Динамика остеопонтина в сыворотке крови и моче в раннем послеоперационном периоде после перкутанной нефролитотрипсии


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/urology.2023.2.48-52

Д.Н. Хотько, А.И. Хотько, В.М. Попков, А.И. Тарасенко

1) ФГБОУ ВО «Саратовский ГМУ им. В. И. Разумовского» Минздрава России, Саратов, Россия; 2) Первый МГМУ им. И. М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет), Москва, Россия
Цель исследования: оценка динамики уровня остеопонтина в сыворотке крови и моче в раннем послеоперационном периоде после перкутанной нефролитотрипсии у больных с конкрементами почечной лоханки.
Материалы и методы. В исследование включены 110 пациентов с конкрементами лоханки размером до 20 мм в максимальном измерении без значимых клинических признаков обструкции. Пациенты были разделены на две группы в зависимости от результатов интраоперационного мониторинга внутрилоханочного давления. В каждой из групп в равных долях присутствовали пациенты, которым выполнялась перкутанная нефролитотрипсия и мини-перкутанная нефролитотрипсия. Всем пациентам интраоперационно проводился мониторинг внутрилоханочного давления по предложенной авторами методике. Забор биологического материала (сыворотки крови и мочи) для иммуноферментного анализа выполняли на 0-е, 7-е и 30-е сутки после проведения оперативного вмешательства. Остеопонтин в плазме и моче измеряли с использованием коммерческого набора для иммуноферментного анализа Human Osteopontin ELISA Kit.
Результаты. Клинически в группе пациентов с повышением внутрилоханочного давления интраоперационно в послеоперационном периоде имело место развитие пиелонефрита, сопровождавшегося явлениями гипертермии от 3 до 7 сут. у 70%, лейкоцитозом и лейкоцитурией у 100% пациентов. Количество геморрагических осложнений при ретроспективном анализе результатов лечения в обеих группах не различалось. В динамике отмечено повышение уровня сывороточного остеопонтина, достоверно более выраженное в группе с повышенным интраоперационно внутрилоханочным давлением (р≤0,05). Мочевой остеопонтин, наоборот, в динамике имеет тенденцию к снижению, более выраженному в группе с нормальным интраоперационным внутрилоханочным давлением.
Заключение. Динамика снижения уровня мочевого остеопонтина свидетельствует о стабилизации процессов повреждения и восстановлении почечной функции после перкутанной нефролитотрипсии. Повышение содержания сывороточного остеопонтина связано с развитием послеоперационных воспалительных осложнений, что свидетельствует об иммунных функциях сывороточного остеопонтина.
Ключевые слова: перкутанная нефролитотрипсия, остеопонтин, внутрилоханочное давление, мочекаменная болезнь
Полный текст статьи доступен
в "Библиотеке Врача"

Литература

1. Kaprin A.D., Apolikhin O.I., Sivkov A.V., Anokhin N.V., Gadzhiev N.K., Malkhasyan V.A., Akopyan G.N., Prosyannikov M.Yu. The incidence of urolithiasis in the Russian Federation from 2005 to 2020. Experimental and Clinical Urology. 2022;15(2):10–17; https://doi.org/10.29188/2222-8543-2022-15-2-10-17. Russian (Каприн А.Д., Аполихин О.И., Сивков А.В., Анохин Н.В., Гаджиев Н.К., Малхасян В.А., Акопян Г.Н., Просянников М.Ю. Заболеваемость мочекаменной болезнью в Российской Федерации с 2005 по 2020 гг. Экспериментальная и клиническая урология 2022;15(2):10–17).


2. Martov A.G., Dutov S.V., Popov S.V. et al. Mini-percutaneous laser nephrolithotripsy. Urologiia. 2019;3:72–79. Russian. (Мартов А.Г., Дутов С.В., Попов С.В. и др. Мини-перкутанная лазерная нефролитотрипсия. Урология. 2019;3:72–79). Doi: 10.18565/urology.2019.3.72–79.


3. Cicek M.C., Asi T., Gunseren K.O., Kilicarslan H. Comparison of laparoscopic pyelolithotomy and retrograde intrarenal surgery in the management of large renal pelvic stones. Int. J. Clin. Pract. 2021;75(6):14093.


4. Perepanova T.S., Merinov D.S., Kazachenko A.V., Tolordava E.L., Malova Yu.A. Prevention of infectious and inflammatory complications after percutaneous nephrolithotripsy using the drug pyobacteriophage. Experimental and Clinical Urology. 2019;(1)132–138. Doi: 10.29188/2222-8543-2019-11-1-132-138. Russian (Перепанова Т.С., Меринов Д.С., Казаченко А.В., Толордава Э.Л., Малова Ю.А. Профилактика инфекционно-воспалительных осложнений после перкутанной нефролитотрипсии с использованием препарата пиобактериофага. Экспериментальная и клиническая урология 2019;(1):132–138).


5. Khotko D.N., Khotko A.I., Popkov V.M., Tarasenko A.I., Efimova A.O. The role of intraoperative intrarenal pressure in the postoperative period of percutaneous nephrolithotripsy in patients with urolithiasis. Experimental and Clinical Urology. 2022;15(3)82–87 https://doi.org/10.29188/2222-8543-2022-15-3-82-87. Russian (Хотько Д.Н., Хотько А.И., Попков В.М., Тарасенко А.И., Ефимова А.О. Роль интраоперационного внутрилоханочного давления в течении послеоперационного периода перкутанной нефролитотрипсии у больных с мочекаменной болезнью. Экспериментальная и клиническая урология. 2022;15(3):82–87).


