Профилактика развития катетер-ассоциированных инфекций мочевыделительной системы у пациентов в раннем послеоперационном периоде


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/urology.2023.2.13-19

А.С. Аль-Шукри, А.В. Максимова, Н.И. Дуб, С.В. Костюков, А.А. Манченко, И.Д. Майоров, Ю.А. Пономарева, С.Б. Петров

1) Кафедра урологии с курсом урологии с клиникой ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И. П. Павлова» Минздрава РФ, Санкт-Петербург, Россия; 2) ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С. М. Кирова» МО РФ, Санкт-Петербург, Россия; 3) ФГБУ «НМИЦ им. В. А. Алмазова» Минздрава РФ, Санкт-Петербург, Россия
Введение. Катетеризация мочевого пузыря является распространенной медицинской манипуляцией, которая ассоциирована с риском развития осложнения в виде катетер-ассоциированной инфекции мочевыводящих путей (КАИМП), составляющей 80% от всех нозокомиальных инфекций урологического профиля.
Цель: оценка совместного применения биологически активной добавки (БАД) Уронекст (D-манноза
2 г, экстракт клюквы, содержащий проантоцианидины 36 мг, и витамин D3 1 мкг) и Цефтриаксона по сравнению с монотерапией антибактериальным препаратом в профилактике развития КАИМП в раннем послеоперационным периоде.
Материалы и методы. Пациенты были разделены на 2 группы: в группе I (n=60) проводилась терапия D-маннозой с экстрактом клюквы и витамином D3 в составе БАД Уронекст перорально в виде саше за 48 ч до оперативного вмешательства и после проведения операции на время нахождения уретрального катетера, а также в/м инъекции цефтриаксона 1000 мг за 2 ч до оперативного вмешательства и в послеоперационном периоде курсом 7 дней. В группе II (n=60) проводилась монотерапия препаратом цефтриаксон аналогичным образом.
Результаты. По результатам бактериологического исследования удаленного мочевого катетера на 3–7-е сутки в группе Уронекст бактериальный рост отсутствовал у 40 пациентов (66,67%, p<0,05) против 23 случаев (38,33%) в группе сравнения.
Выводы. Полученные данные подтверждают эффективность применения биологически активной добавки Уронекст в комбинации с антибактериальным препаратом, что позволяет рекомендовать данную схему у пациентов с установленным мочевым катетером для профилактики развития КАИМП.
Ключевые слова: мочевой катетер, инфекции мочевыводящих путей (ИМП), КАИМП, уронекст, D-манноза, экстракт клюквы, витамин D3
Полный текст статьи доступен
в "Библиотеке Врача"

Литература

1. Kranz J., Schmidt S., Wagenlehner F., Schneidewind L. Catheter-Associated Urinary Tract Infections in Adult Patients. Dtsch Arztebl Int. 2020;117(6):83–88. Doi: 10.3238/arztebl.2020.0083.


2. Mangal S., Pho A., Arcia A., Carter E. Patient and Family Engagement in Catheter-Associated Urinary Tract Infection (CAUTI) Prevention: A Systematic Review. Jt Comm J Qual Patient Saf. 2021.


3. Vinnik Yu.S. et al. Features of the formation of microbial biofilms on various substrates. The possibility of studying biofilms on bile concretions. Modern problems of science and education. 2013;5:323–323. Russian (Винник Ю.С. и др. Особенности формирования микробных биоплeнок на различных субстратах. Возможность изучения биоплeнок на желчных конкрементах. Современные проблемы науки и образования. 2013;5:323–323).


4. Flores-Mireles A., Hreha T.N., Hunstad D.A. Pathophysiology, Treatment, and Prevention of Catheter-Associated Urinary Tract Infection. Top Spinal Cord Inj Rehabil. 2019;25(3):228–240. Doi: 10.1310/sci2503-228.


5. Zaitsev A.V. et al. Biofilm control in urological practice. Urology. 2022;1:81–88. Russian (Зайцев А.В. и др. Контроль образования биопленок в урологической практике. Урология. 2022;1:81–88). Doi: https://dx.doi.org/10.18565/urology.2022.1.81-88.


6. Parsons C.L. Pathogenesis of urinary tract infections: bacterial adherence, bladder defense mechanisms. Urol Clin North Am. 1986;13(4):563–568. Doi: 10.1016/S0094-0143(21)00262-7.


7. Shuman E.K., Chenoweth C.E. Urinary catheter-associated infections. Infectious Disease Clinics. 2018;32(4):885–897.


8. Yin W., Wang Y., Liu L., He J. Biofilms: The Microbial «Protective Clothing» in Extreme Environments. Int J Mol Sci. 2019;20(14):3423. Doi: 10.3390/ijms20143423.


9. Boopathi S., Ramasamy S., Haridevamuthu B., et al. Intercellular communication and social behaviors in mycobacteria. Front Microbiol. 2022;13:943278. Doi: 10.3389/fmicb.2022.943278.


10. Chuang L., Tambyah P.A. Catheter-associated urinary tract infection. J Infect Chemother. 2021;27(10):1400–1406. Doi: 10.1016/j.jiac.2021.07.022


11. Flores-Mireles A.L., Walker J.N., Caparon M., Hultgren S.J. Urinary tract infections: epidemiology, mechanisms of infection and treatment options. Nat Rev Microbiol. 2015;13(5):269–284. Doi: 10.1038/nrmicro3432.


