42). (Иванов Д.Д. Острое повреждение почек. Медицина неотложных состояний. 2012;3(42)).

7. Siemer S., Eahme S., Altziebler S. Effi cacy and safety of TachoSil as haemostatic treatment versus standard suturing in kidney tumour resection: A randomised-prospective study. Eur. Urol. 2007;52 (5):1156–1163.

8. Thompson R.H., Frank I., Lohse C.M., Saad I.R., Fergany A., Zincke H., Leibovich B.C., Blute M.L., Novick A.C. The impact of ischemia time during open nephron sparing surgery on solitary kidneys: a multi-institutional study. J. Urol. 2007;177 (2):471–476.

9. Harmon W.J., Kavoussi L.R., Bishoff J.T. Laparoscopic nephron-sparing surgery for solid renal masses using the ultrasonic shears. Urology. 2000;56:754.

10. Mori K., Nakao K. Neutrophil gelatinase-associated lipocalin as the real-time indicator of active kidney damage. Kidney Int. 2007;71:967–970.

11. Murray P.T., Devarajan P., Levey A.S., Eckardt K.U., Bonventre J.V., Lombardi R., Herget-Rosenthal S., Levin A. A framework and key research questions in AKI diagnosis and staging in different environments. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2008;3:864–868.

12. Nickolas T., Barasch J., Devarajan P. Biomarkers in acute and chronic kidney disease. Curr. Opin. Nephrol. Hypertens. 2008;17(2):127–132.

13. Urbschat A., Obermüller N., Haferkamp A. Biomarkers of kidney injury. Biomarkers. 2011;16:22–30.

14. Devarajan P. Neutrophil gelatinase-associated lipocalin (NGAL): a new marker of kidney disease. Scand. J. Clin. Lab. Invest. 2008;68:89–94.

15. Coca S.G., Yalavarthy R., Concato J., Parikh C.R. Biomarkers for the diagnosis and risk stratification of acute kidney injury: a systematic review. Kidney Int. 2008;9:1008–1016.

16. Edelstein C.L. Biomarkers in Kidney Disease. Elsevier Inc. 2011.

17. Devarajan P., Parikh C., Barasch J. Case 31-2007: a man with abdominal pain and elevated creatinine. N. Engl. J. Med. 2008;358(3):312.

18. Devarajan P. NGAL in acute kidney injury: from serendipity to utility. Am. J. Kidney. Dis. 2008;52:395–399.

19. Devarajan P. The future of pediatric acute kidney injury management-biomarkers. Semin. Nephrol. 2008;28(5):493–498.

20. Martensson J., Martling C.R., Bel M.l. Novel biomarkers of acute kidney injury and failure: clinical applicability. British Journal of Anaesthesia 2012;109(6):843–850.

21. Kokkoris S., Pipili C., Grapsa E. Novel Biomarkers of Acute Kidney Injury in the General Adult ICU: A Review. Renal Failure. 2013;35(4):579–591.

22. Tsigou E., Psallida V., Demponeras C. Role of New Biomarkers: Functional and Structural Damage. Crit Care Res Pract. 2013;2013:361–378.

23. Proletov Y.U., Saganova E.S., Cmirnov A.V. Biomarkers in Acute Kidney Injury Diagnostics. Nephrology. 2014;18(4):25–35. Russian (Пролетов Я.Ю., Саганова Е.С., Смирнов А.В. Биомаркеры в диагностике острого повреждения почек. Сообщение I. Нефрология. 2014;18(4):25–35).

24. Bonventre J.V., Vaidya V.S., Schmouder R., Feig P., Dieterle F. Next-generation biomarkers for detecting kidney toxicity. Nat. Biotechnol. 2010;28(5):436–440.

25. Tesch G.H. Review: Serum and urine biomarkers of kidney disease: A pathophysiological perspective. Nephrology (Carlton). 2010;15(6):609–616.