6. Khotko A.I., Khotko D.N., Zakharova N. B., Tarasenko A.I., Popkov V.M., Alekseev A.V. Effectiveness of the calcium channel blocker lercanidipine as a nephroprotector in the treatment of patients with urolithiasis with obstructive syndrome and monitoring of the cytokine profile of blood. Urologiia. 2019;5:48–52. Russian (Хотько А.И., Хотько Д.Н., Захарова Н.Б., Тарасенко А.И., Попков В.М., Алексеев А.В. Эффективность блокатора кальциевых каналов лерканидипина в качестве нефропротектора при лечении больных уролитиазом с обструктивным синдромом и мониторинг цитокинового профиля крови. Урология. 2019;5:48–52).


7. Franzén A., Heinegård D. Isolation and characterization of two sialoproteins present only in bone calcified matrix. Biochem. J. 1985;232:715–724.


8. Kosmopoulos M., Paschou S.A., Grapsa J., Anagnostis P., Vryonidou A., Goulis D.G., Siasos G. The Emerging Role of Bone Markers in Diagnosis and Risk Stratification of Patients With Coronary Artery Disease. Angiology. 2019;70:690–700.


9. Iida T., Wagatsuma K., Hirayama D., Nakase H. Is Osteopontin a Friend or Foe of Cell Apoptosis in Inflammatory Gastrointestinal and Liver Diseases? Int. J. Mol. Sci. 2017;19:7.


10. Rittling S.R., Singh R. Osteopontin in Immune-mediated Diseases. J. Dent. Res. 2015;94:1638–1645.


11. Castello L.M., Raineri D., Salmi L. et al. Osteopontin at the Crossroads of Inflammation and Tumor Progression. Mediat. Inflamm. 2017;2017:4049098.


12. Zhu Q., Luo X., Zhang J., Liu Y., Luo H., Huang Q., Cheng Y., Xie Z. Osteopontin as a Potential Therapeutic Target for Ischemic Stroke. Curr. Drug Deliv. 2017;14:766–772.


13. Bevan L., Lim Z.W., Venkatesh B., Riley P.R., Martin P., Richardson R.J. Specific macrophage populations promote both cardiac scar deposition and subsequent resolution in adult zebrafish. Cardiovasc. Res. 2020;116:1357–1371.


14. Zhao H., Chen Q., Alam A., Cui J., Suen K.C., Soo A.P., Eguchi S., Gu J., Ma D. The role of osteopontin in the progression of solid organ tumour. Cell Death Dis. 2018;9:356.


15. Chimento S., Billero V., Cavallin L., Romanelli M., Nadji M., Romanelli P. Evaluation of osteopontin expression in chronic wounds: A potential prognostic and therapeutic biomarker. J. Wound Care. 2017;26:S4–S8.


16. Bruemmer D., Collins A.R., Noh G. et al. Angiotensin II-accelerated atherosclerosis and aneurysm formation is attenuated in osteopontin-deficient mice. J. Clin. Investig. 2003;112:1318–1331.


17. Zhang Z.X., Shek K., Wang S., Huang X., Lau A., Yin Z. Osteopontin expressed in tubular epithelial cells regulates NK cell-mediated kidney ischemia reperfusion injury. Journal of Immunology. 2010;185:967–973.


18. Inoue M., Shinohara M.L. Intracellular osteopontin (iOPN) and immunity. Immunologic Research. 2011;49:160–172.


19. Chen Q., Shou P., Zhang L., Xu C., Zheng C., Han Y. An osteopontin-integrin interaction plays a critical role in directing adipogenesis and osteogenesis by mesenchymal stem cells. Stem Cells. 2014;32(2):327–337.


20. Scatena M., Liaw L., Giachelli C.M. Osteopontin: a multifunctional molecule regulating chronic inflammation and vascular disease. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 2007;27:2302–2309.


21. Collins A.R., Schnee J., Wang W., Kim S., Fishbein M.C., Bruemmer D. Osteopontin modulates angiotensin II-induced fibrosis in the intact murine heart. Journal of the American College of Cardiology. 2004;43:1698–1705.


22. Nomiyama T., Perez-Tilve D., Ogawa D., Gizard F., Zhao Y., Heywood E.B. Osteopontin mediates obesity-induced adipose tissue macrophage infiltration and insulin resistance in mice. Journal of Clinical Investigation. 2007;117:2877–2888.


23. Wanigasuriya L.K., Jayawardene I., Amaraslrlwardanav C., Wickremasinghe R. Novel urinary biomarkers and their association with urinary heavy metals in chronic kidney disease of unknown aetiology in Sri Lank: a pilot study. Ceylon Med. J. 2017;62:210–217. Doi: http://doLorgllO.4038/cmj.v62i4.8568.


24. Sekiguchi K., Matsuda A., Yamada M. et al. The utility of serum osteopontin levels for predicting postoperative complications after colorectal cancer surgery. Int J Clin Oncol. 2022;27(11):1706–1716. Doi: 10.1007/s10147-022-02225-6. Epub 2022 Aug 11.


Об авторах / Для корреспонденции

А в т о р д л я с в я з и: Д. Н. Хотько – к.м.н., заведующий отделением урологии, ФГБОУ ВО «Саратовский ГМУ им. В. И. Разумовского» Минздрава России; Саратов, Россия; e-mail: dnksar@list.ru


Похожие статьи

К содержанию номера

Бионика Медиа