12. Slesarevskaya M.N., Al-Shukri S.H., Kuzmin I.V., et al. Nosocomial infections in a urological hospital. Urological reports. 2019;9(5):85–88. Russian (Слесаревская М.Н., Аль-Шукри С.Х., Кузьмин И.В., и др. Нозокомиальные инфекции в урологическом стационаре. Урологические ведомости. 2019;9(5):85–88).


13. Lo Evelyn, et al. Strategies to Prevent Catheter-Associated Urinary Tract Infections in Acute Care Hospitals: 2014 Update. Infection Control and Hospital Epidemiology. 2014;35(5):464–479. JSTOR, https://doi.org/10.1086/675718


14. Mangal S., Pho A., Arcia A., Carter E. Patient and Family Engagement in Catheter-Associated Urinary Tract Infection (CAUTI) Prevention: A Systematic Review. Jt Comm J Qual Patient Saf. 2021;47(9):591–603. Doi: 10.1016/j.jcjq.2021.05.009.


15. Hakvoort R.A., Burger M.P., Emanuel M.H., Roovers J.P. A nationwide survey to measure practice variation of catheterisation management in patients undergoing vaginal prolapse surgery. Int Urogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 2009;20(7):813–818. Doi: 10.1007/s00192-009-0847-4.


16. Singha P., Locklin J., Handa H. A review of the recent advances in antimicrobial coatings for urinary catheters. Acta Biomater. 2017;50:20–40. Doi: 10.1016/j.actbio.2016.11.070.


17. Zhang S., Liang X., Gadd G.M., Zhao Q. Marine Microbial-Derived Antibiotics and Biosurfactants as Potential New Agents against Catheter-Associated Urinary Tract Infections. Mar Drugs. 2021;19(5):255. Doi: 10.3390/md19050255.


18. Perepanova T.S. The 2015 Federal Clinical Guidelines for Antimicrobial Therapy and Prevention of Infections of the Kidney, Urinary Tract, and Male Genitals. Ter Arkh


19. Ala-Jaakkola R., Laitila A., Ouwehand A.C., Lehtoranta L. Role of D-mannose in urinary tract infections – a narrative review. Nutr J. 2022;21(1):18. Doi:10.1186/s12937-022-00769-x


20. Nemzer B.V., Al-Taher F., Yashin A., Revelsky I., Yashin Y. Cranberry: Chemical Composition, Antioxidant Activity and Impact on Human Health: Overview. Molecules. 2022;27(5):1503. Doi: 10.3390/molecules27051503.


21. Hsueh P.R., Hoban D.J., Carmeli Y., Chen S.Y., Desikan S., Alejandria M., et al. Consensus review of the epidemiology and appropriate antimicrobial therapy of complicated urinary tract infections in Asia-Pacific region. J Infect


22. Liu X., Sai F., Li L., Zhu C., Huang H. Clinical characteristics and risk factors of catheter-associated urinary tract infections caused by Klebsiella Pneumoniae. Ann Palliat Med


23. Barbadoro P., Labricciosa F.M., Recanatini C., Gori G., Tirabassi F., Martini E., et al. Catheter-associated urinary tract infection: Role of the setting of catheter insertion. Am J Infect Control


24. Abisado R.G., Benomar S., Klaus J.R., Dandekar A.A., Chandler J.R. Bacterial Quorum Sensing and Microbial Community Interactions. mBio


25. Lenger S.M., Bradley M.S., Thomas D.A., Bertolet M.H., Lowder J.L., Sutcliffe S. D-mannose vs other agents for recurrent urinary tract infection prevention in adult women: a systematic review and meta-analysis. Am J Obstet Gynecol


26. Kranjčec B., Papeš D., Altarac S. d-mannose powder for prophylaxis of recurrent urinary tract infections in women: a randomized clinical trial. World Journal of Urology 2013 32:1


27. Fu Z., Liska D., Talan D., Chung M. Cranberry Reduces the Risk of Urinary Tract Infection Recurrence in Otherwise Healthy Women: A Systematic Review and Meta-Analysis. J Nutr. 2017;147(12):2282–2288. Doi:10.3945/jn.117.254961.


28. Esipov A.V., Alechnovich A.V., Markevich P.S., Kislenko A.M., Zaytsev A.V. The role of biofilms in the pathogenesis of catheter-associated urinary tract infections. Hospital medicine: science and practice. 2021; 4(1):26–30. Russian (Есипов А.В., Алехнович А.В., Маркевич П.С., Кисленко А.М., Зайцев А.В. Роль биопленок в патогенезе катетер-ассоциированных инфекций мочевыводящих путей. Госпитальная медицина: наука и практика. 2021; 4(1):26–30). Doi: 10.34852/GM3CVKG.2021.94.26.004.


29. Köves B., Magyar A., Tenke P. Spectrum and antibiotic resistance of catheter-associated urinary tract infections. GMS Infect Dis


30. Baron G., Altomare A., Regazzoni L., et al. Profiling Vaccinium macrocarpon components and metabolites in human urine and the urine ex-vivo effect on Candida albicans adhesion and biofilm-formation. Biochem Pharmacol. 2020;173:113726. Doi:10.1016/j.bcp.2019.113726.


Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: А. С. Аль-Шукри – д.м.н., профессор, руководитель урологического отделения № 1(общей и неотложной урологии) Научно-исследовательского центра урологии НИИ хирургии и неотложной медицины, ФГБОУ ВО ПСПБГМУ им. акад. И. П. Павлова Минздрава России, Санкт-Петербург, Россия; e-mail: ad330@mail.ru


Похожие статьи

К содержанию номера

Бионика Медиа