26. Noto A. Cibecchini F., Fanos V., Mussap M. NGAL and Metabolomics: The Single Biomarker to Reveal the Metabolome Alterations in Kidney Injury. Biomed. Res. Int. 2013;61:20–32.

27. Ravagnan L., Roumier T., Kroemer G. Mitochondria, the killer organelles and their weapons J. Cell Physiol. 2002;192:131–137.

28. Ruegg C.E., Mandel U. Differential effects of anoxia or mitochondrial znhibitors in renal proximal straight (PST) and convoluted (PCT) tubules. Kidney mt. 1990;37:529.

29. Proletov Y.U., Saganova E.S., Galkina O.V. The role of some biomarkers in kidney damage estimation in patients with chronic glomerulopathies. Nephrology. 2013;17(1):60–69. Russian (Пролетов Я.Ю., Саганова Е.С., Галкина О.В. Роль некоторых биомаркеров в оценке характера почечного повреждения у пациентов с хроническими гломерулопатиями. Нефрология. 2013;17(1):60–69).

30. Shao P., Qin C., Yin C., Meng X., Ju X., Li J., Lv Q., Zhang W., Xu Z. Laparoscopic Partial Nephrectomy With Segmental Renal Artery Clamping. Technique and Clinical Outcomes. Eur. Urol. 2011;51:849–1855.

31. Schiffl H., Lang S.M. Update on biomarkers of acute kidney injury: moving closer to clinical impact? Mol. Diagn. Ther. 2012;16(4):199–207.

32. Schumer M., Colombel M.C., Sawczuk I.S., Gobé G., Connor J., O’Toole K.M., Olsson C.A., Wise G.J., Buttyan R. Morphologic, biochemical, and molecular evidence of apoptosis during the reperfusion phase after brief periods of renal ischemia. Am. J. Physiol. 1992;140:831–838.

33. Siemer S., Eahme S., Altziebler S. Effi cacy and safety of TachoSil as haemostatic treatment versus standard suturing in kidney tumour resection: A randomised-prospective study. Eur. Urol. 2007;52(5):1156–1163.

34. Suchnio B.E., Chandry I.H., Clemens M.G., Baue A.E. Accelerated functional recovery of isolated rat kidney with ATP-MgCl2 after warm ischemia. Am. J. hysiol. 1984;247:1047–1053.

35. Szijártó A. Free radicals and hepatic ischemia-reperfusion. A. Szijártó. Orv. Hetil. 2015;156(47):1904–1907.

36. Bernard A.M., Vyskocil A.A., Mahieu P., Lauwerys R.R. Assessment of urinary retinol-binding protein as an index of proximal tubular injury. Clin. Chem. 1987;33:775–779.

37. Liangos O., Perianayagam M.C., Vaidya V.S., Han W.K., Wald R., Tighiouart H., MacKinnon R.W., Li L., Balakrishnan V.S., Pereira B.J., Bonventre J.V., Jaber B.L. Urinary N-acetylbeta-(d)-glucosaminidase activity and kidney injury molecule-1 level are associated with adverse outcomes in acute renal failure. J. Am. Soc. Nephrol. 2007;18:904–912.

38. Park H., Hwang J., Kang A. Urinary N-acetyl-β-D glucosaminidase as a surrogate marker for renal function in autosomal dominant polycystic kidney disease: 1 year prospective cohort study. BMC Nephrol. 2012;13:93.

39. Price R. The role of NAG (N-acetyl-beta-d-glucosaminidase) in the diagnosis of kidney disease including the monitoring of nephrotoxicity. Clin. Nephrol. 1992;38:14–19.

40. Bondiou M.T., Bourbouze R., Bernard M., Percheron F., Perez-Gonzalez N., Cabezas J.A. Inhibition of A and B N-acetyl-beta-d-glucosaminidase urinary isoenzymes by urea. Clin. Chim. Acta. 1985;149(1):67–73.

41. Iqbal M.P., Ali A.A., Waqar M.A., Mehboobali N. Urinary N-acetyl-beta-D-glucosaminidase in rheumatoid arthritis. Exp Mol Med. 1998;30(3):165–169.

42. Fujita H., Narita T., Morii T., Shimotomai T., Yoshioka N., Kakei M., Ito S. Increased urinary excretion of N-acetylglucosaminidase in subjects with impaired glucose tolerance. Ren Fail. 2002;24(1):69–75.

43. Tominaga M., Fujiyama K., Hoshino T., Tanaka Y., Takeuchi T., Honda M., Mokuda O., Ikeda T., Mashiba H. Urinary N-acetyl-beta-D-glucosaminidase in the patients with hyperthyroidism. Horm Metab Res. 1989;21(8):438–440.

44. Engel L.S., Taioli E., Pfeiffer R., Garcia-Closas M., Marcus P.M., Lan Q., Boffetta P., Vineis P., Autrup H., Bell D.A., Branch R.A., Brockmöller J., Daly A.K., Heckbert S.R., Kalina I., Kang D., Katoh T., Lafuente A., Lin H.J., Romkes M., Taylor J.A., Rothman N. Pooled analysis and meta-analysis of glutathioneS-transferase M1 and bladder cancer: a HuGE review. Am. J. Epidemiol. 2002;156(2):95109.

45. Warning S., Moonie A. Earlier recognition of nephrotoxicity using novel biomarkers of acute kidney injury. Clinical Toxicology. 2011;49(8):720–728.

46. Brüning T., Sundberg A.G., Birner G., Lammert M., Bolt H.M., Appelkvist E.L., Nilsson R., Dallner G. Glutathione transferase alpha as a marker for tubular damage after trichloroethylene exposure. Arch Toxicol. 1999;73(4–5):246–254.

47. Brüning T., Thier R., Mann H., Melzer H., Bröde P., Dallner G., Bolt H.M. Pathological excretion patterns of urinary proteins in miners highly exposed to dinitrotoluene. J Occup. Environ Med. 2001;43(7):610–615.

48. Proletov Y.U., Saganova E.S., Cmirnov A.V., Zverkov R.V. Biomarkers in Acute Kidney Injury Diagnostics. Report II. Nephrology. 2014;18(6):51–58. Russian (Пролетов Я.Ю., Саганова Е.С., Смирнов А.В., Зверьков Р.В. Биомаркеры в диагностике острого повреждения почек. Сообщение II. Нефрология. 2014;18(6):51–58).

49. Walshe C.M., Odejayi F., Ng S., Marsh B. Urinary glutathione-Stransferase as an early marker for renal dysfunction in patients admitted to intensive care with sepsis. Crit. Care Resusc. 2009;11(3):204–209.

50. Santos C., Marcelino P., Carvalho T., Coelho J., Bispo M., Mourão L., Perdigoto R., Barroso E. The value of tubular enzymes for early detection of acute kidney injury after liver transplantation: an observational study. Transplant. Proc. 2010;42(9):3639–3643.

51. Whiting P.H., Brown P.A. The relationship between enzymuria and kidney enzyme activities in experimental gentamicin nephrotoxicity. Ren Fail. 1996;18(6):899–909.

52. Emeigh Hart S.G. Assessment of renal injury in vivo. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 2005;52(1):30–45.

53. Vaidya V.S., Waikar S.S., Ferguson M.A., Collings F.B., Sunderland K., Gioules C., Bradwin G., Matsouaka R., Betensky R.A., Curhan G.C., Bonventre J.V. Urinary biomarkers for sensitiveand specific detection of acute kidney injury in humans. Clin. Transl. Sci. 2008;1(3):200–208.


Об авторах / Для корреспонденции


А в т о р д л я с в я з и: Р. Г. Гусейнов – врач-уролог СПбГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки»,
Санкт-Петербург, Россия; e - mail: rusfa@yandex.ru


Похожие статьи


Бионика Медиа